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    RP—HPLC法測定凍干粉針中DHEA的含量

    2015-10-21 10:13:23陳曉靜何杰楊建云等
    現(xiàn)代儀器與醫(yī)療 2015年5期
    關(guān)鍵詞:高效液相色譜

    陳曉靜 何杰 楊建云等

    [摘 要] 目的:建立反相高效液相色譜法測定凍干粉針中DHEA含量。方法:采用Diamonsil C18 (250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱,流動(dòng)相為乙腈-水(55:45),流速1.0 mL · min- 1;檢測波長206 nm;進(jìn)樣量20 μL ;柱溫:室溫。結(jié)果:在此色譜條件下DHEA與有關(guān)物質(zhì)能達(dá)到較好分離,在0.01 mg · mL- 1~

    0.7 mg · mL- 1濃度范圍內(nèi)與峰面積呈良好線性關(guān)系, r=0.9998;方法重復(fù)性RSD為0.42%;加樣平均回收率(n=6)為98.91%。結(jié)論:該方法準(zhǔn)確可靠,靈敏度高,專屬性好,可用于測定DHEA凍干粉針含量。

    [關(guān)鍵詞] 高效液相色譜;凍干粉針;DHEA;類固醇激素

    中圖分類號(hào):R917 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):2095-5200(2015)05-071-03

    [Abstract] Objective: To establish an RP-HPLC method for determination of the content of DHEA. Methods:Diamonsil C18 (250 mm× 4.6 mm,5 μm) column was adopted ; the mobile phase consisted of a mixture of acetonitrile - water (55:45) at the flow rate was 1.0 mL·min- 1 ;The ultraviolet detection wavelength was set at 206 nm; Loaded volume was 20 μL; the column temperature was room temperature. Results: DHEA and its related substances could be separated well. The linearity of DHEA was well correlated ( r=0.9998) within the range of 0.01 mg · mL- 1~0.7 mg · mL- 1. The method precision RSD was 0.42%. The average recoveries (n=6) was 98.91%. Conclusion: The method appeared to be accurate, reliable, sensitive, specific and can be used for the determination of the content of freeze-dried powder injection DHEA .

    [Key words] HPLC;freeze-dried powder injection;DHEA; steroid hormone

    引言

    DHEA(脫氫表雄酮,dehydroepiandrosterone)為腎上腺及性腺分泌的一種類固醇激素,經(jīng)大量研究發(fā)現(xiàn),DHEA具抗衰老、預(yù)防心血管疾患、改善記憶、增強(qiáng)免疫力作用[1~2],對(duì)小鼠的肝癌[3]、肺癌[4]、淋巴瘤[5] 等均有明顯抑制作用;還能促進(jìn)人類淋巴組織IL-2產(chǎn)生和釋放,這正是HIV感染機(jī)體關(guān)鍵免疫步驟;此外,對(duì)糖尿病患者高血糖所致腎小球細(xì)胞損傷也有一定逆轉(zhuǎn)作用[6]。人體試驗(yàn)表明,DHEA生理劑量未見明顯毒副作用,但也有人對(duì)其大劑量服用帶來潛在危害擔(dān)憂,有試驗(yàn)表明[7-8],過氧化酶體增生劑有致癌性,DHEA大劑量服用可引起肝細(xì)胞過氧化酶體增生,而低劑量無明顯致過氧化酶體增生作用。因此,控制DHEA攝入量能合理有效降低其毒副作用。將DHEA做成凍干粉針注射劑,可降低給藥劑量,提高生物利用度,而MATHII- AS LEBLANC等[9]研究DHEA在食蟹猴中藥代動(dòng)力學(xué)數(shù)據(jù)正好可以證實(shí)這一點(diǎn)。目前DHEA口服給藥居多,DHEA凍干粉針劑是一種注射給藥新劑型,本文建立簡便、準(zhǔn)確、可行、高效HPLC分析方法,用于測定凍干粉針中DHEA含量,為其質(zhì)量可控奠定基礎(chǔ)。

    1 儀器與試藥

    儀器:Waters 2795高效液相色譜儀;2996二極管陣列檢測器;Empower 數(shù)據(jù)處理系統(tǒng); BP211D 型十萬分之一天平;KQ3200型超聲儀,UV-2501PC紫外分光光度儀。色譜柱Dikma, Diamonsil C18柱(250 mm×4.6 mm,5 ?m),甲醇和乙腈均為色譜純,水為娃哈哈純凈水,甘露醇、磷酸二氫鉀和磷酸氫二鉀均為優(yōu)級(jí)純(GR),吐溫80(純度99%)。DHEA對(duì)照品(含量:99.90%,軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射與輻射醫(yī)學(xué)研究所自制);DHEA凍干粉針(含主藥10 mg/瓶)及空白輔料(軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射與輻射醫(yī)學(xué)研究所自制)。

    2 凍干粉針制備

    按照DHEA:甘露醇:吐溫80=(12:5:2)投料比,將處方量甘露醇和吐溫80置研缽中,少量滴加配制好PBS緩沖液(pH=6.0) ,研勻后采用少量遞加法加入已研細(xì)DHEA粉末,研磨均勻,加入PBS緩沖液,配制成每1 mL含有10 mg DHEA混懸液,再精密吸取1.0 mL置安瓿瓶中,在-40℃預(yù)凍后,抽真空并緩慢將溫度升至0℃升華干燥,保持一段時(shí)間,直至含水量達(dá)1%以下,得疏松狀固體后,封口即可。

    3 溶液制備

    3.1 對(duì)照品溶液制備

    取DHEA對(duì)照品約10 mg,精密稱定,置10 mL量瓶中,加適量乙腈超聲溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為對(duì)照品儲(chǔ)備液。取對(duì)照品儲(chǔ)備液2 mL至10 mL量瓶中,加乙腈稀釋至刻度搖勻,作為對(duì)照品溶液。

    3.2 供試品溶液制備

    稱取供試品約14 mg,精密稱定,置10 mL量瓶中,加適量乙腈超聲5 min,并稀釋至刻度,搖勻,作為供試品儲(chǔ)備液。 將供試品儲(chǔ)備液用0.22 ?m有機(jī)濾膜過濾, 精密吸取濾液2 mL至10mL量瓶中,加乙腈稀釋至刻度搖勻,作為供試品溶液。

    3.3 空白溶液制備

    精密稱取與10 mg主藥相當(dāng)空白輔料,加乙腈超聲5 min,并稀釋至刻度,搖勻,過濾后取2 mL至10 mL量瓶中,加乙腈至刻度,搖勻,即可。

    4 色譜條件與系統(tǒng)適用性試驗(yàn)

    采用Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱;流動(dòng)相:乙腈-水(55:45);檢測波長206 nm;流速1.0 mL·min- 1;進(jìn)樣量20 μL;柱溫:室溫。理論塔板數(shù)以DHEA算不低于5000。

    按上述色譜條件,將對(duì)照品溶液、供試品溶液及空白輔料溶液分別進(jìn)樣,DHEA凍干粉針保留時(shí)間為10.06 min,空白輔料在此處無色譜峰出現(xiàn),說明輔料對(duì)DHEA檢測無影響。色譜圖見圖1。

    5 方法學(xué)驗(yàn)證[10]

    5.1 線性與范圍

    取對(duì)照品適量,配制成1.0 mg· mL- 1 對(duì)照品儲(chǔ)備液,分別精密吸取0.1 mL、1.0 mL、2.0 mL、3.0 mL、5.0 mL、7.0 mL置10 mL量瓶中,加乙腈稀釋至刻度搖勻,得一系列濃度標(biāo)準(zhǔn)溶液。取20 μL進(jìn)樣測定,記錄色譜圖。以峰面積A對(duì)濃度C(mg· mL- 1)進(jìn)行線性回歸,得回歸方程 A=1.0×107C+3.4×104,(n=6)( r= 0.9998 ),結(jié)果表明,DHEA凍干粉針在0.01 mg· mL- 1~0.7 mg· mL- 1濃度范圍內(nèi)與峰面積呈良好線性關(guān)系。

    5.2 檢測限、定量限

    精密稱取對(duì)照品適量,加乙腈超聲溶解并稀釋成一系列濃度進(jìn)樣,記錄色譜圖,在信噪比S/N=3時(shí)測得檢測限為10 ng,在信噪比S/N=10時(shí)測得定量限為51 ng。

    5.3 儀器精密度試驗(yàn)

    取濃度為0.2 mg· mL- 1對(duì)照品溶液,連續(xù)進(jìn)樣6次,每次20μL,以峰面積計(jì)算,所得RSD為1.1%,表明儀器精密度良好。

    5.4 重復(fù)性試驗(yàn)

    取DHEA凍干粉針供10瓶,精密稱定其裝量,將傾出內(nèi)容物混勻后,分別精密稱取供試品9份,配制成低、中、高三種濃度,照“4”項(xiàng)下色譜條件測定,按外標(biāo)法以峰面積計(jì)算得平均標(biāo)示量(%)為98.67%,RSD為0.42%。

    5.5 穩(wěn)定性考察

    取供試品適量, 配制成0.1 mg· mL- 1、0.2 mg· mL- 1、0.3 mg· mL- 1 3種濃度,于配制后0h、2h、4h、6h、8h、10h、24h、48h、72h各取20 μL進(jìn)樣,照“3”項(xiàng)下色譜條件測定峰面積,結(jié)果24h內(nèi)3種濃度峰面積RSD分別為1.87%、0.38%、1.03%,72 h 3種濃度峰面積RSD分別為1.49%、1.02%、1.50%,表明供試品溶液放置3天穩(wěn)定,能夠滿足測定要求。

    5.6 加樣回收測定

    精密稱取供試品適量,6份,分別精密加入對(duì)照品適量,加適量乙腈超聲溶解并稀釋至刻度,搖勻。精密吸取2.0 mL至10 mL量瓶中加乙腈配制成含DHEA約0.2 mg· mL- 1加樣溶液,搖勻,過濾后進(jìn)樣20 μL,測定回收率,結(jié)果(見表1)DHEA凍干粉針平均回收率為98.91%,RSD=0.43%。說明用本法測定DHEA凍干粉針含量準(zhǔn)確度良好。

    6 討論

    配制一定濃度對(duì)照品溶液,在190~800 nm范圍內(nèi)進(jìn)行全掃描(見圖2),可以看出本品為末端吸收,選擇206 nm作為檢測波長,既保證主藥能有相應(yīng)吸光值,又盡量遠(yuǎn)離溶劑截止波長。對(duì)于流動(dòng)相,我們比較了甲醇-水系統(tǒng)和乙腈-水系統(tǒng),均能有很好分離,但乙腈截止波長為190 nm,相對(duì)來說比甲醇干擾更小,故選用乙腈-水系統(tǒng)作為流動(dòng)相。凍干粉針中主藥DHEA不溶于水,可溶于有機(jī)溶劑,但輔料為水溶性,采用純有機(jī)溶劑提取,這就大大減少了輔料對(duì)其干擾,由液相色譜圖也可以進(jìn)一步驗(yàn)證,空白輔料對(duì)測定無干擾。

    凍干粉針劑相對(duì)于水針劑質(zhì)量更穩(wěn)定,也更適合于給藥劑量較小藥物。DHEA為類固醇激素,給藥劑量小,對(duì)多種疾病均有較好治療作用,制成凍干粉針劑,不僅可以提高生物利用度,也可以相對(duì)降低潛在毒副作用,進(jìn)一步增加了藥物給藥方式選擇途徑。

    參 考 文 獻(xiàn)

    [1] T, Ishizuka; K, Kajita; A, Miura,et al. DHEA improves glucose uptake via activations of protein kinase C and phosphatidylinositol 3-kinase[J].Am J Physiol.1999,276(1,pt.l)E196-204.

    [2] Bednarek.Tupikowska G,Gosk I,Szuba A,et al .Influence of dehydroepiandrosterone on platelet aggregation,superoxide dismutase activity and serum lipid peroxide concentrations in rabbits with induced hypercholestemlemia [J].Med Sci Monit,2000,6 (1):40-45.

    [3] 吳紅英,王月英,李德冠,等.E838聯(lián)合γ射線對(duì)小鼠肝癌 H22 抑瘤作用研究 [J],中國輻射衛(wèi)生,2008,17(4):387 - 389.

    [4] 王月英,王小春,吳紅英,等 .17a-D -高炔雌二醇-3-乙酯聯(lián)合γ射線照射對(duì)不同品系小鼠抑瘤 作用[J].國際放射醫(yī)學(xué)核醫(yī)學(xué)雜志,2012,36(2):95-98.

    [5] 王月英,李德冠,吳紅英,等.E838及其聯(lián)合放化療對(duì)IRM-2 小鼠自發(fā)淋巴瘤抑制作用 [J].中國生化藥物雜志,2010,31(3):29- 32.

    [6] Brignardelo E,Gallo M,Aragno M,et al. Dehydroepiandrosterone prevents lipid peroxi-dation and cell growth inhibition induced by high glucose concentration in cultured rat mesangial cells[J].J Endocrinol,2000,166(2):401-406.

    [7] RAO M S,MUSUNURI S,REDDY J K. Dehydroepiandros-terone-induced peroxisome proliferation in the rat liver.[J].Pathobiology,1992,60(2):82-86.

    [8] Fumihiko Hayashi Tamura,Tunji Yamada. Characteristic of the hepato carcinogenesis caused by dehydroepiandrosterone,a peroxisome proliferater,in male F-344 rats[J]. Carcinegenesis.1994,15(10):2215-2219.

    [9] MATHIAS LEBLANC,CLAUDE LABRIE,ALAIN BELANGER,et al. Bioavailability and Pharmacokinetics of Dehydroepiandrosterone in the cynomolgus monkeys[J]. The Journal of Clinical Endocrinology &Metabolism.2003,88(9):4293-4302.

    [10] 國家藥典委員會(huì). 中華人民共和國藥典(二部).北京: 中國醫(yī)藥科技出版社,2010: 附錄194-195.

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