郗雪艷 付 飛 樊 旭 杜伯雨
(湖北醫(yī)藥學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,十堰 442000)
①本文為國家自然科學(xué)基金應(yīng)急管理項目(81650019)和湖北省科技廳面上項目(2017CFB551,2017CFB462)。
②通訊作者,E-mail:du.boyu@hotmail.com。
作者簡介:郗雪艷,女,博士,副研究員,主要從事腫瘤免疫方面研究,E-mail:xixueyan2001@126.com。
據(jù)我國2011年流行病學(xué)調(diào)查結(jié)果顯示,結(jié)腸癌在惡性腫瘤發(fā)病率和死亡率中均排第五位,分別為23.03/10 萬和11.11/10萬[1]。由于傳統(tǒng)術(shù)后化療藥物毒副作用大、靶性不強(qiáng)、療效差且易產(chǎn)生耐藥性,術(shù)后復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移是結(jié)腸癌治療失敗的主要原因。因此尋找特異性靶點(diǎn)并克服結(jié)腸癌的耐藥性是結(jié)腸癌治療中亟待解決的問題之一,對降低結(jié)腸癌的發(fā)病率并提升病人的生存質(zhì)量至關(guān)重要。越來越多的證據(jù)表明,結(jié)腸癌組織中可能存在數(shù)量稀少的結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞(Cancer stem cells,CSC)[2-4],其具有自我更新、增殖和分化的潛能,在結(jié)腸癌的發(fā)生、發(fā)展、復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移中起重要作用。結(jié)腸癌組織中腫瘤干細(xì)胞標(biāo)記物CD133和CD44均高表達(dá),O′Brien等[5]最早在2007年發(fā)現(xiàn)人結(jié)腸癌手術(shù)切除標(biāo)本中,分離得到的細(xì)胞有20%左右是CD133+細(xì)胞,并且這種細(xì)胞具有干細(xì)胞特征,能夠在小鼠體內(nèi),產(chǎn)生新的腫瘤細(xì)胞。由結(jié)腸癌組織分離得到的單一CD44+腫瘤細(xì)胞在體外即可形成腫瘤球,并且在裸鼠體內(nèi)接種100個CD44+細(xì)胞即可成瘤[6],說明CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞具有很強(qiáng)的腫瘤干細(xì)胞特征。
姜黃素(Curcumin)是一種從姜黃根莖中提取的生物活性物質(zhì),屬酸性多酚類化合物,具有抗炎、抗氧化、抗菌等藥理作用[7]。近年來,由于其抗腫瘤活性強(qiáng),抗腫瘤譜廣、毒副作用小等特點(diǎn),已被廣泛應(yīng)用到多種腫瘤治療的研究中,其在結(jié)腸癌治療中的作用尤為引人關(guān)注。研究表明,姜黃素對結(jié)腸癌細(xì)胞具有細(xì)胞毒作用[8,9],可導(dǎo)致腫瘤干細(xì)胞標(biāo)記物CD44和CD166表達(dá)下調(diào),干細(xì)胞成球數(shù)量明顯減少[10],并且姜黃素衍生物GO-Y030可抑制結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞的活性和增殖效應(yīng),抑制結(jié)腸癌細(xì)胞移植瘤生長[11],提示姜黃素對結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞具有抑制作用。
本研究中,我們著重探討姜黃素對CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞的影響。我們首先證明姜黃素可抑制結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116和HT-29細(xì)胞的增殖,然后通過Real-time PCR和流式細(xì)胞術(shù)實(shí)驗證明姜黃素處理的結(jié)腸癌細(xì)胞CD44表達(dá)下調(diào),最后磁珠分選出CD44+的結(jié)腸癌細(xì)胞,證明姜黃素可抑制CD44+細(xì)胞的增殖。本文結(jié)果為探討姜黃素作為結(jié)腸癌治療輔助性藥物的可能行提供依據(jù)。
1.1材料 姜黃素,McCoy′s 5A 基礎(chǔ)培養(yǎng)基和MTT購自Sigma-Aldrich公司;胎牛血清購自Gibco公司;FITC標(biāo)記的CD44抗體購自Ebioscience公司;CD44分選磁珠及磁珠分選專用緩沖液購自Miltenyi公司;Triozol購自Invitrogen公司;逆轉(zhuǎn)錄酶購自Promega公司;SYBR Green購自ToBoYo公司;PCR引物由生工公司合成。
1.2方法
1.2.1細(xì)胞培養(yǎng) 結(jié)腸癌細(xì)胞系HCT116和HT-29購自中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所。細(xì)胞生長在含10%胎牛血清和1%青鏈霉素的McCoy′s 5A完全培養(yǎng)基中,含5%CO2的37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.2.2細(xì)胞增殖實(shí)驗 0.25%胰酶+0.02% EDTA消化HCT116和HT-29細(xì)胞后,用完全培養(yǎng)基制備成單個細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105個/ml。向96孔板中每孔加入100 μl細(xì)胞懸液,37℃過夜培養(yǎng)。然后加入不同劑量的姜黃素處理24 h,每孔加入10 μl MTT作用4 h,最后加入150 μl二甲基亞砜溶解甲臢顆粒,490 nm處讀取吸光度值。細(xì)胞存活率=(實(shí)驗組平均OD值-空白對照組平均OD值)/(對照組平均OD值-空白對照組平均OD值)×100%。
1.2.3Real-time PCR 通過 Real-time PCR檢測對照組和實(shí)驗組細(xì)胞中CD44 mRNA 的表達(dá)水平。不同濃度姜黃素處理細(xì)胞 24 h后,提取各組細(xì)胞總 RNA,MMLV反轉(zhuǎn)錄成cDNA,再以 cDNA 為模板,通過 PCR 擴(kuò)增CD44,內(nèi)參為GAPDH。CD44正向引物為:5′-GGCACCCGCTATGTCCAGAA-3′;CD44反向引物為5′-CCTCCTGAAGTGCTGCTCCT-3′;GAPDH正向引物為:5′-AGCTCACTGGCATGGC-CTTC-3′;GAPDH反向引物為5′-CGCCTGCTTCACCACCTTCT-3′。之后對溶解曲線進(jìn)行分析,確保只有單一產(chǎn)物被擴(kuò)增,然后使用Bio-rad CFX mana-ger3.1軟件進(jìn)行基因表達(dá)分析。
1.2.4流式細(xì)胞術(shù) 離心收集不同劑量姜黃素和5-氟脲嘧啶(5-FU)處理24 h后的HCT116和HT-29細(xì)胞,PBS洗細(xì)胞2次后,以100 μl PBS重懸細(xì)胞,加入1 μl FITC標(biāo)記的 CD44抗體,4℃避光作用30 min 后,應(yīng)用Beckman公司CytExpert流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表面CD44表達(dá)情況。
1.2.5磁珠分選 CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞分選采用Miltenyi公司的陽性分選磁珠,所有分選過程采用Miltenyi公司專用的緩沖液(130-091-221)。收集細(xì)胞懸液后,加入緩沖液1 ml,300 g離心5 min,棄上清,將細(xì)胞沉淀重懸于80 μl緩沖液中,加入CD44+分選磁珠20 μl,4℃孵育30 min,期間反復(fù)混勻數(shù)次,然后加入緩沖液1 ml重懸細(xì)胞,300 g離心5 min,棄上清,同樣操作重復(fù)洗細(xì)胞2次,沉淀重懸于500 μl緩沖液中,將上述細(xì)胞懸液加入分選柱中,收集滴落的細(xì)胞液,此為陰性分選的細(xì)胞,待細(xì)胞懸液滴入完畢后,將分選柱從磁力架上移下,向分選柱中加入500 μl洗液,以活塞推動細(xì)胞,收集細(xì)胞,此為陽性分選的細(xì)胞。分選完畢的細(xì)胞以流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行鑒定。
2.1姜黃素抑制結(jié)腸癌細(xì)胞增殖 不同劑量姜黃素作用于結(jié)腸癌HCT116和HT-29細(xì)胞24 h后,應(yīng)用MTT方法檢測姜黃素對兩種結(jié)腸癌細(xì)胞增殖的影響,結(jié)果如圖1所示,姜黃素可抑制HCT116和HT-29細(xì)胞增殖,并呈現(xiàn)劑量依賴性關(guān)系。
2.2姜黃素可致結(jié)腸癌細(xì)胞CD44 mRNA表達(dá)下調(diào) 不同劑量的姜黃素處理結(jié)腸癌細(xì)胞24 h后,應(yīng)用Real-time PCR檢測結(jié)腸癌細(xì)胞干細(xì)胞標(biāo)記物CD44的表達(dá)水平,以GAPDH作為內(nèi)參,結(jié)果如圖2所示,不同劑量的姜黃素處理結(jié)腸癌細(xì)胞后,干細(xì)胞標(biāo)記物CD44的表達(dá)水平在HCT116和HT-29兩種結(jié)腸癌細(xì)胞系中均呈現(xiàn)劑量依賴性下降。
2.3姜黃素可致結(jié)腸癌細(xì)胞表面CD44表達(dá)下降 分別應(yīng)用姜黃素和5-FU處理結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116和HT-29,流式細(xì)胞術(shù)檢測結(jié)腸癌細(xì)胞表面CD44表達(dá)的水平,結(jié)果如圖3所示,隨著姜黃素劑量增加,結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116和HT-29表面CD44表達(dá)水平逐漸下降;而不同濃度的結(jié)腸癌廣譜化療藥物5-FU雖然可以有效的殺傷結(jié)腸癌細(xì)胞,但并不能引起CD44表達(dá)下調(diào)。
圖1 姜黃素抑制結(jié)腸癌細(xì)胞系HCT116和HT-29增殖Fig.1 Proliferation inhibition effect of curcumin against colon cancer cells,HCT116 and HT-29
圖2 姜黃素處理后的結(jié)腸癌細(xì)胞系CD44的表達(dá)下調(diào)Fig.2 Downregulation of CD44 expression in colon cancer cells treated with curcuminNote: *.P<0.05.
2.4姜黃素抑制CD44+的結(jié)腸癌干細(xì)胞的增殖 應(yīng)用磁珠分選法分離結(jié)腸癌細(xì)胞系HCT116和HT-29中CD44+和CD44-細(xì)胞,加入不同劑量姜黃素和5-FU處理24 h后,檢測細(xì)胞增殖情況,結(jié)果如圖4所示,不同劑量的姜黃素對CD44+細(xì)胞的增殖抑制作用明顯強(qiáng)于其對CD44-細(xì)胞的作用,而不同劑量的5-FU對CD44+和CD44-結(jié)腸癌細(xì)胞的增殖抑制作用在兩種細(xì)胞之間并未有明顯差別,提示姜黃素可特異性抑制CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞的增殖。
圖3 姜黃素處理后的結(jié)腸癌細(xì)胞CD44表達(dá)下降Fig.3 Downregulation of CD44 in colon cancer cell after treated by curcumin
圖4 姜黃素可以抑制CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞的增殖Fig.4 Proliferation inhibition effects of curcumin against CD44+ colon cancer cellsNote: *.P<0.05.
作為我國發(fā)病率和死亡率較高的惡性腫瘤,結(jié)腸癌當(dāng)前仍以手術(shù)治療為主,輔以放療和化療。但隨化療時間的延長,結(jié)腸癌細(xì)胞會逐漸產(chǎn)生多藥耐藥性,導(dǎo)致化療失敗。越來越多的研究發(fā)現(xiàn),耐藥性的產(chǎn)生與腫瘤組織中存有少量的腫瘤干細(xì)胞有關(guān)[12-14]。因此特異性地消滅腫瘤干細(xì)胞,使腫瘤細(xì)胞失去分化潛能似乎成為腫瘤治療的又一個希望[15]。
近年來,姜黃素對腫瘤干細(xì)胞的作用引人關(guān)注,姜黃素可導(dǎo)致腫瘤干細(xì)胞標(biāo)記物CD44和CD166表達(dá)下調(diào),干細(xì)胞成球數(shù)量明顯減少[8]。本研究中,我們著重探討姜黃素對CD44+細(xì)胞的影響。本研究結(jié)果首先提示姜黃素可抑制結(jié)腸癌細(xì)胞HCT116和HT-29細(xì)胞增殖,應(yīng)用姜黃素處理后的結(jié)腸癌細(xì)胞,其結(jié)腸癌特異性干細(xì)胞表面標(biāo)記物 CD44在兩株結(jié)腸癌細(xì)胞中均有不同程度下調(diào)。同時流式細(xì)胞術(shù)分析結(jié)果提示姜黃素處理的結(jié)腸癌細(xì)胞表面CD44表達(dá)水平隨姜黃素劑量增加而下調(diào),而添加5-FU的結(jié)腸癌細(xì)胞表面并未有明顯的CD44表達(dá)下調(diào)。此外,應(yīng)用磁珠分選獲得CD44+和CD44-的結(jié)腸癌細(xì)胞后,加入不同劑量的姜黃素處理細(xì)胞,結(jié)果證明姜黃素可特異性抑制CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞增殖。由于CD44+結(jié)腸癌細(xì)胞已被認(rèn)為具有很強(qiáng)的腫瘤干細(xì)胞特征[6,16,17],綜合以上結(jié)果,提示姜黃素可通過抑制結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞增殖達(dá)到治療結(jié)腸癌的目的。
大量研究表明,姜黃素可以通過直接或間接影響腫瘤干細(xì)胞自我更新通路干預(yù)腫瘤干細(xì)胞生長,例如 Wnt/β-catenin,Hedgehog 和Notch通路[18-20],但其如何調(diào)控結(jié)腸癌干細(xì)胞CD44的表達(dá)尚不明確,有待進(jìn)一步研究。而姜黃素作為一種植物來源的藥物,又表現(xiàn)出對結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞的抑制效果,未來或可成為治療結(jié)腸癌、抑制結(jié)腸癌干細(xì)胞生長、防止結(jié)腸癌復(fù)發(fā)的一個重要靶向藥物。
參考文獻(xiàn):
[1] Chen W,Zheng R,Zeng H,etal.Annual report on status of cancer in China,2011[J].Chin J Cancer Res,2015,27(1):2-12.
[2] Farhana L,Antaki F,Anees MR,etal.Role of cancer stem cells in racial disparity in colorectal cancer[J].Cancer Med,2016,5(6):1268-1278.
[3] Dalerba P,Dylla SJ,Park IK,etal.Phenotypic characterization of human colorectal cancer stem cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(24):10158-1063.
[4] 程家平,黎 江,蘇 弦,等.Oct4B1在結(jié)直腸癌干細(xì)胞中的表達(dá)及意義[J].中國免疫學(xué)雜志,2016,32(6):794-797.
Cheng JP,Li J,Su X,etal.Expression and significance of Oct4B1 in colorectal cancer stem cells[J].Chin J Immunol,2016,32 (6):794-797.
[5] O′Brien CA,Pollett A,Gallinger S,etal.A human colon cancer cell capable of initiating tumour growth in immunodeficient mice[J].Nature,2007,445(7123):106-110.
[6] Du L,Wang H,He L,etal.CD44 is of functional importance for colorectal cancer stem cells[J].Clin Cancer Res,2008,14(21):6751-6760.
[7] Zang S,Liu T,Shi J,etal.Curcumin:a promising agent targeting cancer stem cells[J].Anticancer Agents Med Chem,2014,14(6):787-792.
[8] Chen H,Zhang ZS,Zhang YL,etal.Curcumin inhibits cell proliferation by interfering with the cell cycle and inducing apoptosis in colon carcinoma cells[J].Anticancer Res,1999,19(5A):3675-3680.
[9] 文坤明,冷 敏,程家平,等.姜黃素通過抑制STAT3通路調(diào)控人結(jié)腸癌耐奧沙利鉑細(xì)胞株的耐藥性[J].中國免疫學(xué)雜志,2015,31(8):1056-1059.
Wen KM,Leng M,Cheng JP,etal.Curcumin reversal multidrug resistance through downregulation of STAT3 signaling in colon cancer cell lines resistant to oxaliplatin[J].Chin J Immunol,2015,31 (8):1056-1059.
[10] Yu Y,Kanwar SS,Patel BB,etal.Elimination of colon cancer stem-like cells by the combination of curcumin and FOLFOX[J].Transl Oncol,2009,2(4):321-328.
[11] Lin L,Liu Y,Li H,etal.Targeting colon cancer stem cells using a new curcumin analogue,GO-Y030[J].Br J Cancer,2011,105(2):212-20.
[12] Sordillo PP,Helson L.Curcumin and cancer stem cells:curcumin has asymmetrical effects on cancer and normal stem cells[J].Anticancer Res,2015,35(2):599-614.
[13] Mukherjee S,Mazumdar M,Chakraborty S,etal.Curcumin inhibits breast cancer stem cell migration by amplifying the E-cadherin/beta-catenin negative feedback loop[J].Stem Cell Res Ther,2014,5(5):116.
[14] Buhrmann C,Kraehe P,Lueders C,etal.Curcumin suppresses crosstalk between colon cancer stem cells and stromal fibroblasts in the tumor microenvironment:potential role of EMT[J].PLoS One,2014,9(9):e107514.
[15] 黃 雪,鄭媛媛,李富榮.免疫細(xì)胞靶向治療結(jié)腸癌腫瘤干細(xì)胞[J].中國免疫學(xué)雜志,2017,33(1):156-160.
Huang X,Zheng YY,Li FR,etal.Targeting treatment of colon cancer stem cells by using immune cells[J].Chin J Immunol,2017,33 (1):156-160.
[16] Su YJ,Lai HM,Chang YW,etal.Direct reprogramming of stem cell properties in colon cancer cells by CD44[J].EMBO J,2011,30(15):3186-3199.
[17] Yan Y,Zuo X,Wei D.Concise review:emerging role of CD44 in cancer stem cells:a promising biomarker and therapeutic target[J].Stem Cells Transl Med,2015,4(9):1033-1043.
[18] Batsaikhan BE,Yoshikawa K,Kurita N,etal.Cyclopamine decreased the expression of Sonic Hedgehog and its downstream genes in colon cancer stem cells[J].Anticancer Res,2014,34(11):6339-6344.
[19] Srinivasan T,Walters J,Bu P,etal.NOTCH signaling regulates asymmetric cell fate of fast- and slow-cycling colon cancer-initiating cells[J].Cancer Res,2016,76(11):3411-3421.
[20] Wang D,Kong X,Li Y,etal.Curcumin inhibits bladder cancer stem cells by suppressing Sonic Hedgehog pathway[J].Biochem Biophys Res Commun,2017,493(1):521-527.