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    基因組重組選育強(qiáng)降解蘋果酸毛葡萄酒酵母及其發(fā)酵特性*

    2014-12-16 08:02:32李瑋朱月蓮易菊陽黃梅華張勁陳國品曹慕明張瑛
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2014年2期
    關(guān)鍵詞:原生質(zhì)蘋果酸釀酒

    李瑋,朱月蓮,易菊陽,黃梅華,張勁,陳國品,曹慕明,張瑛

    1(廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院廣西作物遺傳改良生物技術(shù)重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,廣西南寧,530007)

    2(廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院葡萄與葡萄酒研究所,廣西南寧,530007)

    3(廣西大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,廣西南寧,530004)

    毛葡萄(Vitis quinquangularis Rehd)作為廣西獨(dú)具特色品種之一,與普通釀酒葡萄相比,其果實(shí)中白藜蘆醇、花色苷等功能性成分含量更高,適合釀造保健性能優(yōu)異的特色葡萄酒[1-2]。但由于毛葡萄果實(shí)中蘋果酸含量相當(dāng)高,導(dǎo)致葡萄原酒酸澀粗糙,口味不佳,因此毛葡萄原酒通常需要經(jīng)過物理、化學(xué)或生物手段進(jìn)行降酸處理方可作為成品出售[3]。采用物理或化學(xué)手段降酸容易影響酒的風(fēng)味和穩(wěn)定性,因而目前國際上通常利用乳酸菌對(duì)葡萄酒原酒進(jìn)行二次蘋果酸-乳酸發(fā)酵去除蘋果酸,該工藝對(duì)于發(fā)酵過程的控制要求很高,還會(huì)延長(zhǎng)生產(chǎn)周期,同時(shí)加大釀造失敗的風(fēng)險(xiǎn)[4-5]。通過生物技術(shù)手段選育具有降酸性能的葡萄酒酵母菌株,是葡萄酒生物法降解蘋果酸工藝中的另一條技術(shù)路線。國內(nèi)研究人員在降酸釀酒酵母的選育方面進(jìn)行了一定的研究,如2000年高年發(fā)等曾對(duì)釀酒酵母和粟酒裂殖酵母進(jìn)行融合育種,融合菌株發(fā)酵過程中酒體蘋果酸含量從11.5 g/L降低至7.5 g/L[6];2005年史東健等進(jìn)行了類似研究,所得融合菌株可將酒體中蘋果酸含量由11 g/L降低至4.3 g/L[7]。目前報(bào)道的融合酵母菌株育種均采用的是雙親本傳統(tǒng)原生質(zhì)體融合法,尚未有采用多親本多輪次融合的基因組重組法的研究報(bào)道。

    基因組重組技術(shù)(genome shuffling),是一種基于融合子高通量篩選手段,通過對(duì)多個(gè)親本微生物菌株的原生質(zhì)體進(jìn)行多輪次融合,以實(shí)現(xiàn)各親本菌株的基因組在融合子內(nèi)重組,從而提高融合子某些人們需要的特性的育種手段[8-9]。該方法已經(jīng)廣泛應(yīng)用于提高醇類、有機(jī)酸、抗生素等微生物代謝產(chǎn)物及酶類的產(chǎn)量[10-14]。

    本論文針對(duì)毛葡萄酒生產(chǎn)過程中高蘋果酸含量問題,選取3株降解蘋果酸能力強(qiáng)的解蘋果酸裂殖酵母和3株產(chǎn)酒精能力優(yōu)良的釀酒酵母作為出發(fā)菌株,通過基因組重組技術(shù),構(gòu)建具有較強(qiáng)蘋果酸降解能力的葡萄酒酵母融合菌株,用于毛葡萄酒的釀造,以探索將發(fā)酵產(chǎn)酒和生物降酸在同一發(fā)酵過程中完成的可行性,為縮短毛葡萄酒生產(chǎn)周期,降低生產(chǎn)成本和生產(chǎn)過程中的風(fēng)險(xiǎn),提高毛葡萄酒品質(zhì)提供技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株

    降解蘋果酸酵母菌株:解蘋果酸裂殖酵母D2、D3、D6;產(chǎn)酒酵母菌:釀酒酵母 A1、A2、A3;上述菌株分離自野生毛葡萄產(chǎn)地,實(shí)驗(yàn)室保藏。

    1.1.2 培養(yǎng)基[15]

    (1)YPD培養(yǎng)基:葡萄糖2%,蛋白胨2%,酵母粉1%,自然pH值,添加1.5%瓊脂為固體培養(yǎng)基,115℃高壓蒸汽滅菌30 min。

    (2)原生質(zhì)體再生完全培養(yǎng)基 (HYPD):在YPD固體培養(yǎng)基中添加蔗糖至17%,115℃高壓蒸汽滅菌30 min。

    (3)蘋果酸降解指示培養(yǎng)基:YNB 2 mL,YPD 3 mL,(NH4)2SO40.5%,蘋果酸0.3%,葡萄糖2%,瓊脂1.2%,溴酚蘭指示劑1 mL,蒸餾水定容至100 mL,pH值3.8,115℃高壓蒸汽滅菌30 min。其中,溴酚蘭指示劑:0.1 g溴酚蘭,加入0.2 mol/L NaOH 7.45 mL,再用蒸餾水稀釋至250 mL。

    1.1.3 試劑[6]

    (1)磷酸緩沖液-蔗糖高滲溶液(PBS):pH6.8磷酸緩沖液添加蔗糖至17%。

    (2)促融劑:聚乙二醇(6000)40 g于100 mL PBS溶液中,添加CaCl2至0.4 mol/L。

    (3)EDTA-β-巰基乙醇溶液:0.05 mol/L EDTA和0.2%(v/v)β-巰基乙醇。

    (4)蝸牛酶:蝸牛酶溶于PBS中至濃度2.0%(w/v),0.45 μm 濾膜過濾除菌。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 親本庫構(gòu)建

    將活化的親本釀酒酵母出發(fā)菌A1、A2、A3分別轉(zhuǎn)接于產(chǎn)孢培養(yǎng)基上產(chǎn)孢培養(yǎng)后,離心收集菌體,洗滌懸浮后加2%蝸牛酶,37℃酶解3 h后,經(jīng)稀釋、懸浮,將孢子懸液涂布于YPD平板上,28℃培養(yǎng)3~5 d,平板上再生出單菌落即為釀酒酵母單倍體細(xì)胞[15]。因解蘋果酸裂殖酵母自身即為單倍體營養(yǎng)細(xì)胞,故不需分離其單倍體。上述獲取的單倍體細(xì)胞用于構(gòu)建親本庫。

    1.2.2 基因組重組

    1.2.2.1 原生質(zhì)體制備與再生[15]

    將上述2種單倍體細(xì)胞親株分別接種于YPD液體培養(yǎng)基中28℃、160 r/min搖床培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,各取10 mL離心收集菌體,磷酸緩沖液洗滌2次,經(jīng)EDTA-β-巰基乙醇溶液靜置處理10 min,用高滲緩沖液洗滌3次后收集菌體,加入蝸牛酶液10 mL,30℃水浴處理0.5~1 h,當(dāng)90%以上細(xì)胞為原生質(zhì)體時(shí),離心收集菌體用高滲緩沖液洗滌2次后,再次離心收集原生質(zhì)體。

    1.2.2.1 原生質(zhì)體滅活與融合子檢出[7]

    取解蘋果酸裂殖酵母原生質(zhì)體懸液5 mL,分別在 50、60、70 ℃水浴中處理 2、4、6、8、10、12 min;釀酒酵母原生質(zhì)體懸液5 mL,分別在紫外(30 W,垂直距離 20 cm)照射下處理 1、2、3、4、5、6 min;經(jīng)再生培養(yǎng)檢測(cè)滅活效果。

    上述滅活原生質(zhì)體懸液等量混合,離心去上清,加入10 mL促融劑,30℃保溫30 min。將融合子懸液經(jīng)高滲緩沖液洗滌后適當(dāng)稀釋,取0.1 mL懸液與45℃左右的原生質(zhì)體再生完全培養(yǎng)基(HYPD)5 mL混合均勻,倒入下層HYPD培養(yǎng)基上,28℃培養(yǎng)3~5 d。平板上長(zhǎng)出的單菌落即為融合子。

    1.2.2.3 遞歸融合

    將篩選出的融合子與原始親本混合,重復(fù)上述步驟進(jìn)行原生質(zhì)體制備、滅活、融合、再生。

    1.2.3 表型篩選

    將上述經(jīng)過2輪基因組重組檢出的融合子接種于蘋果酸降解指示培養(yǎng)基上,28℃培養(yǎng)2~3 d,呈藍(lán)色菌落的融合子即為目的菌株[6]。

    1.2.4 融合菌株遺傳穩(wěn)定性和發(fā)酵性能檢測(cè)[14]

    對(duì)獲得的重組菌株連續(xù)傳代培養(yǎng)5代,分別接種于含50%葡萄汁的液體YPD培養(yǎng)基中,28℃、160 r/min培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,以5%接種量接入毛葡萄汁中,28℃靜置發(fā)酵,每24 h取樣測(cè)定產(chǎn)酒精及降酸性能。

    1.2.5 分析方法

    有機(jī)酸和酒精度測(cè)定方法參照GB/T 15038-2006進(jìn)行。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 原生質(zhì)體制備與再生

    在從野生毛葡萄產(chǎn)地篩選獲得優(yōu)良產(chǎn)酒酵母菌和降解蘋果酸酵母菌株并構(gòu)建單倍體細(xì)胞親本庫的基礎(chǔ)上,首先以釀酒酵母A1和解蘋果酸裂解酵母D2為研究對(duì)象,對(duì)其原生質(zhì)體制備和再生條件進(jìn)行了深入研究。結(jié)果表明,這2類菌株原生質(zhì)體形成和再生條件具有很好的一致性,以磷酸緩沖液-蔗糖高滲溶液作為穩(wěn)滲系統(tǒng),28℃、160 r/min搖床培養(yǎng)菌體20 h至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,在pH6.8、蝸牛酶濃度2.0%(w/v),30℃水浴處理1 h后,釀酒酵母A1和解蘋果酸裂解酵母D2原生質(zhì)體的形成率分別達(dá)到96.2%和92.8%。28℃條件下,采用原生質(zhì)體再生完全培養(yǎng)基進(jìn)行再生培養(yǎng),釀酒酵母A1和解蘋果酸裂解酵母D2原生質(zhì)體的再生率分別達(dá)到19.8%和17.2%。

    2.2 原生質(zhì)體滅活

    雙親滅活是一種十分可靠的用于融合子檢出的標(biāo)記手段,具有使用方便的突出優(yōu)點(diǎn),因此在基因組重組中被廣泛應(yīng)用。通常采用紫外線照射、加熱和化學(xué)試劑處理等對(duì)雙親原生質(zhì)體分別滅活,損傷互補(bǔ)的融合子可在再生平板上長(zhǎng)出菌落。本實(shí)驗(yàn)分別采用紫外線照射處理釀酒酵母原生質(zhì)體和加熱處理解蘋果酸裂殖酵母原生質(zhì)體。

    紫外線滅活實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明(表1),當(dāng)釀酒酵母A1原生質(zhì)體在30 W、垂直距離20 cm紫外照射條件下處理5 min后,原生質(zhì)體致死率達(dá)到100%。因此,選用紫外照射5 min作為釀酒酵母原生質(zhì)體紫外滅活時(shí)間。

    表1 紫外線滅活時(shí)間對(duì)釀酒酵母A1原生質(zhì)體致死率的影響Table 1 Effects of UV inactivation time on the lethallty rate of Saccharomyces cerevisiae A1 protoplasts

    熱滅活實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明(表2),當(dāng)解蘋果酸裂殖酵母D2原生質(zhì)體在60℃恒溫水浴中處理10 min后,原生質(zhì)體致死率達(dá)到100%。這與大多數(shù)酵母菌加熱到60℃時(shí)即可被殺死是一致的;而當(dāng)溫度超過65℃時(shí),原生質(zhì)體容易粘結(jié)成團(tuán),不利于原生質(zhì)體的融合[16]。因此,本試驗(yàn)確定 60℃、10 min作為解蘋果酸裂殖酵母原生質(zhì)體熱滅活條件。

    2.3 基因組重組

    2.3.1 第1輪重組

    將解蘋果酸裂殖酵母 D2、D3、D6和釀酒酵母A1、A2、A3通過原生質(zhì)體制備和滅活后,等量混合,加入促融劑介導(dǎo)基因組重組,通過原生質(zhì)體再生完全培養(yǎng)基雙層培養(yǎng)共檢測(cè)出56株融合子。經(jīng)蘋果酸降解指示培養(yǎng)基初篩和毛葡萄汁發(fā)酵復(fù)篩,共獲得6株性狀優(yōu)良的重組菌株,結(jié)果見表3。

    表2 熱滅活溫度和時(shí)間對(duì)解蘋果酸裂殖酵母D2原生質(zhì)體致死率的影響Table 2 Effects of hear inactivation temperature and time on the lethallty rate of Schizosaccharomyces malidevorans D2 protoplasts

    表3 第1輪基因組重組篩選結(jié)果Table 3 Results of the first-round genome shuffling

    2.3.2 第2輪重組

    將第1輪基因組重組獲得的6株優(yōu)良重組菌株與解蘋果酸裂殖酵母D2、D3、D6和釀酒酵母A1、A2、A3一起作為親本出發(fā)菌株,進(jìn)行原生質(zhì)體制備、滅活、融合、再生、篩選,共獲得5株性狀優(yōu)良的重組菌株,同時(shí)對(duì)這5株重組菌進(jìn)行遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表4。

    表4 遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 4 Results of genetic stability of strain J7,J8,J9,J10,J11

    重組菌株F8、F9、F11都具有良好的遺傳穩(wěn)定性,其中F8菌株5次傳代實(shí)驗(yàn),毛葡萄汁發(fā)酵液中平均總酸量為 4.89 g/L,平均乙醇體積分?jǐn)?shù)為10.39% 。菌株F7和F10遺傳穩(wěn)定性不好,5次傳代后總酸量和酒精度均出現(xiàn)了不同程度的升高和降解。

    2.4 融合菌株與親本菌株性能對(duì)比

    經(jīng)過2輪基因組重組選育,融合菌株J8具有優(yōu)良的遺傳穩(wěn)定性和發(fā)酵性能,將融合菌株F8與釀酒酵母A1、解蘋果酸裂解酵母D2進(jìn)行發(fā)酵性能對(duì)比實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明其產(chǎn)酒精能力接近于親本釀酒酵母,降酸能力接近于親本解蘋果酸裂殖酵母(表5)。

    表5 F8菌株與親本菌株發(fā)酵性能對(duì)比Table 5 Comparison of fermentation performance between F8 and parental strain

    3 結(jié)論

    目前,國內(nèi)研究人員在降酸釀酒酵母的選育方面進(jìn)行了一定的研究,2000年高年發(fā)等曾對(duì)釀酒酵母和粟酒裂殖酵母進(jìn)行融合育種,融合菌株發(fā)酵過程中酒體蘋果酸含量從11.5 g/L降低至7.5 g/L[6];2005年史東健等進(jìn)行了類似研究,所得融合菌株可將酒體中蘋果酸含量由11 g/L降低至4.3 g/L,發(fā)酵乙醇體積分?jǐn)?shù)為8%[7];2009年袁耀武等報(bào)道所獲得的酵母融合菌株發(fā)酵乙醇體積分?jǐn)?shù)為8.3% ,總酸量為7.7 g/L[17]。上述報(bào)道的融合酵母菌株均采用的是雙親本傳統(tǒng)原生質(zhì)體融合法,而本研究利用基因組重組技術(shù),選育獲得了1株遺傳穩(wěn)定的融合菌株F8,其毛葡萄汁發(fā)酵液中平均總酸量為4.89 g/L,平均乙醇體積分?jǐn)?shù)為10.39% ,發(fā)酵性狀優(yōu)于上述降酸酵母融合菌株。不足的是,該融合菌株目前僅對(duì)野生毛葡萄酒發(fā)酵表現(xiàn)出優(yōu)良特性,對(duì)于其他品種葡萄酒發(fā)酵是否可行還需進(jìn)一步探究。另外,本論文也成功證明了基因組重組技術(shù)在葡萄酒酵母選育中的有效性和高效性,同時(shí)也為毛葡萄酒釀造中一步實(shí)現(xiàn)產(chǎn)酒和降酸的新工藝奠定了基礎(chǔ)。

    [1] 王西銳,阮仕立,李華.毛葡萄釀酒及其利用研究初報(bào)[J].中外葡萄與葡萄酒,2000(3):63-65.

    [2] 劉晶,王華,李華,等.CO2浸漬毛葡萄酒香氣成分的GC/MS分析[J]. 中國釀造,2012,31(7):159-163.

    [3] 張春暉.微生物降酸技術(shù)在葡萄酒釀造中的應(yīng)用[J].釀酒科技,2002(2):66-70.

    [4] 沈凱嬌,馬永昆,魏本喜,等.兩種葡萄酒酵母發(fā)酵黑莓酒的降酸效果研究[J].中國釀造,2010,216(3):92-93,95.

    [5] 張春暉,羅耀文,李華.葡萄酒蘋果酸-乳酸發(fā)酵代謝機(jī)理[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè),1999,25(5):64-67.

    [6] 高年發(fā),王淑豪,李小剛,等.釀酒酵母與粟酒裂殖酵母屬間原生質(zhì)體融合選育降解蘋果酸強(qiáng)的葡萄酒酵母[J]. 生物工程學(xué)報(bào),2000,16(6):718-722.

    [7] 史東健,林楊,張偉,等.一步降解蘋果酸葡萄酒酵母的構(gòu)建及特性研究[J]. 釀酒,2005,32(3):43-49.

    [8] Zhang Yingxin,Kim Perry,Victor A Vinci,et al.Genome shuffling leads to rapid phenotypic improvement in bacteria[J].Nature,2002,415(6872):644-646.

    [9] 代興華,蔡愛華,張厚瑞,等.基因組改組技術(shù)及其在工業(yè)微生物改良中的應(yīng)用[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2011,37(7):142-147.

    [10] Hou Lihua.Improved production of ethanol by novel genome shuffling in Saccharomyces cerevisiae[J].Appled Biochemistry and Biotechnology,2010,160(4):1 084-1 093.

    [11] Rojian P John,Dhanya Gangadharan,K Madhavan Nampoothiri.Genome shuffling of Lactobacillus delbrueckii mutant and Bacillus amyloliquefaciens through protoplasmic fusion for L-lactic acid production from starchy wastes[J].Bioresource Technology,2008,99(17):8 008-8 015.

    [12] Zheng Huijie,Gong Jixian,Chen Tao,et al.Strain improvement of Sporolactobacillus inulinus ATCC 15538 for acid tolerance and production of D-lactic acid by genome shuffling[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2010,85(5):1 541-1 549.

    [13] 朱惠,金志華.納他霉素產(chǎn)生菌基因組重排育種[J].中國抗生素雜志,2006,31(12):739-742.

    [14] 梁惠儀,郭勇.全基因組重排育種技術(shù)提高豆豉纖溶酶菌產(chǎn)酶量[J].中國生物工程雜志,2007,27(10):39-43.

    [15] 杜連祥.工業(yè)微生物實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].天津:天津科學(xué)技術(shù)出版社,1992.

    [16] 周東坡,平文祥.微生物原生質(zhì)體融合[M].哈爾濱:黑龍江科學(xué)技術(shù)出版社,1991.

    [17] 袁耀武,張偉,何義,等.一株降解蘋果酸葡萄酒酵母的構(gòu)建[J]. 食品科技,2009,34(4):6-9.

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