萬燁東,楊慧欣,郝書弘,胡春梅,唐 艷*
(1.吉林大學第二醫(yī)院 腫瘤血液科,吉林 長春130041;2.吉林大學第二醫(yī)院 乳腺外科)
常染色體顯性遺傳性多囊腎病(autosomal dominant polycystic kidney disease,ADPKD)是一種以多發(fā)囊腫形成為特征的遺傳性腎病,主要是由編碼多囊蛋白1(polycystin-1,PC1)和多囊蛋白2(polycystin-1,PC2)的PKD1和PKD2基因突變所致,其中,PKD1基因所致的ADPKD占該病譜系的85% 左右[1]。PC1是一種分子量較大的跨膜糖蛋白,包含基質相互作用的胞外大N端和激活G蛋白并與伴侶蛋白相互作用的胞內C端,并通過mTOR、MAPK、cAMP、JAK-STAT、Wnt等多種信號途徑調節(jié)細胞轉導[2]。
蛋白磷酸酶2A(protein phosphatase 2A,PP2A)是蛋白絲氨酸/蘇氨酸磷酸酶家族中的一員,是由結構亞基PP2A-A(也稱為PPP2R1A)、調節(jié)亞基PP2A-C(也稱為PPP2CA)和催化亞基PP2Ab(包含B56α)組成的異源三聚體復合物[3],它是一種多功能酶,在細胞周期調控,形態(tài)以及發(fā)育中發(fā)揮作用。同時它又在信號轉導的級聯(lián)反應中與其他磷酸化酶和激酶相互作用,構成調節(jié)大分子從而調控下游信號轉導[4]。
在PC1調節(jié)的細胞增殖中,雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)通過磷酸化其下游靶蛋白來促進蛋白質合成(細胞增殖),調節(jié)下游蛋白質翻譯。因S6 和 4EBP1是mTOR的底物,而PP2A通過使4EBP1 和 p70S6K去磷酸化調節(jié)翻譯的起始,提示PP2A是mTOR調節(jié)其下游效應器的主要磷酸酶[5]。在最近的研究中,我們發(fā)現PC-1通過磷酸酶PP2A/B56α途徑抑制細胞增殖[3],但對于PP2A的A/C亞基是否參與PC1介導的增殖抑制作用尚未進一步明確。在本研究中,我們初步探討了PC1抑制細胞增殖與PP2A的A及C亞基的關系,從而進一步完善PC-1經磷酸酶PP2A/B56α抑制細胞增殖的研究。
1.1 細胞、質粒和試劑
人HEK293T細胞、空白對照質粒pEGFP和PC1基因重組質粒pEGFP-PC1-5TMC均來自Xing-Zhen Chen博士實驗室。HEK293T細胞被置于含DMEM培養(yǎng)液的6孔板中孵育,并在該培養(yǎng)基中加入了L-谷氨酰胺,青霉素-鏈霉素和10%胎牛血清,環(huán)境溫度保持在37℃,CO2濃度為5%。B56α抗體、PP2A-A抗體、PP2A-C抗體為Cell Signaling Technology 公司產品,PP2A-A,PP2A-C,PP2A-B56α的siRNA,小鼠單克隆抗HSP60(H-1)抗體及二抗購自美國圣克魯斯生物技術公司。綠色熒光蛋白(GFP)單抗和辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠IgG購自鼎國生物公司,用于對GFP標記后的轉染細胞進行免疫印跡驗證。Alarma Blue細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒、轉染試劑Lipofectamine 2000購自Invitrogen公司。用于細胞培養(yǎng)的DMEM培養(yǎng)液及胎牛血清購自長春尚寶生物公司?;瘜W發(fā)光試劑盒購自美國Bio-Red公司。
1.2 轉染
以2.0×104cells/孔密度接種6 孔細胞培養(yǎng)板,48 h后更換新鮮培養(yǎng)液,用無血清DMEM培養(yǎng)液分別稀釋質粒pEGFP及pEGFP-PC1-5TMC,用Lipofectamine 2000 試劑進行轉染。在37℃,5% CO2環(huán)境中6 h后,更換培養(yǎng)液為DMEM繼續(xù)培養(yǎng)。
1.3 Western blotting法鑒定轉染細胞
轉染后24 h,各組細胞加入RIPA裂解緩沖液和蛋白酶抑制劑,冰上裂解30 min,12 000 g速度離心后取上清液,使用BSA試劑盒進行蛋白含量測定,后取80 μg蛋白進行SDS-PAGE凝膠電泳,轉移到硝酸纖維膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h后,1∶2 000加入GFP單抗4℃孵育過夜,TBST液清洗3次后,1∶500加入對應的辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠IgG 4℃孵育過夜,按化學發(fā)光試劑盒說明書進行測定。
1.4 RNA干擾實驗
PP2A-B56α亞基、A亞基和C亞基的siRNA被分別用來干涉HEK293T細胞中的PP2A-B56α,A亞基和C亞基基因,siRNA基因敲除的效率通過免疫印跡進行評估。
1.5 細胞增殖實驗
較諸于國別文學,比較文學提供的是一種更為開闊的文學視域,讓學者在探求不同國家之文學的同時,能夠把文學作品放在世界文學的格局和世界文學發(fā)展的長河中進行觀照,不僅能使我們更深入地了解自己國家和民族的文學,而且能對世界其他國家和民族的文學有“了解之同情”,從而知曉我們自身文學的特異之處,清楚別的國家的文學同我們自身文學的差異之所在,并能辨考其間相互影響的痕跡,或彼此共通的文學特質。有鑒于此,季羨林先生特別指出:
將HEK293T細胞瞬時轉染PC1-5TMC至100 mm培養(yǎng)皿,轉染24 h后,采用Alarma Blue細胞增殖及細胞毒性檢測試劑盒按既往研究所述進行細胞增殖試驗[3,6]。應用酶標儀檢測各孔光密度值(optical density,OD),并計算細胞增殖率,細胞增殖率(%)=OD測試/OD對照×100%。
1.6 數據處理
數據以平均值±標準誤表示,使用Sigma Plot 11軟件對數據進行統(tǒng)計分析,P值小于0.05認為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 PC1基因重組質粒轉染HEK293T細胞株的鑒定
空白質粒及pEGFP-PC1-5TMC質粒上均攜帶有綠色熒光蛋白(GFP),采用GFP單抗用Western blotting法觀察在分子量約68 KD大小處顯示 pEGFP-PC1-5TMC蛋白條帶,即pEGFP-PC1-5TMC質粒轉染成功(圖1)。
條帶 1:空白對照組;條帶 2:轉染組.
2.2 PP2A各亞基基因干涉效果鑒定
以HSP-60為內參對照,Western blotting結果提示,與非干涉組相比,PP2A-A干涉組、PP2A-C干涉組以及B56α干涉組各自亞基表達水平下降(圖2)。
圖2 Western blotting法驗證各亞基表達
2.3 各組細胞增殖率
在既往研究中,我們證實PC-1抑制細胞增殖是PP2A/B56α依賴的[3],為了進一步明確PP2A的A和C亞基對該過程的影響,我們采用siRNA敲除后的PP2A 3個亞基及對照進行增殖實驗來驗證。結果顯示PP2A-A或PP2A-C的敲除并不影響PC1-5TMC對細胞增殖的抑制,而B56α的敲除則消除了抑制作用(圖3),從而支持PC1通過PP2A(B56α)而不是PP2A的A或C亞基抑制細胞增殖。
圖3 Alarma Blue測定法比較各組細胞增殖抑制率
PC-1的異常改變是遺傳性多囊腎病發(fā)病的關鍵因素之一,其多表達于遠端腎單位和集合管中,通過多種途徑調節(jié)腎上皮細胞的增殖活性。例如通過平衡Ca2+/cAMP濃度抑制腎上皮細胞增殖,負性調節(jié)mTOR及下游信號分子S6激酶和4EBP1/eIF4E抑制細胞生長等[5]。我們前期的研究證實了PP2A作為4EBP1和p70S6K的去磷酸化受體,參與了PC1通過mTOR途徑介導的增殖抑制,且證明調節(jié)亞基B56α參與其中[3]。
PP2A作為異源三聚體復合物,還包含有結構亞基PP2A-A和催化亞基PP2A-C。其中,結構亞基PP2A-A是一段包含15個串聯(lián)重復序列的支架蛋白,全長65 kDa,可分為α、β兩型。催化亞基PP2A-C全長36 kDa,與PP2A-A亞基一同構成PP2A去磷酸化的核心酶[7]。B亞基家族之間的同源性非常低,具有組織、細胞及底物的特異性,其中B56是B亞基中基因最多樣化的家族,其4個亞基在許多組織和細胞中差異性表達,PP2A的功能和活性主要依靠調節(jié)亞單位B56α[8]。
本研究為探討PP2A-A和PP2A-C是否參與了PC1對細胞增殖的抑制,對PP2A各亞基進行了siRNA干預,并通過免疫印跡證實干擾后各組對應亞基的低表達;通過增殖實驗我們發(fā)現PP2A-A或PP2A-C的敲除并不影響PC1-5TMC對細胞增殖的抑制作用,而B56α的敲除逆轉了這種作用(圖3),這支持并驗證了PC1不是通過PP2A的A或C亞基,而是通過PP2A(B56α)抑制細胞增殖。
總之,本研究進一步驗證了PP2A在PC1抑制的細胞增殖中發(fā)揮作用的具體亞基,為進一步研究PP2A介導的PC1抑制細胞增殖的研究提供了基礎。