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    復方莪術油脂質(zhì)體的制備及質(zhì)量評價

    2018-07-12 20:55:23陳積趙小倩胡姍姍馬彥巧劉燕譚丹楓陳澤慧田應彪
    中國藥房 2018年5期
    關鍵詞:莪術油制備工藝質(zhì)量評價

    陳積 趙小倩 胡姍姍 馬彥巧 劉燕 譚丹楓 陳澤慧 田應彪

    中圖分類號 R283 文獻標志碼 A 文章編號 1001-0408(2018)05-0615-06

    DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2018.05.10

    摘 要 目的:制備復方莪術油脂質(zhì)體(ZTOC-LPS)并對其質(zhì)量進行評價。方法:以復方莪術油中莪術油(以吉馬酮表征)和維A酸的包封率及載藥量等為考察指標,篩選ZTOC-LPS的制備方法及處方中大豆卵磷脂(SPC)的加入量、脂質(zhì)中SPC-膽固醇(CH)質(zhì)量比、莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比、維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比、水浴溫度;并對最優(yōu)處方制備工藝所制脂質(zhì)體進行質(zhì)量評價和初步穩(wěn)定性考察。結(jié)果:優(yōu)選的制備方法為乙醇注入法;最優(yōu)處方制備工藝為每1 mL脂質(zhì)體中SPC 4 mg、SPC-CH質(zhì)量比3 ∶ 1、莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比1 ∶ 9、維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比1 ∶ 70、水浴溫度55 ℃。所制3批脂質(zhì)體中莪術油和維A酸的平均包封率分別為(64.63±1.00)%和(90.33±0.72)%,載藥量分別為(9.09±0.14)%和(1.43±0.02)%,粒徑為(257.41±7.58) nm,Zeta電位為(-38.77±0.81) mV,多分散系數(shù)為 0.10±0.04;離心加速試驗結(jié)果顯示脂質(zhì)體具有良好的物理穩(wěn)定性;脂質(zhì)體樣品在(4±2) ℃條件下放置 1 個月時各項考察指標均未發(fā)生明顯變化。結(jié)論:建立的制備方法簡單可行,所制脂質(zhì)體質(zhì)量符合要求,可為后續(xù)復方莪術油新劑型的研究提供參考。

    關鍵詞 莪術油;維A酸;脂質(zhì)體;包封率;載藥量;制備工藝;質(zhì)量評價

    ABSTRACT OBJECTIVE: To prepare zedoary turmeric oil compound liposomes (ZTOC-LPS) and evaluate its quality. METHODS: The preparation method of liposome, the addition amount of soybean phosphatidylcholine (SPC), ratio of SPC to cholesterol (CH) in lipid, drug-lipid ratio of zedoary turmeric oil (ZTO), drug-lipid ratio of tretinoin in formulation, and water bath temperature were screened using encapsulation efficiency and drug-loading amount of ZTO (represented by germacrone) and tretinoin as investigation indexes. Quality evaluation and primary stability investigation were conducted for liposomes prepared by optimal preparation technology. RESULTS: The optimal preparation method was ethanol injection method; The optimal preparation technology were SPC 4 mg in 1 mL lipid, the mass ratio of SPC to CH 3 ∶ 1, the ratio of ZTO to lipid 1 ∶ 9 , the ratio of tretinoin to lipid 1 ∶ 70, water bath temperature of 55 ℃. Encapsulation efficiencies of ZTO and tretinoin were (64.63±1.00)% and (90.33±0.72)% in 3 batches of ZTOC-LPS, respectively. Drug-loading amount of ZTO and tretinoin were (9.09±0.14)% and (1.43±0.02)%, respectively. Particle size was (257.41±7.58) nm, Zeta potential was (-38.77±0.81) mV, PDI was 0.10±0.04; the results of centrifugal acceleration test showed that the liposomes had good physical stability. No obvious change was found in each investigation index of ZTOC-LPS that stored at (4±2) ℃ for 1 month. CONCLUSIONS: Established preparation technology is simple and feasible, the quality of the prepared ZTOC-LPS conforms to the requirements, and it can provide reference for the following research of ZTOC-LPS.

    KEYWORDS Zedoary turmeric oil; Tretinoin; Liposomes; Encapsulation efficiency; Drug-loading amount; Preparation technology; Quality evaluation

    銀屑病是一種常見的慢性炎癥皮膚疾病,已經(jīng)影響了全球2%~3%的人口[1-2],外用藥物治療是其主要的治療方法之一。銀屑病的傳統(tǒng)治療主要有免疫抑制劑、類固醇激素、物理療法等方法,有如毒副作用及不良反應較多等缺點,故不易被患者接受。中醫(yī)藥治療銀屑病具有療效較好、副作用較少、復發(fā)率低等特點,在治療上具有一定的優(yōu)勢[3]。莪術油為中藥莪術經(jīng)水蒸氣蒸餾所得揮發(fā)油,有文獻[4]報道其可外用治療銀屑病,作用機制可能為抑制角質(zhì)形成細胞增殖、促進角質(zhì)形成細胞正常分化。維A酸可以調(diào)節(jié)角質(zhì)形成細胞的終末分化,從而抑制其增殖[5],為銀屑病的輔助治療藥物[6]。本課題組前期研究表明,兩藥合用治療銀屑病具有協(xié)同作用[7]。但兩者均具有水溶性差、穩(wěn)定性差的缺點,使其應用受到限制[8-9]。

    脂質(zhì)體能較好地模擬生物膜脂質(zhì)雙層結(jié)構(gòu),并具有生物膜的流動性和生物相容性,已較廣泛地用于經(jīng)皮給藥系統(tǒng)中[10-11]。以脂質(zhì)體作為藥物的載體,可增強藥物的水溶性、穩(wěn)定性及延長藥物在皮膚的局部滯留量和滯留時間,提高生物利用度,并可延長藥物作用時間,發(fā)揮長效緩釋作用[12-13]。因此,為了改善莪術油和維A酸的穩(wěn)定性、溶解性等,本研究嘗試將兩者共同包載在脂質(zhì)體中,制備成復方莪術油脂質(zhì)體(ZTOC-LPS),為后續(xù)制劑的研發(fā)提供依據(jù)。

    1 材料

    1.1 儀器

    Agilent-1260-DAD-ELSD 高效液相色譜(HPLC)儀(美國安捷倫科技公司);85-2恒溫磁力攪拌器(金壇市城東新瑞儀器廠);KQ-300VDE雙頻數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);JEM-2100高分辨率透射電子顯微鏡(日本電子株式會社);FiveEasy PlusTm FE28 pH計[瑞士梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司];RE-2000A旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);TG16W高速離心機、TD5M低速離心機(長沙湘智離心機儀器有限公司);超聲波細胞粉碎機(寧波新芝生物科技股份有限公司);90 Plus PALS Zeta電位粒度分析儀(美國布魯克海文儀器公司)。

    1.2 藥品與試劑

    膽固醇(CH,批號:S0727A,純度:≥95%)、維A酸原料藥(批號:A0330A,純度>98.5%)、維A酸對照品(批號:M0512AS,純度:>98%)均來源于大連美侖生物技術有限公司;莪術油[江西雪松天然藥用油有限公司,批號:20160313,含吉馬酮8.1%(>7.5%),符合2015年版《中國藥典》規(guī)定];吉馬酮對照品(成都普菲德生物科技有限公司,批號:160222,純度:≥98%);大豆卵磷脂(SPC,上海太偉藥業(yè)有限公司,批號:20140703,純度:>95%);甲醇、乙腈均為色譜純;其余試劑均為分析純。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 吉馬酮含量測定方法的建立

    以莪術油中吉馬酮為考察指標[14],采用HPLC法測定ZTOC-LPS中吉馬酮的含量。

    2.1.1 色譜條件 色譜柱:Gemini C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:乙腈-水(65 ∶ 35);流速:1.0 mL/min;柱溫:30 ℃;紫外檢測波長:220 nm;進樣量:20 μL。

    2.1.2 對照品貯備液的制備 精密稱取吉馬酮對照品適量,用甲醇溶解制成20 μg/mL的溶液,即得。

    2.1.3 供試品溶液的制備 ZTOC-LPS破乳溶液:精密吸取“2.4.2”項下ZTOC-LPS混懸液1 mL,加入1 mL甲醇破乳,超聲(頻率:45 kHz,功率:150 W)10 min,搖勻、離心,即得。同法制備不含主藥的空白脂質(zhì)體破乳溶液。

    2.1.4 方法專屬性考察 分別取空白脂質(zhì)體破乳溶液、吉馬酮對照品溶液、ZTOC-LPS破乳溶液20 μL進樣分析,考察方法的專屬性。結(jié)果吉馬酮峰形良好,其余物質(zhì)未見干擾。色譜詳見圖1。

    2.1.5 標準曲線的制備 精密吸取吉馬酮對照品貯備液,加入甲醇制備成吉馬酮終質(zhì)量濃度分別為0.19、0.38、0.76、1.14、1.52、1.90、2.26 μg/mL的系列溶液,進樣分析,以峰面積(y)對吉馬酮的質(zhì)量濃度(x)進行線性回歸,得回歸方程為y=52.762x-0.744 5(r=0.999 8),結(jié)果表明,吉馬酮檢測質(zhì)量濃度線性范圍為0.19~2.26 μg/mL。

    2.1.6 精密度、穩(wěn)定性、重復性和準確度試驗 按相關方法進行考察。在精密度試驗中,吉馬酮含量的RSD為1.04%(n=6);在穩(wěn)定性試驗中,12 h內(nèi)吉馬酮含量的RSD為1.24%(n=6);在重復性試驗中,吉馬酮含量的RSD為1.11%(n=6);在準確度試驗中,吉馬酮平均加樣回收率為106.05%(RSD為1.68%,n=6)。

    2.2 維A酸含量測定方法的建立

    2.2.1 色譜條件 色譜柱:Gemini C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:甲醇-2%冰醋酸溶液(85 ∶ 15)[15];流速:1.0 mL/min;紫外檢測波長:346 nm;柱溫:45 ℃;進樣量:20 μL。

    2.2.2 對照品貯備液的制備 精密稱取維A酸對照品適量,用甲醇溶解制成100 μg/mL的溶液,即得。

    2.2.3 供試品溶液的制備 同“2.1.3”項下方法。

    2.2.4 方法專屬性考察 分別取空白脂質(zhì)體破乳溶液、維A酸對照品溶液、ZTOC-LPS破乳溶液 20 μL進樣分析,考察方法的專屬性。結(jié)果,維A酸峰形良好,其余物質(zhì)對其未見干擾。色譜詳見圖2。

    2.2.5 標準曲線的制備 精密量取維A酸對照品貯備液,加入甲醇,制備成維A酸終質(zhì)量濃度分別為7.65、15.30、30.60、45.90、61.20、71.50、91.80 μg/mL的溶液,按“2.2.1”項下色譜條件進樣分析,以峰面積(y)對維A酸的質(zhì)量濃度(x)進行線性回歸,得到方程為y=146.07x-12.567(r=0.999 9),結(jié)果表明,維A酸檢測質(zhì)量濃度線性范圍為7.65~91.80 μg/mL。

    2.2.6 精密度、穩(wěn)定性、重復性和準確度試驗 按相關方法進行考察。在精密度試驗中,維A酸含量的RSD為0.34%(n=6);在穩(wěn)定性試驗中,12 h內(nèi)維A酸含量的RSD為0.49%(n=6);在重復性試驗中,維A酸含量的RSD為0.11%(n=6);在準確度試驗中,維A酸的平均加樣回收率為100.53%(RSD為0.80%,n=6)。

    2.3 ZTOC-LPS包封率及載藥量的測定

    2.3.1 游離吉馬酮和維A酸的回收率測定 取9支2 mL離心管,分成 3 組,各加入空白脂質(zhì)體 0.2 mL,再分別精密加入吉馬酮對照品貯備液 0.2、0.6、1.0 mL(或維A酸對照品貯備液 0.2、0.6、1.0 mL),用甲醇稀釋至刻度,15 000 r/min 離心(離心半徑為 6.2 cm,下同)30 min后,精密量取上清液 1 mL,用甲醇制備成質(zhì)量濃度為 0.40、1.20、2.00 μg/mL的吉馬酮溶液或10.00、15.00、25.00 μg/mL的維A酸溶液,進樣測定。結(jié)果,吉馬酮的平均回收率分別為100.20%、100.92%、99.99%(RSD分別為0.60%、0.15%、0.09%,n=3),維A酸的平均回收率分別為100.67%、100.24%、100.03%(RSD分別為0.44%、0.68%、0.12%,n=3)??芍?,采用超速離心法分離脂質(zhì)體與游離藥物可行。

    2.3.2 包封率和載藥量測定 選擇超速離心法來分離以測定藥物的包封率和載藥量[16]。精密吸取“2.4.2”項下ZTOC-LPS混懸液 1 mL,15 000 r/min離心 30 min,棄去上清液,取下層沉淀,加 1 mL甲醇溶解,HPLC法測定脂質(zhì)體包封吉馬酮的質(zhì)量濃度(c1)和維A酸的質(zhì)量濃度(c2);另取ZTOC-LPS混懸液 1 mL用甲醇定容破乳,水浴超聲(頻率:45 kHz,功率:150 W)10 min,15 000 r/min離心10 min,HPLC法測定脂質(zhì)體混懸液中吉馬酮總質(zhì)量濃度c1總、維A酸的總質(zhì)量濃度c2總。計算2種主藥的包封率和載藥量。其中,莪術油包封率=c1/c1總×100%,維A酸包封率=c2/c2總×100%,莪術油載藥量=[脂質(zhì)體中吉馬酮藥物量/(脂質(zhì)體中藥物量+載體質(zhì)量)] ×100%,維A酸載藥量=[脂質(zhì)體中維A酸藥物量/(脂質(zhì)體中藥物量+載體質(zhì)量)]×100%。

    2.4 ZTOC-LPS制備方法的篩選

    2.4.1 薄膜分散法 按文獻[17]的條件及方法稱取適當比例的SPC、CH、莪術油和維A酸,以5 mL氯仿溶解,置于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上在35 ℃減壓除掉有機溶劑(轉(zhuǎn)速為60 r/min),形成均勻透明的薄膜,室溫真空干燥過夜除去殘余溶劑,然后加10 mL磷酸鹽緩沖溶液(PBS,pH=6.5),于 40 ℃恒溫水浴水化2 h,探頭超聲(頻率:20 kHz,功率:300 W)4 min,即得ZTOC-LPS混懸液,測定ZTOC- LPS包封率和載藥量,平行試驗3次。

    2.4.2 乙醇注入法 按文獻[18]的條件及方法稱取適當比例的SPC、CH、莪術油和維A酸,溶于5 mL無水乙醇中,再取適量PBS置于磁力攪拌器上攪拌(恒溫水?。? mL將其緩慢勻速注入到50 ℃ PBS(pH=6.5)中。注入完畢后,繼續(xù)恒溫攪拌1 h,使乙醇完全揮發(fā)即得ZTOC-LPS混懸液,測定ZTOC-LPS包封率和載藥量,平行試驗3 次。同上稱取相同比例的SPC和CH,在相同條件下制備空白脂質(zhì)體混懸液。

    2.4.3 逆相蒸發(fā)法 按文獻[19]的條件及方法稱取適當比例的SPC、CH、莪術油和維A酸,置于圓底燒瓶中,加入5 mL氯仿溶解,置于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),水浴溫度35 ℃,轉(zhuǎn)速為60 r/min,使脂質(zhì)在器壁上形成均勻薄膜。加入5 mL氯仿,溶解脂質(zhì)膜后,加入10 mL PBS(pH=6.5),水浴超聲30 min,即得到乳黃色均勻混懸液,將混懸液在旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上減壓蒸發(fā),除去氯仿,即得ZTOC-LPS混懸液,測定ZTOC-LPS包封率和載藥量,平行試驗3次。

    2.4.4 制備方法篩選結(jié)果 以包封率和載藥量為評價指標評價制備方法。結(jié)果,薄膜分散法、逆相蒸發(fā)法所制脂質(zhì)體中2種藥物的包封率和載藥量均較低,乙醇注入法所制脂質(zhì)體包封率和載藥量相對較高,故以下選擇簡單易行的乙醇注入法制備ZTOC-LPS。篩選結(jié)果見表1。

    2.5 單因素試驗篩選ZTOC-LPS制備處方及工藝

    2.5.1 SPC加入量 固定莪術油-維A酸質(zhì)量比為 10 ∶ 1,脂質(zhì)中SPC-CH 質(zhì)量比為 3 ∶ 1,水浴溫度為50 ℃,其他因素不變,只改變SPC的投料量,使每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量分別為4、5、6、7、8 mg,考察SPC加入量對ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響。結(jié)果,莪術油包封率分別為39.67%、74.58%、55.21%、42.98%、29.21%;莪術油載藥量分別為6.17%、9.60%、6.07%、4.12%、2.48%;維A酸包封率分別為54.21%、87.69%、63.36%、47.84%、32.92%;維A酸載藥量分別為0.84%、1.13%、0.70%、0.46%、0.28%。表明SPC加入量對包封率和載藥量均有影響,當SPC加入量為 5 mg時2種主藥的包封率和載藥量最高。

    2.5.2 脂質(zhì)中SPC-CH質(zhì)量比 固定莪術油-維A酸質(zhì)量比為10 ∶ 1,水浴溫度為50 ℃,SPC加入量為每1 mL脂質(zhì)體中5 mg,其他因素不變,只改變SPC-CH質(zhì)量比,使其分別為3 ∶ 1、4 ∶ 1、5 ∶ 1、6 ∶ 1、7 ∶ 1,考察SPC-CH質(zhì)量比對ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響。結(jié)果,莪術油包封率分別為50.66%、36.18%、28.03%、22.75%、16.18%,載藥量分別為5.57%、4.21%、3.38%、2.81%、2.03%;維A酸包封率分別為53.66%、39.38%、31.99%、25.61%、23.38%,載藥量分別為0.59%、0.46%、0.39%、0.32%、0.29%。表明當SPC-CH質(zhì)量比為3 ∶ 1時,2種主藥的包封率和載藥量均較高,所以下一步試驗中均固定SPC- CH質(zhì)量比為3 ∶ 1。

    2.5.3 莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比 固定每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量為5 mg,脂質(zhì)中SPC-CH質(zhì)量比為3 ∶ 1,其他因素不變,只改變莪術油-脂質(zhì)(膜材,SPC+CH)的質(zhì)量比,使其分別為1 ∶ 7、1 ∶ 8、1 ∶ 9、1 ∶ 10、1 ∶ 11,考察莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比對ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響。結(jié)果,莪術油包封率分別為54.58%、58.73%、38.10%、32.74%、33.16%,載藥量分別為6.75%、6.45%、3.77%、2.94%、2.73%;維A酸包封率分別為52.18%、55.74%、43.13%、31.59%、38.36%,載藥量分別為0.56%、0.61%、0.48%、0.35%、0.43%。表明莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比對包封率和載藥量均有影響,當其為1 ∶ 8時2種主藥的包封率和載藥量均較高。

    2.5.4 維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比 固定每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量為5 mg,脂質(zhì)中SPC-CH質(zhì)量比為3 ∶ 1,莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比為1 ∶ 8,其余因素不變,只改變維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比,使其分別為1 ∶ 50、1 ∶ 60、1 ∶ 70、1 ∶ 80、1 ∶ 90,考察維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比對ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響。結(jié)果,莪術油包封率分別為24.49%、41.56%、31.16%、29.09%、30.46%,載藥量分別為2.67%、4.55%、3.42%、3.20%、3.35%;維A酸包封率分別為26.36%、47.38%、35.59%、27.23%、25.98%,載藥量分別為0.46%、0.69%、0.45%、0.30%、0.25%。表明維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比對包封率和載藥量均有影響,當其為1 ∶ 60時2種主藥的包封率和載藥量均較高。

    2.5.5 水浴溫度 固定每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量為5 mg,脂質(zhì)中SPC-CH質(zhì)量比為3 ∶ 1,莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比為1 ∶ 8,維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比為1 ∶ 60,其余因素不變,只改變水浴溫度,使其分別為40、45、50、55、60 ℃,考察水浴溫度對ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響。結(jié)果,莪術油包封率分別為35.32%、37.25%、30.91%、54.92%、31.24%,載藥量分別為3.88%、4.09%、3.40%、6.03%、3.43%;維A酸包封率分別為37.38%、41.99%、37.26%、80.99%、33.53%,載藥量分別為0.41%、0.46%、0.41%、0.89%、0.37%。表明水浴溫度對包封率有影響,當其為55 ℃時2種主藥的包封率和載藥量均較高。

    2.6 處方設計與優(yōu)化選擇

    2.6.1 正交試驗 根據(jù)單因素試驗結(jié)果,篩選出 4 個主要考察因素,包括每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量(A)、莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比(B)、維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比(C)、水浴溫度(D),每個因素選取 3 個不同水平,以包封率和載藥量之和(S)為評價指標,設計L9(34)正交試驗法優(yōu)化ZTOC-LPS的制備工藝。因素與水平見表2,正交試驗設計與結(jié)果見表3,方差分析結(jié)果見表4。

    2.6.2 結(jié)果分析 由表3和表4結(jié)果可知,以S莪術油為評價指標,各因素對包封率和載藥量的影響效果依次為 C>B>D>A,因素B、C對包封率和載藥量有顯著影響,最優(yōu)處方制備工藝為 A1B3C3D3。以S維A酸為評價指標,各因素對包封率和載藥量的影響效果依次為 D>C>B>A,其中因素B、C、D對包封率和載藥量有顯著影響,最優(yōu)處方制備工藝為 A1B3C3D3。以2種藥物的包封率和載藥量為指標篩選出的處方制備工藝均為A1B3C3D3,故選此為最優(yōu)制備工藝,即每1 mL脂質(zhì)體中SPC加入量為 4 mg,SPC-CH質(zhì)量比為3 ∶ 1,莪術油-脂質(zhì)質(zhì)量比為1 ∶ 9,維A酸-脂質(zhì)質(zhì)量比為1 ∶ 70,水浴溫度為55 ℃。

    2.6.3 驗證試驗 以乙醇注入法按最優(yōu)處方及制備工藝制備 3 批處方量為10 mL的ZTOC-LPS,即精密量取SPC 40.00 mg、CH 13.33 mg、莪術油 5.93 mg、維A酸0.76 mg,其余操作同“2.4.2”項下方法(水浴溫度為55 ℃);采用超速離心法分離脂質(zhì)體及游離藥物,測定其包封率和載藥量。結(jié)果,莪術油包封率和載藥量分別為(64.63±1.00)%、(9.09±0.14)%(n=3),維A酸包封率和載藥量分別為(90.33±0.72)%、(1.43±0.02)%(n=3)。表明所得最優(yōu)處方及制備工藝制備的ZTOC-LPS的工藝穩(wěn)定、重現(xiàn)性好。

    2.7 ZTOC-LPS的質(zhì)量評價

    2.7.1 形態(tài) 用滴管吸取ZTOC-LPS 1滴置于碳銅網(wǎng)上,靜置 1 min 后用濾紙片吸干,再滴加 1%磷鎢酸溶液于銅網(wǎng)上負染 1 min,自然揮干,透射電鏡下觀察脂質(zhì)體形態(tài)并拍攝照片。結(jié)果,ZTOC-LPS粒徑外觀呈球狀或類球狀,結(jié)構(gòu)完整,為單室脂質(zhì)體。透射電鏡圖詳見圖3。

    2.7.2 pH值 用pH計平行測定 3 批ZTOC-LPS混懸液的pH值,每批測定 3 次。結(jié)果,3批樣品的pH平均值分別為6.71、6.65、6.62,pH值均接近于6.5,而磷脂在pH為6.5時最穩(wěn)定[20],故所制ZTOC-LPS較為穩(wěn)定。

    2.7.3 粒徑與Zeta電位 取3批ZTOC-LPS混懸液適量,用電位粒度分析儀測定其粒徑和Zeta電位。結(jié)果,平均粒徑為(257.41±7.58) nm(n=3),多分散系數(shù)(PDI)為0.10±0.04(n=3),Zeta電位為(-38.77±0.81) mV(n=3)。表明ZTOC-LPS粒徑分布均勻,穩(wěn)定性較好。

    2.7.4 脂質(zhì)體物理穩(wěn)定性 采用離心加速試驗進行考察。取 2 mL ZTOC-LPS混懸液置于 10 mL離心管中,3 000 r/min(離心半徑為16 cm,下同)離心 15 min后,棄上層液體 1.4 mL,將剩余液體搖勻,用微量取樣器取 0.4 mL置于10 mL量瓶中,用蒸餾水定容,在 450 nm波長下測定濁度A。另精密量取未離心的脂質(zhì)體樣品 0.4 mL,同上操作,測定濁度A0。離心穩(wěn)定常數(shù)(KE)=│A-A0│/A0×100%。結(jié)果,3批樣品的KE分別為7.7、8.5、9.1,表明體系的物理穩(wěn)定性較好[21],提示所制備的ZTOC-LPS的具有良好的物理穩(wěn)定性。

    2.7.5 脂質(zhì)體留樣穩(wěn)定性 將2批ZTOC-LPS分別于(25±2) ℃和(4±2) ℃條件下放置,再分別于放置0、15、30 d取樣,觀察其外觀性狀,測定粒徑及包封率等穩(wěn)定性參數(shù)。結(jié)果,ZTOC-LPS在(25±2) ℃下放置30 d后包封率下降較快,粒徑及Zeta電位變化也較大,PDI上升也較快,且通過觀察發(fā)現(xiàn)有少量微粒沉降聚集。而放置于(4±2) ℃下的樣品的包封率、粒徑、Zeta電位及PDI結(jié)果均較優(yōu),通過觀察未發(fā)現(xiàn)微粒有沉降聚集等現(xiàn)象,結(jié)果見表5。

    3 討論

    前期研究表明,莪術油與維A酸可通過局部起效而協(xié)同治療銀屑病,對于局部應用藥物,脂質(zhì)體不僅對其有良好的促滲透作用,而且還可以降低藥物的全身吸收,使藥物集中于病灶部位而對病變細胞發(fā)揮治療作用,從而提高其生物利用度,降低毒副作用[22]。因此,本試驗嘗試將莪術油與維A酸兩藥共同包封于脂質(zhì)體內(nèi)制成ZTOC-LPS。

    在建立ZTOC-LPS中藥物含量測定方法時,筆者選擇吉馬酮(牻牛兒酮)為莪術油的含量測定指標,這是因為吉馬酮是2015年版《中國藥典》(一部)中莪術油及莪術藥材項下的主要質(zhì)量控制指標成分。包封率是評價脂質(zhì)體制劑質(zhì)量好壞的最重要指標,也是其能否發(fā)揮較普通制劑高效、低毒特點的關鍵[23]。由于超速離心法簡單、快速、易行,因此本試驗選擇超速離心法來分離脂質(zhì)體和游離藥物,再通過 HPLC法測定包封率,所得試驗結(jié)果穩(wěn)定、可靠。

    脂質(zhì)體的制備方法很多,如薄膜分散法、逆相蒸發(fā)法、乙醇注入法等,本試驗選用了 3 種傳統(tǒng)的制備方法分別制備ZTOC-LPS,以包封率和載藥量為評價指標進行評價。結(jié)果發(fā)現(xiàn)用乙醇注入法制備的脂質(zhì)體的包封率和載藥量較高,且該法條件溫和,操作簡單方便,廉價,不易使敏感藥物成分發(fā)生變性,可以避免使用有毒的有機溶劑。通過單因素試驗發(fā)現(xiàn),影響ZTOC-LPS包封率和載藥量的影響因素有SPC的加入量、脂質(zhì)中SPC-CH質(zhì)量比、莪術油及維A酸與脂質(zhì)質(zhì)量比、水浴溫度。在此基礎上采用了正交試驗法對ZTOC-LPS的處方制備工藝進行優(yōu)化,主要考察了4個因素不同水平對藥物包封率和載藥量的影響,最終篩選出了最優(yōu)處方及制備工藝,再通過驗證試驗證明了篩選出的處方與制備工藝條件的穩(wěn)定性和可重現(xiàn)性。

    粒徑大小是脂質(zhì)體質(zhì)量控制的關鍵之一,Zeta 電位是衡量荷電量的重要指標,是衡量脂質(zhì)體穩(wěn)定性的重要指標之一,PDI是脂質(zhì)體粒子分布均勻性的直觀呈現(xiàn)。所以本試驗對所制脂質(zhì)體的粒徑、Zeta電位和PDI進行了測定。結(jié)果表明,粒徑大小均勻,呈正態(tài)分布;表面荷負電,電位較高,表明脂質(zhì)在貯存時穩(wěn)定性更好,不易發(fā)生聚沉。以離心加速試驗評價了脂質(zhì)體的穩(wěn)定性,結(jié)果表明其具有良好的物理穩(wěn)定性。再考察了脂質(zhì)體的留樣穩(wěn)定性,發(fā)現(xiàn)將所制樣品在(4±2) ℃條件下放置 1 個月,各項考察指標均未發(fā)生明顯變化,提示其放置于 4 ℃條件下穩(wěn)定性好。

    本試驗成功地將莪術油與維A酸同時包封于脂質(zhì)體中制備成了復方脂質(zhì)體,所采用的處方與制備工藝簡單可行、重現(xiàn)性好、包封率和載藥量較高、穩(wěn)定性較好,可為后續(xù)復方莪術油新劑型的研究提供參考。

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    (收稿日期:2017-06-12 修回日期:2017-09-04)

    (編輯:劉 萍)

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