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    黑曲霉F5產高溫α-糖化酶酶學性質及產酒精能力研究

    2016-11-04 09:20:28常呂珍楊云娟張潤美李萬軍牟興玲黃遵錫唐湘華
    釀酒科技 2016年10期
    關鍵詞:糖化酶黑曲霉淀粉酶

    常呂珍,楊云娟,2,張潤美,李萬軍,牟興玲,黃遵錫,2,唐湘華,2

    (1.云南師范大學生命科學學院,云南昆明650500;2.云南省生物質能與環(huán)境生物技術重點實驗室,云南昆明650500)

    黑曲霉F5產高溫α-糖化酶酶學性質及產酒精能力研究

    常呂珍1,楊云娟1,2,張潤美1,李萬軍1,牟興玲1,黃遵錫1,2,唐湘華1,2

    (1.云南師范大學生命科學學院,云南昆明650500;2.云南省生物質能與環(huán)境生物技術重點實驗室,云南昆明650500)

    通過對黑曲霉F5的代謝產物糖化酶進行了酶學性質的研究,實驗結果表明,該酶的最適反應溫度為65℃,最適反應pH值為5.0。在80℃條件下熱穩(wěn)定半衰期為2.67 min;酶促動力學中,Km值為0.836 mg/mL,Vmax為2.255 mmoL/L·min。通過對1%的底物進行糖化實驗,55 min后其DE值為67.5。產酒精能力測試中,料水比1∶3,添加30 IU/g原料的糖化酶,在65℃、pH5.0條件下酶解20 h,冷卻接種1%液體釀酒酵母,以28℃培養(yǎng)9 d,酒精度為19.6%vol/60 g干物質,原料出酒率為32.2%(v/w)。

    黑曲霉;糖化酶;酶學性質;半衰期;糖化率;酒精度

    糖化酶(Glucoamylase,EC 3.2.1.1)又名葡萄糖淀粉酶,是一種酸性糖苷水解酶,從淀粉或者淀粉類似物的非還原端按順序切開α-1,4糖苷鍵,也能水解α-1,6糖苷鍵、α-1,3糖苷鍵,產生葡萄糖。目前,糖化酶廣泛用于燃料乙醇、固態(tài)白酒、飼料行業(yè)、抗菌素、有機酸、氨基酸等發(fā)酵工業(yè)和輕工紡織業(yè),是世界上產量最大和用途最廣的酶類[1-6]。

    糖化酶的開發(fā)與創(chuàng)新是當前發(fā)展的一項重要任務,如何最大化提升糖化酶的功能和改造構建酶蛋白的熱穩(wěn)定性都是當前開發(fā)的研究方向。我國大量的科研工作者如賀瑩[7]、粱新紅等[8]對黑曲霉產酶性質進行了研究,發(fā)現(xiàn)黑曲霉產酶的最適溫度在40~60℃之間,最適pH值在3.5~7.0之間;陳冠軍等[9]對黑曲霉產酶熱穩(wěn)定性進行研究,發(fā)現(xiàn)糖化酶在60℃時易失活;劉洋[10]對黑曲霉糖化酶的熱穩(wěn)定性機制進行研究,發(fā)現(xiàn)向GAM-1和GAM-2中分別加入1 M山梨醇和海藻糖后,在75℃和80℃條件下,熱失活常數(shù)減小,半衰期延長。在對糖化酶的應用研究中,王中林[11]、張嚴洪[12]、張守財[13]、郭本躍[14]等分別對不同的生產菌株進行產酒精能力測試,發(fā)現(xiàn)不同的生產菌在不同條件下獲得的酒精含量不同。糖化酶的添加縮短了酒精發(fā)酵周期,提高了酵母產酒精能力。

    本實驗對高溫α-糖化酶進行了酶學性質的分析及研究,并利用其糖化高粱原料進行產酒精能力測試,從云南小曲清香型酒的生產工藝考慮,旨在加強固態(tài)發(fā)酵的后續(xù)糖化能力和酒質的控制,加強原料的利用率。

    1 材料與方法

    1.1材料及儀器

    黑曲霉F5,由云南師范大學微生物實驗室選育保藏。

    發(fā)酵培養(yǎng)基(%):馬鈴薯浸出汁30、蛋白胨2、磷酸二氫氨0.4、MgSO40.05、FeSO40.001、KCl 0.05、pH4.5,定容至100 mL。

    儀器設備:移液槍、磁力攪拌器、離心機、超凈臺、電熱恒溫水浴鍋、高壓滅菌鍋、搖床、渦旋振蕩器、紫外分光光度計、pH計。

    1.2實驗方法

    1.2.1葡萄糖標準曲線的制作[15]

    1.2.2粗酶液的制備

    配制發(fā)酵培養(yǎng)基100 mL,在121℃、0.1 MPa下滅菌30 min,冷卻,接種培養(yǎng)3 d的1 cm2左右F5孢子菌絲體,在30℃、188 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)4 d,取發(fā)酵培養(yǎng)液離心,上清液作為待測酶液使用。

    1.2.3酶活力測定

    取3支試管,分別編號為空白管、樣品管A、樣品管B,向3支管中分別加入pH5.0的1%可溶性淀粉底物1.8 mL,65℃保溫5 min;向樣品管A、B中加入一定稀釋梯度的待測酶液0.2 mL,65℃精確保溫15 min后加入3 mL DNS試劑終止反應,混合均勻;另向空白管中補加待測酶液0.2 mL;將3支管放入沸水浴中煮沸5 min,流水冷卻,加入10 mL蒸餾水,渦旋振蕩器上混勻,540 nm下測定吸光度。

    酶活定義:在pH5.0、65℃條件下,1 mL酶液1 min水解1%的淀粉底物產生1 μmol還原糖所需要的酶量為1個酶活單位,用U表示。

    1.3α-糖化酶最適反應溫度、最適反應pH值的分析

    最適反應溫度的測定:取制備好的粗酶液分別在溫度為20℃、30℃、40℃、50℃、55℃、60℃、65℃、70℃、75℃、80℃條件下反應15 min,測定酶活,分析最適反應溫度。

    最適反應pH值的測定:取制備好的粗酶液分別在pH值為3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0的1%淀粉底物中,65℃反應15 min,測定酶活,分析最適反應pH值。

    1.4α-糖化酶耐熱穩(wěn)定性分析

    將制備好的粗酶液放在80℃電熱恒溫水浴鍋中分別保溫0、10 min、20 min、30 min、40 min、50 min、60 min后取該保溫不同時間的粗酶液進行酶活力測定,并分析其耐熱穩(wěn)定性。

    1.5α-糖化酶反應動力學

    分別配制pH5.0,濃度為0、1.25 mg/mL、2.5 mg/mL、5 mg/mL、10 mg/mL、20 mg/mL、40 mg/mL的可溶性淀粉底物各1.8 mL,放置于65℃條件下預熱5 min,加入0.4 U的糖化酶反應5 min,測定還原糖含量,通過雙倒數(shù)法計算Km和Vmax。

    1.6α-糖化酶對淀粉底物的降解能力分析

    取pH5.0,1%可溶性淀粉底物35 mL放置于65℃恒溫水浴鍋中預熱5 min,然后加入5 mL酶液混合均勻,每隔5 min,取出1 mL測定還原糖含量,總反應時間為60 min。

    1.7淀粉酶活力測定[16]

    1.8α-糖化酶添加量對酵母發(fā)酵產酒精能力的影響

    稱取5份60 g的高粱經沖洗后將其分別放入5個300 mL的錐形瓶中,然后按3∶1的水料比加入熱水浸泡24 h;以121℃、0.1 MPa滅菌30 min,將滅菌冷卻后的高粱按每克原料添加5 U、10 U、15 U、20 U、25 U、30 U、35 U、40 U的糖化酶的比例添加,攪拌均勻放在65℃的恒溫箱中反應1 d,然后每瓶加入3%經過活化的酵母10 mL攪拌均勻后放在28℃的恒溫箱中發(fā)酵9 d,對發(fā)酵液蒸餾測定酒精含量。

    2 結果與分析

    2.1葡萄糖標準曲線的制作(圖1)

    圖1 葡萄糖標準曲線圖

    由圖1可知,葡萄糖標準曲線為y=1.02907x+ 0.00731,R2=0.99941>0.95,線性關系顯著,可用于后續(xù)的研究工作。

    2.2α-糖化酶最適反應溫度、最適反應pH值的分析

    由圖2、圖3可知,黑曲霉F5菌株最適反應溫度為65℃,低于50℃,酶活性不足,高于80℃則酶蛋白變性、失活;最適pH值為5.0,4~6之間,酶活力能保持80%以上,比較適合與淀粉酶配合使用進行糖化過程。

    圖2 最適反應溫度

    圖3 最適反應pH值

    2.3α-糖化酶耐熱穩(wěn)定性分析(圖4)

    圖4 耐熱穩(wěn)定性分析

    2.4α-糖化酶反應動力學

    該由圖5進行雙倒數(shù)曲線的繪制得到圖6,由圖6得到公式:糖化酶的Km值為0.836 mg/mL,最大反應速度Vmax為2.255 mmoL(葡萄糖)/L·min。由圖5和圖6可知,該酶的動力學常數(shù)Km=0.836 mg/mL,Vmax=2.255 mmoL/L·min。 Km值越低,表明酶與底物的結合力大,有助于酶對底物的降解。

    圖5 酶反應動力學圖

    圖6 酶反應動力學雙倒數(shù)曲線圖

    2.5α-糖化酶對底物的降解能力分析(圖7)

    圖7 酶對底物的降解實驗圖

    由圖7可看出,該酶添加量為1 U/mL,隨著反應時間的延長,該酶得到的還原糖含量越來越高。當反應時間達到55 min時,形成的還原糖含量最大為5.90 mg/mL,淀粉轉化率為67.51%。隨著后期時間越來越長,還原糖含量維持平衡,糖化酶的催化能力受到一定的抑制效應。

    2.6淀粉酶活力測定

    按照國標GB/T 24401—2009對糖化酶中是否含有淀粉酶進行測定分析,得到淀粉酶活力為0.008 U,對粗酶液進行糖化酶的測定,得到糖化酶活力為91.3 U,表明該酶受到淀粉酶的協(xié)調效應很弱,該黑曲霉F5形成的產物基本上為糖化酶,對應用于只需糖化酶的其他產品開發(fā)帶來了一定的運用價值。

    2.7α-糖化酶添加量對產酒精能力的測試(圖8)

    圖8 不同酶添加量對產酒精能力的影響

    由圖8可知,出酒率和酒精含量都呈上升趨勢,出酒率為32.2%時,料水比為1∶3,酒精度達到19.6%vol/60 g干物質,該糖化酶在酒精發(fā)酵的應用中有助于提高原料利用率,能獲得較高的酒精度。

    3 結論

    通過對黑曲霉F5的代謝產物糖化酶進行了酶學性質的研究,結果表明,該酶最適溫度為65℃,最適pH5.0。該酶的耐熱溫度比國內報告的高,可以用于制糖行業(yè)、食品行業(yè)和飼料行業(yè)的應用。在80℃條件下進行耐熱穩(wěn)定性分析,得到半衰期為2.67 min,對在溫度較高的飼料顆粒制造業(yè)中有一定的應用價值,只要在80℃條件下不超過2.67 min,就能保證50%以上的酶活。酶反應動力學中,Km為0.836 mg/mL,最大反應速度Vmax為2.255 mmoL/L·min,表明該酶對淀粉底物的結合程度較強,Km比方善康等[17]報道的以玉米淀粉為底物對糖化酶組分分析的要大,Vmax較小。但由于酶反應溫度條件不一樣,可比性較小。通過對1%的淀粉底物進行糖化轉化實驗,55 min后其DE值為67.5%。對淀粉酶活力進行測定只有0.08 U,粗酶液樣品糖化酶活力為91.3 U/g,表明該酶受到淀粉酶的協(xié)調效應很弱。通過產酒實驗發(fā)現(xiàn),出酒率為32.2%時,酒精度為19.6%vol/60 g干物質,這比根霉糖化酶用于產酒精能力要強。從云南小曲清香型酒的生產工藝考慮,旨在加強固態(tài)發(fā)酵的后續(xù)糖化能力和酒質的控制,加強原料的利用率。

    [1]呂麗華,梁麗榮,趙良啟.高糖化酶活菌株的選育及其在山西老陳醋釀造中的應用[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2007,33(9):83-85.

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    [3]Wallis G L,Swift R J,Hemming F W,et al.Glucoamylase overexpression and secretion inAspergillus niger:analysis of glycosylation[J].Biochimica et BiophysicaActa,1999,1472(3):576-586.

    [4]Kumar P,Satyanarayana T.Optimization of culture variables for improving glucoamylase production by alginate-entrapped Thermomucor indicae-seudaticae using statistical methods[J]. Bioresource Technology,2007,98(6):1252-1259.

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    [7]賀瑩.黑曲霉產糖化酶發(fā)酵工業(yè)優(yōu)化及酶學特性研究[J].山西大學,2012(6):14-42.

    [8]梁新紅,孫俊良,唐玉,等.黑曲霉糖化酶分離純化與酶學性質研究[J].河南科技學院學報(自然科學版),2011,39(4):24-27.

    [9]陳冠軍,曹淑桂,羅貴民,等.黑曲霉糖化酶熱穩(wěn)定性的研究[J].中國生物工程雜志,1990(3):29-33.

    [10]劉洋.黑曲霉糖化酶的表征及熱穩(wěn)定機制研究[D].長春:吉林大學,2013.

    [11]王中林,王念偉,梅文星.以糖化酶和AADY提高曲酒產酒率[J].釀酒科技,1996(1):72-74.

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    [13]張守財.酒精活性干酵母與糖化酶在大曲酒壓窖后轉排生產中的應用[J].釀酒科技,2007(3):68-70.

    [14]郭本躍.生香ADY、TH-AADY、己酸菌液和糖化酶混合使用提高濃香型曲酒的質量[J].釀酒科技,2002(5):87-89.

    [15]孔維瑞,郭福宗,唐湘華,等.產糖化酶根霉菌的分離及其酶學性質研究[J].釀酒科技,2012(9):32-35.

    [16]全國食品工業(yè)標準化技術委員會.α淀粉酶制劑:GB/T 24401—2009[S].北京:中國標準出版社,2010.

    [17]方善康,周鳳臻.黑曲霉S4生淀粉糖化酶純化組分的性質及其動力學常數(shù)[J].工業(yè)微生物,1994,24(2):5-9.

    Enzymatic Properties and Alcohol-Producing Capacity of High-Temperature α-glucoamylase from Aspergillus Niger F5

    CHANG Lvzhen1,YANG Yunjuan1,2,ZHANG Runmei1,LI Wanjun1,MOU Xingling1,HUANG Zunxi1,2and TANG Xianghua1,2
    (1.School of Life Science,Yun'nan Normal University,Kunming,Yun'nan 650500;2.Yun'nan Key Lab for Biomass Energy and Environmental Biotechnology,Kunming,Yun'nan 650500,China)

    α-glucoamylase,the metabolite of Aspergillus niger F5,its enzymatic properties were investigated in this study.The experimental results showed that,its optimum reaction temperature was 65℃,its best reaction pH was 5.0,the half-life of enzymatic thermal stability was 2.67 min at 80℃;in enzymatic kinetics,Kmvalue was 0.836 mg/mL,and Vmaxvalue was 2.255 mmoL/L·min.Saccharification experiments showed that saccharification rate was 67.5%for 1%starch concentration in optimum reaction conditions after 55 min.In alcohol-producing capacity test,the ratio of sorghum material to water was 1∶3,30 IU/g glucoamylase was added at 65℃and pH 5.0.After 20 h hydrolysis and cooling,1%liquid S.cerevisiae was inoculated,and then cultivated for 9 d at 28℃.Finally,the alcohol concentration was 19.6%vol/60 g(dry substance),and liquor yield of sorghum materials reached up to 32.2%(v/w).

    Aspergillus niger;glucoamylase;enzymatic properties;half-life;saccharification rate;alcohol

    TQ920;Q55;TS262.3

    A

    1001-9286(2016)10-0030-04

    10.13746/j.njkj.2016154

    2014年云南師范大學大學生科研訓練基金項目;生物能源持續(xù)開發(fā)利用教育部工程中心開發(fā)基金(JK2015021)。

    2016-05-03

    常呂珍(1990-),女,云南鎮(zhèn)雄人,在讀本科生,生物技術專業(yè),E-mail:changlvzhen2011@126.com。

    唐湘華(1973-),男,講師,從事應用微生物發(fā)酵工程研究,E-mail:txhdom@163.com。

    優(yōu)先數(shù)字出版時間:2016-07-11;地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/52.1051.TS.20160711.1050.002.html。

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