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      肺炎克雷伯桿菌莢膜多糖經(jīng)EGFR途徑誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞分泌細(xì)胞因子*

      2020-04-03 09:34:54曹二龍龍南彪曾賽麗
      中國病理生理雜志 2020年3期
      關(guān)鍵詞:克雷伯孵育磷酸化

      肖 非, 曹二龍, 龍南彪, 曾賽麗

      (1邵陽學(xué)院醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)學(xué)院, 湖南 邵陽 422000; 2南華大學(xué)附屬第二醫(yī)院呼吸內(nèi)科, 湖南 衡陽 421001)

      肺炎克雷伯菌(Klebsiellapneumoniae,KP)是一種革蘭陰性致病菌,是引起醫(yī)院獲得性感染的主要病原體之一。KP能夠在不同的環(huán)境中存活,并定植于人體各個(gè)部位引起包括重癥肺炎、尿路感染、敗血癥以及傷口感染等在內(nèi)的多種感染性疾病[1]。近年來,抗生素的使用不當(dāng)以及KP持續(xù)接觸不同抗菌藥物,使得其產(chǎn)生了多種抗生素的耐藥菌株[2]。臨床研究顯示,由多重耐藥KP菌株引起的感染其死亡率在危重病人和器官移植的患者中高達(dá)40%以上[3]。多重耐藥KP菌株的臨床危害較大,但是目前并沒有有效的治療方案,因此,明確KP的致病以及耐藥機(jī)制,對(duì)于有效預(yù)防、治療KP感染至關(guān)重要。

      表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)是一個(gè)170 kD的跨膜糖蛋白受體酪氨酸激酶,由表皮生長因子激活并調(diào)控細(xì)胞的生長和分化。EGFR的活化能夠參與氣道上皮細(xì)胞的修復(fù)和再生,同時(shí)其還與促炎細(xì)胞因子和趨化因子的分泌密切相關(guān)[4-5]。研究表明,呼吸道感染引起的炎性病變主要受細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)和核因子κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)信號(hào)通路的調(diào)節(jié),而EGFR則是其中一種重要的受體。盡管已有研究顯示多種細(xì)菌或病毒病原體感染均能夠激活EGFR[6-7],但其在KP感染引起炎性反應(yīng)中的作用機(jī)制尚不清楚。因此,本研究探討了EGFR在KP莢膜多糖(capsular polysaccharide,CPS)誘導(dǎo)人正常支氣管上皮細(xì)胞產(chǎn)生炎癥反應(yīng)中的作用,并進(jìn)一步明確了EGFR與ERK、NF-κB信號(hào)通路的關(guān)系。

      材 料 和 方 法

      1 菌株與細(xì)胞株

      肺炎克雷伯菌(13883)購自ATCC;人正常支氣管上皮細(xì)胞BEAS-2B購自中科院細(xì)胞庫。

      2 主要實(shí)驗(yàn)材料

      抗EGFR、p-EGFR、ERK、p-ERK和p65抗體購自Abcam;EGFR抑制劑AG1478、ERK抑制劑PD98059和NF-κB抑制劑PDTC購自Sigma;人腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)和白細(xì)胞介素8(interleukin-8, IL-8)ELISA Kit購自Invitrogen;細(xì)胞培養(yǎng)試劑購自上海生物工程股份有限公司。

      3 主要方法

      3.1肺炎克雷伯菌的培養(yǎng)與莢膜多糖提取 肺炎克雷伯菌于含100 mg/L氨芐青霉素或50 mg/L卡那霉素的LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)。按照參考文獻(xiàn)提供的方法提取CPS[8]:100 ℃加熱含KP的培養(yǎng)基以釋放其莢膜成分。隨后加入丙酮沉淀CPS。經(jīng)RNase B(30 mg/L)、DNase I(70 mg/L)及鏈霉蛋白酶溶液(含10 mmol/L Tris-HCl,pH 7.4,1 mmol/L CaCl2)消化后對(duì)樣品透析、凍干。隨后于TSK HW-65F柱上進(jìn)一步純化并采用苯酚-濃硫酸法測定CPS的濃度。刺激細(xì)胞前采用2-酮基-3-脫氧辛酸-硫代巴比妥酸法測定CPS中脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)的含量以排除LPS污染。

      3.2細(xì)胞培養(yǎng)與處理 BEAS-2B細(xì)胞中加入含10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基(含1 %的青霉素-鏈霉素混合液),并于37 ℃、5 % CO2的條件下培養(yǎng)。待細(xì)胞生長至對(duì)數(shù)期時(shí),用胰蛋白酶消化細(xì)胞并進(jìn)行細(xì)胞傳代。將細(xì)胞按相應(yīng)比例稀釋后置于新的細(xì)胞瓶中,進(jìn)行如下處理:(1)分別用濃度為1、5和10 mg/L的CPS刺激細(xì)胞12 h后收集細(xì)胞及上清待用;(2)10和30 μmol/L的EGFR抑制劑AG1478處理2 h后,10 mg/L CPS刺激細(xì)胞12 h,收集細(xì)胞及上清待用;(3)10和30 μmol/L的ERK抑制劑PD98059或NF-κB抑制劑PDTC預(yù)處理2 h后,再用10 mg/L CPS刺激細(xì)胞12 h,收集細(xì)胞上清待用。

      3.3Western blot檢測蛋白磷酸化 將上述細(xì)胞通過超聲破碎儀收集細(xì)胞總蛋白。BCA法測定蛋白濃度后,通過稀釋使各樣本濃度保持一致。隨后按照說明書要求進(jìn)行SDS-PAGE。電泳完成后根據(jù)不同條件進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,轉(zhuǎn)膜完成后取出PVDF膜于封閉液中室溫封閉2 h。隨后加入稀釋好的I抗[抗EGFR抗體(1∶1 000)、抗p-EGFR抗體(1∶1 000)、抗ERK抗體(1∶2 000)和抗p-ERK抗體(1∶2 000)]4 ℃孵育過夜。再用相應(yīng)的IgG II 抗室溫孵育2 h。最后進(jìn)行ECL顯影。

      3.4ELISA測定TNF-α和IL-8的分泌 收集不同處理?xiàng)l件下的細(xì)胞上清,嚴(yán)格按照人TNF-α和IL-8 ELISA Kit說明書要求檢測細(xì)胞上清中TNF-α和IL-8含量,并在酶標(biāo)儀450 nm處測定各組樣本的吸光度(A)值。每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。最后通過標(biāo)準(zhǔn)品檢測制備的標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算各細(xì)胞上清中TNF-α和IL-8水平。

      3.5間接免疫熒光檢測p65核轉(zhuǎn)位 BEAS-2B細(xì)胞經(jīng)CPS處理后,在細(xì)胞中加入3.5%的多聚甲醛固定10~15 min;孵育完成后加入0.3%的Triton X-100,室溫孵育20 min;隨后用PBS洗滌細(xì)胞3次,加入稀釋的抗p65抗體(1∶200)后4℃孵育過夜;PBS洗3遍后再加入稀釋的IgG II抗(1∶400)避光孵育1.5 h;最后熒光顯微鏡下觀察NF-κB p65的核轉(zhuǎn)位情況。

      4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      所有數(shù)據(jù)均采用SPSS 16.0進(jìn)行分析。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,各組間比較采用單因素方差分析及SNK-q檢驗(yàn)。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 肺炎克雷伯菌CPS誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8

      未經(jīng)處理的BEAS-2B細(xì)胞上清中TNF-α和IL-8分泌水平較低,而當(dāng)給予10 mg/L CPS刺激12 h后,TNF-α和IL-8分泌水平明顯增多(P<0.05),見圖1。

      Figure 1.The effect ofKlebsiellapneumoniaeCPS on secretion of TNF-α and IL-8 in bronchial epithelial BEAS-2B cells. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group (0 mg/L).

      圖1 肺炎克雷伯菌CPS對(duì)支氣管上皮BEAS-2B細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8的影響

      2 肺炎克雷伯菌CPS激活支氣管上皮細(xì)胞EGFR

      未經(jīng)處理的BEAS-2B細(xì)胞中EGFR磷酸化水平較低,當(dāng)用10 mg/L CPS刺激細(xì)胞30 min后,可明顯檢測到EGFR磷酸化,且磷酸化水平可持續(xù)至120 min,見圖2A。此外,分別用10和30 μmol/L EGFR抑制劑AG1478預(yù)處理2 h后再用CPS刺激細(xì)胞,細(xì)胞上清中TNF-α和IL-8的分泌水平明顯減少(P<0.05),見圖2B。

      Figure 2.The effect ofKlebsiellapneumoniaeCPS on the activation of EGFR in bronchial epithelial BEAS-2B cells. A: EGFR phosphorylation was detected by Western blot; B: EGFR inhibitor AG1478 inhibited the secretion of TNF-α and IL-8. Mean±SD.n=3.△P<0.05vs0 min group;*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsCPS group.

      圖2 肺炎克雷伯菌CPS對(duì)支氣管上皮BEAS-2B細(xì)胞EGFR活化的影響

      3 肺炎克雷伯菌CPS經(jīng)EGFR激活ERK通路誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8

      10 mg/L CPS刺激30 min~2 h均可明顯誘導(dǎo)ERK磷酸化,而30 μmol/L AG1478預(yù)處理2 h后,ERK磷酸化則明顯降低(P<0.05),見圖3A。此外,ELISA結(jié)果顯示,在給予10和30 μmol/L ERK抑制劑PD98059預(yù)處理后,細(xì)胞上清中TNF-α和IL-8分泌水平均明顯減少(P<0.05),見圖3B。

      4 肺炎克雷伯菌CPS經(jīng)EGFR激活NF-κB通路誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8

      BEAS-2B細(xì)胞經(jīng)10 mg/L CPS孵育1 h后,細(xì)胞核內(nèi)p65水平明顯增多,并可持續(xù)到4 h,而用EGFR抑制劑AG1478預(yù)處理2 h后,細(xì)胞核內(nèi)p65水平則出現(xiàn)明顯降低,見圖4A。此外,當(dāng)給予10和30 μmol/L NF-κB抑制劑PDTC預(yù)處理后,細(xì)胞上清中的TNF-α和IL-8分泌水平也明顯減少(P<0.05),見圖4B。

      Figure 3.The effect of ERK pathway on the secretion of TNF-α and IL-8 in bronchial epithelial BEAS-2B cells induced byKlebsiellapneumoniaeCPS. A: the phosphorylation level of ERK was determined by Western blot; B: ERK inhibitor PD98059 inhibited the secretion of TNF-α and IL-8. Mean±SD.n=3.△P<0.05vs0 h group;▲P<0.05vs120 min group;*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsCPS group.

      圖3 ERK通路對(duì)肺炎克雷伯菌CPS誘導(dǎo)支氣管上皮BEAS-2B細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8的影響

      討 論

      國內(nèi)外流行病學(xué)調(diào)查結(jié)果顯示,由于各類抗菌藥物使用不當(dāng),KP藥物耐藥性不斷增加并出現(xiàn)了多重耐藥菌株,臨床治療十分困難。盡管聯(lián)合治療包括粘菌素、磷霉素、替加環(huán)素以及氨基糖苷類藥物在過去幾年得到了廣泛應(yīng)用,但其治療效果并不理想[9]。因此,明確其致病機(jī)制進(jìn)而有效預(yù)防、治療KP感染是目前的當(dāng)務(wù)之急。本研究通過明確EGFR在KP CPS誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞炎癥反應(yīng)中的作用,為臨床KP的防治提供了理論依據(jù)。

      Figure 4.The effect of NF-κB pathway on the secretion of TNF-α and IL-8 in bronchial epithelial BEAS-2B cells induced byKlebsiellapneumoniaeCPS. A: NF-κB p65 expression was detected by indirect immunofluorescence; B: NF-κB inhibitor PDTC inhibited the secretion of TNF-α and IL-8. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group;#P<0.05vsCPS group.

      圖4 NF-κB通路對(duì)肺炎克雷伯菌CPS誘導(dǎo)支氣管上皮BEAS-2B細(xì)胞分泌TNF-α和IL-8的影響

      EGFR是一種重要信號(hào)通路受體,在調(diào)控細(xì)胞存活以及炎性反應(yīng)方面具有重要作用[10]。研究表明,EGFR可以通過交叉關(guān)聯(lián)的信號(hào)通路被激活,其中就包括了Toll樣受體(Toll-like receptors,TLRs)[11],而由于TLRs在上皮細(xì)胞中表達(dá),可識(shí)別各種細(xì)菌、病毒和真菌的致病相關(guān)分子模式[12],因此EGFR與上皮細(xì)胞的炎癥反應(yīng)也存在一定聯(lián)系。Beswick等[13]研究表明,在幽門螺桿菌感染的胃上皮細(xì)胞中,巨噬細(xì)胞遷移抑制因子和IL-8可誘導(dǎo)EGFR的磷酸化。此外,卡他莫拉菌同樣可以在支氣管上皮細(xì)胞中通過活化EGFR刺激產(chǎn)生IL-8[14]。本研中用10 mg/L KP CPS刺激支氣管上皮細(xì)胞后,可在細(xì)胞內(nèi)檢測到明顯的EGFR磷酸化,且在抑制EGFR表達(dá)后細(xì)胞上清中的炎性因子分泌水平顯著降低,提示EGFR同樣能夠參與KP對(duì)支氣管上皮細(xì)胞的致炎作用。

      ERK是MAPK家族中的重要成員,它能夠參與調(diào)控多種關(guān)鍵的細(xì)胞活動(dòng),包括細(xì)胞的凋亡與增殖[15]。EGFR被認(rèn)為是ERK的主要激活因子,EGFR/ERK信號(hào)通路能夠參與多種細(xì)胞先天免疫反應(yīng)[16]。有研究表明,ERK異常激活將會(huì)導(dǎo)致呼吸道上皮的異常病變,主要包括黏液的過度分泌、細(xì)胞因子過表達(dá)以及炎癥等[17]。本研究通過檢測細(xì)胞中ERK的磷酸化水平發(fā)現(xiàn),EGFR抑制劑預(yù)處理后細(xì)胞內(nèi)的ERK磷酸化明顯降低,而ERK抑制劑也能夠顯著減少細(xì)胞中TNF-α和IL-8的表達(dá)水平,充分說明EGFR能夠激活ERK通路,并參與KP CPS誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)。

      NF-κB信號(hào)通路在調(diào)節(jié)TNF-α和白細(xì)胞介素等多種促炎介質(zhì)方面具有重要作用[18]。研究表明,在卡他莫拉菌引起的呼吸道上皮細(xì)胞炎癥反應(yīng)中,其可通過EGFR激活NF-κB信號(hào)通路促進(jìn)IL-8的分泌[14]。為了分析NF-κB通路是否也參與了KP CPS誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng),本研究又檢測了細(xì)胞中p65的磷酸化水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn)使用EGFR抑制劑后細(xì)胞內(nèi)p65磷酸化水平顯著減少,而進(jìn)一步使用NF-κB抑制劑也能夠有效抑制細(xì)胞中TNF-α和IL-8的分泌,提示NF-κB也可通過EGFR參與KP CPS誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)。

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