袁媛 賈哲睿 王晨皓 劉濤 趙軍 何麗娟 陶寧 由淑萍
動(dòng)脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)作為心血管病變的重要臨床病理變化之一,嚴(yán)重危害人類健康。血管鈣化在AS 中普遍存在,目前認(rèn)為鈣化是一個(gè)由細(xì)胞控制且可主動(dòng)調(diào)節(jié)的過(guò)程[1],類似骨發(fā)育和骨質(zhì)疏松的過(guò)程,其出現(xiàn)和發(fā)展與炎癥、脂質(zhì)堆積、氧化應(yīng)激等因素有關(guān)[2]。在多種信號(hào)通路中,Wnt/βcatenin 信號(hào)通路在AS 的發(fā)生發(fā)展中起到了重要的作用?;罨膬?nèi)皮和血管成纖維細(xì)胞是AS 進(jìn)程中骨形態(tài)發(fā)生蛋白2(bone morphogenetic protein-2,BMP-2)等分子產(chǎn)生的主要來(lái)源,高表達(dá)的BMP-2 引起血管鈣化的發(fā)生[3]。其中,BMP-2 通過(guò)上調(diào)成骨轉(zhuǎn)錄因子Msx2,促進(jìn)多種Wnt 配體(如Wnt3a)的產(chǎn)生,減少了內(nèi)源性抑制劑DKK1 的生成,導(dǎo)致Wnt 信號(hào)通路增強(qiáng)[4]。松果菊苷(echinacoside,ECH)是管花肉蓯蓉的主要活性成分[5],具有廣泛的藥理作用,包含抗氧化應(yīng)激、抗細(xì)胞凋亡及抗炎等[6-8]。近來(lái)研究者發(fā)現(xiàn)ECH 具有心血管保護(hù)活性[9],本課題組前期研究亦發(fā)現(xiàn)此作用[10]。因此,本研究擬探究松果菊苷對(duì)AS 血管鈣化小鼠Wnt/β-連環(huán)蛋白(β-catenin)信號(hào)通路的影響,現(xiàn)將結(jié)果報(bào)道如下。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選擇7 周齡健康A(chǔ)poE-/-雄性小鼠48只,體質(zhì)量20~22 g,購(gòu)于江蘇集萃藥康公司,合格證號(hào):SCXK(新)2018-0003。均于新疆醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心SPF級(jí)條件下飼養(yǎng)。本研究經(jīng)新疆醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審查通過(guò)(批準(zhǔn)文號(hào):IACUC-20210617-01)。
1.2 藥物、試劑與儀器 ECH(純度≥98%,批號(hào):N25GB168967)購(gòu)于上海源葉生物科技有限公司;辛伐他汀片(simvastatin tablets,Sta,規(guī)格:20 mg/片,國(guó)藥準(zhǔn)字:J20180007)購(gòu)于美國(guó)Merck Sharp 公司;高脂飼料(批號(hào):210709)購(gòu)于江蘇美迪森生物醫(yī)藥有限公司;TC(批號(hào):A111-1-1)、TG(批號(hào):A110-1-1)、HDL-C(批號(hào):A112-1-1)、LDL-C(批號(hào):A112-1-1)測(cè)定試劑盒購(gòu)于南京建成科技有限公司;總RNA 提取試劑盒(total RNA extractor,Trizol,批號(hào):267309)購(gòu)于美國(guó)Invitrogen 公司;PCR 引物合成于上海生工生物工程有限公司;熒光定量(批號(hào):AL51019A)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(批號(hào):AL50948A)購(gòu)于日本Takara 公司;抗鼠/兔通用型免疫組化試劑盒(批號(hào):20030278)、Wnt3a(批號(hào):26744-1-AP)、β-catenin(批號(hào):17565-1-AP)、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)(批號(hào):10494-1-AP)兔單克隆抗體、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG 抗體(批號(hào):20000373)購(gòu)于武漢三鷹生物技術(shù)有限公司;LRP5(批號(hào):85c5505)兔單克隆抗體購(gòu)于美國(guó)Affinity 公司;BMP-2(批號(hào):R01213885)購(gòu)于沈陽(yáng)萬(wàn)類生物科技有限公司;RIPA 裂解液(批號(hào):2020928)、蛋白酶抑制劑(批號(hào):20210927)、二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白定量試劑盒(批號(hào):20210901)購(gòu)于北京索萊寶科技有限公司;ECL 顯色液(批號(hào):22346507)購(gòu)于Biosharp 公司;Eclipse Ni-U 顯微鏡購(gòu)于日本Nikon 公司;移液器、低溫離心機(jī)(型號(hào):5424R)購(gòu)于德國(guó)Eppendorf 公司;全波長(zhǎng)功能酶標(biāo)儀(型號(hào):Multiskan GO)、熒光定量PCR 儀(型號(hào):ABI QuantStudio 6Flex)購(gòu)于購(gòu)于美國(guó)Thermo Fisher 公司;全自動(dòng)紫外線分光光度計(jì)(型號(hào):ND2000)購(gòu)于北京基因有限公司;電泳和轉(zhuǎn)膜裝置(型號(hào):Cavoy PowerPac HC+Mini-PR)購(gòu)于上海臻諾生物科技有限公司;凝膠成像儀(型號(hào):Cel-DocXR)購(gòu)于美國(guó)Bio-rad 公司。
1.3 實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1 動(dòng)物分組與處理 根據(jù)參考文獻(xiàn)[11]通過(guò)基因打靶技術(shù)制備小鼠AS 模型。將小鼠經(jīng)過(guò)1 周的適應(yīng)性喂養(yǎng)后采用隨機(jī)數(shù)字表法分為6組,每組8只:分別為模型組、ECH 12.5、25、50 mg/kg 組、Sta 組和對(duì)照組。ECH 12.5、25、50 mg/kg 組和Sta 組給予高脂飼料造模(含19.97%的無(wú)水乳脂,0.15%的膽固醇),對(duì)照組給予基礎(chǔ)飼料。從高脂飲食喂養(yǎng)的第1天開(kāi)始,模型組、對(duì)照組每日灌胃相同體積的0.5%羧甲基纖維素鈉(carboxymethylcellulose sodium,CMC-Na)溶液,ECH 各劑量組及Sta組每日按設(shè)定劑量灌胃給予ECH或Sta,連續(xù)給藥16周后處死小鼠,進(jìn)行血清收集及主動(dòng)脈取材。
1.3.2 檢測(cè)標(biāo)本采集 造模末日小鼠禁食不禁水12 h后摘除眼球取血,置于EP 管內(nèi)。然后斷頸處死并打開(kāi)腹腔,取出主動(dòng)脈放入裝有4%多聚甲醛液的離心管中固定48 h。
1.3.3 小鼠主動(dòng)脈組織病理檢查 將固定的小鼠主動(dòng)脈脫水透明后用石蠟包埋,蠟塊切成厚度為5 μm的組織切片并迅速固定在載玻片上,常規(guī)的HE 染色后在顯微鏡下觀察并比較6 組小鼠主動(dòng)脈的形態(tài)學(xué)變化。
1.3.4 小鼠血清生化檢測(cè) 將EP 管內(nèi)的血液以3 000 r/min,4 ℃離心30 min,吸出上清液分裝新的EP管內(nèi),采用磷酸甘油氧化酶法測(cè)定TG 水平,采用膽固醇氧化酶法測(cè)定小鼠血清TC 水平,酶標(biāo)儀直接法測(cè)定LDL-C 和HDL-C 水平。
1.3.5 小鼠主動(dòng)脈β-catenin mRNA 的表達(dá)測(cè)定 采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 法,用含Trizol 的溶液提取小鼠主動(dòng)脈的總RNA 后純化(達(dá)到A260/A280=1.8~2.0)。采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,取1 μL 產(chǎn)物進(jìn)行擴(kuò)增,10 μL 反應(yīng)體系,擴(kuò)增條件為:95 ℃、30 s;95 ℃、5 s,60 ℃、34 s,40 個(gè)循環(huán),重復(fù)3 次。PCR 運(yùn)行結(jié)束后讀取CT 值,以2-ΔΔCt法分析β-catenin mRNA 的相對(duì)表達(dá)水平。引物序列:GAPDH:F(5'-GGTTGTCTCCTGCGACTT-CA-3'),GAPDH:R(5'-TGGTCCAGGGTTTCTTACTCC-3'),β-catenin:F(5'-GCTGCTGTCCTATTCCGAATG- TCTG-3'),β-catenin:R(5'-GGCACCAATGTCCAGTCCAAGATC-3')。
1.3.6 小鼠主動(dòng)脈相關(guān)蛋白表達(dá)測(cè)定 采用Western blot 法檢測(cè)β-catenin、Wnt3a、LDL 受體相關(guān)蛋白5(LDL receptor protein,LRP5)及BMP-2 蛋白表達(dá)水平。從-80 ℃冰箱中取凍存的小鼠主動(dòng)脈組織放入預(yù)冷的研磨管內(nèi),根據(jù)稱取的量加入一定比例裂解液,使用全自動(dòng)樣品快速研磨儀進(jìn)行組織研磨,冰浴裂解30 min,4 ℃,12 000 r/min,離心15 min取上清液。根據(jù)BCA 法檢測(cè)總蛋白濃度;加入5 倍的上樣緩沖液混勻后,100 ℃水浴加熱變性10 min;于10%的十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠上進(jìn)行電泳(電壓120 V,60 min),將蛋白轉(zhuǎn)印至聚偏二氟乙烯膜上,300 mA 恒流電轉(zhuǎn)70 min。5%脫脂奶粉于室溫下封閉聚偏二氟乙烯膜2 h,進(jìn)行一抗(β-catenin,1∶4 000、Wnt3a,1∶1 000、LRP5,1∶1 000、BMP-2,1∶1 000、GAPDH,1∶10 000)4 ℃下孵育過(guò)夜,清洗3 次后室溫下孵育二抗1 h。凝膠成像儀拍照顯色,分析條帶灰度值。βcatenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白表達(dá)水平=目的條帶灰度值/內(nèi)參條帶灰度值×100%。
1.3.7 小鼠主動(dòng)脈LRP5 蛋白表達(dá)測(cè)定 采用免疫組化法,組織包埋切片后,70 ℃烤片2 h,二甲苯和梯度乙醇進(jìn)行脫蠟至水后放入pH=9.0 的抗原修復(fù)液微波修復(fù)15 min,自然冷卻至室溫,以3%H2O2阻斷過(guò)氧化物酶,F(xiàn)BS 孵育,加入一抗,濃度為1∶50,4 ℃孵育過(guò)夜,加入二抗,37 ℃孵育30 min,滴加二氨基聯(lián)苯胺顯色,蘇木素復(fù)染后采用鹽酸乙醇分化,PBS 返藍(lán),自然晾干后用樹(shù)膠封片,顯微鏡下觀察切片并拍照保存。采用Image-pro-plus6.0 進(jìn)行圖像分析,以平均光密度值分析LRP5 蛋白表達(dá)水平。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 26.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 6 組小鼠主動(dòng)脈組織形態(tài)學(xué)變化比較 模型組和ECH 12.5 mg/kg 組小鼠主動(dòng)脈管腔壁厚度不均,內(nèi)膜增厚明顯,局部發(fā)生嚴(yán)重鈣化,斑塊明顯突向管腔,組織彈力纖維排列紊亂,并伴有炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。ECH 25、50 mg/kg 組及Sta 組中膜較模型組明顯變薄,彈力纖維排列整齊,斑塊明顯縮小,對(duì)照組小鼠血管結(jié)構(gòu)排列正常,主動(dòng)脈內(nèi)壁未發(fā)現(xiàn)明顯的平滑肌細(xì)胞增生,管腔未見(jiàn)膽固醇結(jié)晶形成,見(jiàn)圖1。
圖1 6 組小鼠主動(dòng)脈組織形態(tài)學(xué)變化的比較(A:模型組;B:ECH 12.5 mg/kg 組;C:ECH 25 mg/kg 組;D:ECH 50 mg/kg 組;E:Sta 組;F:對(duì)照組)
2.2 6 組小鼠血生化指標(biāo)的比較 6 組小鼠的血生化指標(biāo)比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01),其中模型組小鼠的TG、TC 及LDL-C 水平均高于對(duì)照組,HDLC 水平低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01),ECH 25、50 mg/kg 組和Sta 組TG 水平均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01);ECH 12.5、25、50 mg/kg 組和Sta 組TC 水平均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01);ECH 12.5、25、50 mg/kg 組和Sta 組LDL-C 水平均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01);ECH 12.5、25、50 mg/kg 組和Sta 組HDLC 水平均高于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.001),見(jiàn)表1。
表1 6 組小鼠血生化指標(biāo)的比較
2.3 6 組小鼠主動(dòng)脈β-catenin mRNA 的比較 6 組小鼠主動(dòng)脈β-catenin mRNA 表達(dá)水平分別為2.01±0.11、1.68±0.05、1.35±0.07、1.01±0.06、0.86±0.05、0.82±0.03,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=188.925,P<0.001)。其中模型組高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。ECH 12.5、25、50 mg/kg 組及Sta 組均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。
2.4 6 組小鼠主動(dòng)脈相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較 6 組小鼠主動(dòng)脈相關(guān)蛋白表達(dá)水平差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05),其中模型組小鼠主動(dòng)脈β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白表達(dá)水平高于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.01),ECH 25、50 mg/kg 組小鼠主動(dòng)脈β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白表達(dá)水平均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05);Sta 組小鼠主動(dòng)脈β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白表達(dá)水平亦低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=24.334、12.108、17.506、22.536,均P<0.05),見(jiàn)表2 和圖2。
表2 6 組小鼠主動(dòng)脈相關(guān)蛋白表達(dá)水平的比較
圖2 6 組小鼠主動(dòng)脈相關(guān)蛋白表達(dá)的電泳圖
2.5 6 組小鼠主動(dòng)脈LRP5 蛋白表達(dá)水平的比較 6 組小鼠主動(dòng)脈LRP5 蛋白表達(dá)水平分別為0.35±0.01、0.25±0.03、0.17±0.03、0.15±0.02、0.16±0.03、0.07±0.01,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=96.536,P<0.001)。其中模型組小鼠高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。ECH 12.5、25、50 mg/kg 組及Sta 組均低于模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.001),免疫組化檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3 6 組小鼠主動(dòng)脈LRP5 蛋白表達(dá)免疫組化檢測(cè)所見(jiàn)(A:模型組;B:ECH 12.5 mg/kg 組;C:ECH 25 mg/kg 組;D:ECH 50 mg/kg組;E:Sta 組;F:對(duì)照組)
血管鈣化被認(rèn)為是AS 的自然進(jìn)展過(guò)程,在臨床上是AS 的標(biāo)志。而目前對(duì)血管鈣化的防治效果不盡人意,因此探索新的血管鈣化防治藥物尤為重要。ECH在心血管等方面的藥理作用得到了廣泛關(guān)注,如具有清除自由基損傷、抗炎及免疫調(diào)節(jié)等生物活性。
脂質(zhì)代謝紊亂對(duì)AS 的發(fā)生與發(fā)展起決定性作用,血清中氧化型LDL(oxidized low density lipoprotein,OXLDL)的升高,HDL-C 降低,易于沉積在血管壁上,逐步演化為斑塊,最終導(dǎo)致AS 發(fā)生,因此對(duì)血脂水平的有效調(diào)控是預(yù)防AS 的重點(diǎn)工作,但是AS 發(fā)生后并不止步于此,血管平滑肌細(xì)胞中BMP-2 的大量表達(dá)激活了Wnt 信號(hào)通路并驅(qū)動(dòng)成骨程序,加速了AS 血管鈣化的進(jìn)一步發(fā)展。
本研究所采用的小鼠因其血脂代謝功能存在異常,可誘發(fā)多余的脂質(zhì)在血管內(nèi)堆積,從而自發(fā)形成動(dòng)AS 斑塊,通過(guò)高脂飼養(yǎng)可加快其血管內(nèi)斑塊的形成。HE 結(jié)果顯示,模型組和ECH 12.5 mg/kg 組小鼠主動(dòng)脈管腔壁厚度不均,內(nèi)膜增厚明顯,局部發(fā)生嚴(yán)重鈣化,斑塊明顯突向管腔,組織彈力纖維排列紊亂,并伴有炎性細(xì)胞。ECH 25、50 mg/kg 組及Sta 組中膜較模型組明顯變薄,彈力纖維排列整齊,斑塊明顯縮小,對(duì)照組小鼠血管結(jié)構(gòu)排列正常,主動(dòng)脈內(nèi)壁未發(fā)現(xiàn)明顯的平滑肌細(xì)胞增生,管腔未見(jiàn)膽固醇結(jié)晶形成,表明中、高劑量的ECH 對(duì)小鼠主動(dòng)脈有一定的保護(hù)作用。經(jīng)過(guò)ECH 干預(yù)之后,血清中TG、TC、LDL-C 表達(dá)水平低于模型組,HDL-C 表達(dá)水平高于模型組,提示ECH干預(yù)后能顯著逆轉(zhuǎn)AS 的脂質(zhì)異常。以上結(jié)果顯示,隨給藥物濃度的增加,ECH 的作用效果增加,且呈現(xiàn)出劑量依賴的關(guān)系,其中ECH 25、50 mg/kg 組對(duì)AS 小鼠有明顯的保護(hù)作用。
Wnt 信號(hào)通路在血管鈣化中的作用及其調(diào)控機(jī)制受到人們的廣泛關(guān)注,參與細(xì)胞增殖、分化、遷徙和侵襲[12-14],Wnt3a、LRP5 和β-catenin 在已經(jīng)發(fā)生鈣化的主動(dòng)脈瓣中有較高的表達(dá)[15],因此抑制該信號(hào)通路能夠達(dá)到阻礙成骨細(xì)胞增殖和分化,降低成骨細(xì)胞礦化活性。本研究中,模型組小鼠主動(dòng)脈β-catenin mRNA 表達(dá)水平高于對(duì)照組;ECH 12.5、25、50 mg/kg 組及Sta 組β-catenin 的mRNA 表達(dá)低于模型組,提示ECH 可以通過(guò)下調(diào)β-catenin 的表達(dá)來(lái)緩解AS 化造成的斑塊沉積。在蛋白表達(dá)測(cè)定中模型組小鼠主動(dòng)脈β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白的表達(dá)水平高于對(duì)照組,ECH 25、50 mg/kg 組小鼠主動(dòng)脈β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 蛋白的表達(dá)水平低于模型組,隨著劑量的增加,小鼠主動(dòng)脈Wnt3a、β-catenin 及LRP5 蛋白相對(duì)表達(dá)量呈逐步降低趨勢(shì),提示ECH 可以通過(guò)下調(diào)β-catenin、Wnt3a、LRP5 及BMP-2 的表達(dá)來(lái)緩解血管鈣化的發(fā)生發(fā)展。有研究表明Wnt 信號(hào)細(xì)胞膜外的Wnt相關(guān)配體(如Wnt3a)與低密度脂蛋白受體蛋白5/6、跨膜受體卷曲蛋白相結(jié)合,經(jīng)過(guò)細(xì)胞質(zhì)內(nèi)的蓬亂蛋白與酪蛋白激酶1-α 進(jìn)行信號(hào)傳遞,激活了由軸蛋白/結(jié)腸腺瘤性蛋白/糖原合成酶激酶3β 結(jié)合物,從而促使細(xì)胞質(zhì)內(nèi)聚集了大量β-catenin 且與T 細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子/淋巴增強(qiáng)因子結(jié)合后形成復(fù)合體,進(jìn)一步激活了下游靶基因,從而促進(jìn)轉(zhuǎn)錄和成骨細(xì)胞凋亡,減緩血管鈣化的產(chǎn)物[16-17]。由此推測(cè)ECH 可能通過(guò)抑制Wnt 信號(hào)通路中的β-catenin、Wnt3a 與LRP5 從而對(duì)小鼠AS血管鈣化有一定改善作用。
綜上所述,本研究證明ECH 對(duì)小鼠AS 硬化血管鈣化具有一定的保護(hù)作用,可能與其抑制Wnt3a信號(hào)通路胞外Wnt3a與LRP5相關(guān)蛋白形成的受體復(fù)合物的結(jié)合有關(guān),從而為AS血管鈣化的防控提供新的治療藥物。