潘美紅,楊海峰,惠林沖,薛 萍,繆美華,陳 微,何林玉,陳振泰
(連云港市農(nóng)業(yè)科學(xué)院,江蘇 連云港 222000)
洋蔥產(chǎn)業(yè)是一個效益顯著的產(chǎn)業(yè),有利于農(nóng)村產(chǎn)業(yè)結(jié)構(gòu)調(diào)整,不僅能滿足國內(nèi)市場需求,也為我國出口創(chuàng)匯做出重要貢獻,目前我國的洋蔥種植面積和產(chǎn)量已成為世界上的第一大國[1]。雖然洋蔥在我國蔬菜生產(chǎn)中占重要地位,但是由于我國洋蔥品種資源匱乏,育種單位少[2],科研投入不足,生產(chǎn)上嚴(yán)重缺少有自主知識產(chǎn)權(quán)的洋蔥品種,特別是雜交品種。洋蔥為異花授粉作物,花器官很小,難以開展常規(guī)人工雜交育種,國內(nèi)對洋蔥雄性不育的研究起步比較晚,選育出的洋蔥雜交品種質(zhì)量與國外品種存在一定差距,真正應(yīng)用于市場的很少[3]。利用洋蔥雄性不育系是進行雜交品種選育和制種的關(guān)鍵,大部分從事洋蔥育種的工作者都致力于洋蔥雄性不育系的選育。本研究旨在對田間觀察到的洋蔥不育植株,利用分子標(biāo)記方法進行育性鑒定,確定其不育性及不育類型,然后通過組培擴繁不育系,為選育洋蔥雜交品種奠定基礎(chǔ)。
連蔥15號由連云港市農(nóng)業(yè)科學(xué)院選育,中早熟品種,商品性好,外皮金黃色,內(nèi)部鱗片白色,有甜味,球形指數(shù)0.85,假莖較細(xì);單球重330 g,黃淮地區(qū)9月5~10日播種,11月初定值,次年5月上旬開始采收,產(chǎn)量5400~5900 kg/667 m2,抗病性強。
1.2.1 田間鑒定 洋蔥開花期,在連蔥15號種植群體中尋找符合洋蔥不育株表觀特征的植株,將不育株選擇其中一個花球套袋自交(保證花球上沒有開放的小花),觀察自交結(jié)實情況。
1.2.2 分子標(biāo)記鑒定
1.2.2.1 DNA提取 試驗材料在連云港市農(nóng)業(yè)科學(xué)院東辛農(nóng)場試驗基地種植,開花期在連蔥15號群體中找到3株不育株,另選3株可育株作對照,每株取2個花薹上的1片嫩葉,液氮冷凍研磨,用天根生物有限公司的DNA提取試劑盒(型號:DP350-03)提取DNA,取2 μL樣品于Nanodrop 2000 C微量分光光度計上進行DNA濃度和純度的檢測。
1.2.2.2 引物設(shè)計與合成 引物參考Kim等[4]報道的orf725,由蘇州金唯智生物有限公司合成:
正向引物序列(5′-3′):
F1-CATAGGCGGGCTCACAGGAATA。
反向引物序列(5′-3′):
R1-AATCCTAGTGTCCGGGGTTTCT,
R2-CAGCGAACTTTCATTCTTTCGC。
1.2.2.3 PCR擴增 PCR擴增試劑購置于TAKARA公司,反應(yīng)體系為25 μL,包括:2 μL DNA(0.1 μg),2.5 μL 10×PCR buffer,1.25 μL(10 μmol/L)正向引物,1.25 μL(10 μmol/L)反向引物,2 μL dNTPs(10 mmol/L),0.25 μL TaqM和15.8 mL ddH2O,PCR擴增條件:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,35個循環(huán);72 ℃延伸10 min[5],PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠進行檢測。
1.3.1 組培方法篩選 參照陳振泰等[6]的組培方法,加引用文獻利用同品種可育株,進行培養(yǎng)基配方的篩選,再應(yīng)用于不育株的組培。
表1 培養(yǎng)基成分及配比
注:MS為通用培養(yǎng)基代號,培養(yǎng)基pH為5.8,瓊脂8 g/L,蔗糖30 g/L。
1.3.2 組培苗倍性鑒定 將擴繁得到的洋蔥單株壯苗轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)基1/2MS+1 mg/L 6-BA+0.02 mg/L NAA中進行培養(yǎng),培養(yǎng)溫度為20~25 ℃。當(dāng)組培苗根長至2~3 cm時,隨機選幾根生長健壯的根,取2~3 mm根尖制作壓片[7],在顯微鏡下觀察根尖染色體的有絲分裂情況。
1.3.3 組培苗生根、馴化移栽 洋蔥生根培養(yǎng)后,打開培養(yǎng)器皿的封口,放置1~2 d后,將洋蔥苗從培養(yǎng)器皿中取出,洗凈根部附著的培養(yǎng)基,移入裝有沙土的盆中,于自然光照條件下,白天22~25 ℃、夜間11~15 ℃的條件下培養(yǎng),待洋蔥苗成活后移栽至大田。
2.1.1 不育株表型鑒定 不育株剛開的花花藥顏色呈透明狀、顏色略帶綠色;開花后期與可育株相比,花藥干枯萎縮嚴(yán)重(圖1);用手觸碰花球,無花粉沾手。開花前套袋自交,成熟后經(jīng)檢查完全不結(jié)實。
圖1 洋蔥可育株與不育株花球?qū)Ρ?/p>
2.1.2 不育株分子鑒定 根據(jù)Kim等[4]的報道,采用orf725標(biāo)記進行PCR擴增,能夠在可育株中擴增出一條833 bp,T型不育中擴增出833 bp和628 bp兩條帶,S型不育中只能擴增出628 bp單一條帶。本試驗結(jié)果如圖2,CK為希望之星正常可育株,A為希望之星不育株,3個CK都擴增出833 bp條帶,3個不育材料都擴增出833 bp和628 bp兩個條帶,可以確定田間觀察到的洋蔥為不育株,且是CMS-T型不育。
采用鱗莖盤做外植體,采用MS培養(yǎng)基,配以一定比例的6-BA和NAA,不誘導(dǎo)愈傷組織,只誘導(dǎo)不定芽。由表2可知,每一種培養(yǎng)基都有超過70%的誘導(dǎo)率,采用M65、M74配方的培養(yǎng)基,誘導(dǎo)率達(dá)到了100%。比較平均每個鱗莖盤誘導(dǎo)不定芽數(shù)發(fā)現(xiàn),該洋蔥品種在M74的培養(yǎng)基上平均每個鱗莖盤有3個不定芽,誘導(dǎo)效果明顯高于其他培養(yǎng)基。最終確定用M74,即MS+7 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA培養(yǎng)基進行不育株的擴繁。
圖2 PCR擴增結(jié)果表2 洋蔥在不同培養(yǎng)基上的增殖效果
培養(yǎng)基編號鱗莖盤總數(shù)誘導(dǎo)率/%每鱗莖盤不定芽數(shù)/個M413076.70.767 DEM423073.30.767 DEM433076.70.833 DEM442979.30.862 DEM453076.70.767 DEM463076.70.833 DEM512989.71.100 BCDEM523076.71.070 CDEM533080.01.130 BCDEM542989.70.931 CDEM552871.40.750 DEM563063.30.667 EM612889.31.290 BCDEM623086.71.200 BCDEM633083.31.370 BCDM642996.61.340 BCDM6529100.01.550 BCM662896.41.290 BCDEM712777.80.852 DEM722885.71.250 BCDEM732996.61.720 BM7430100.03.030 AM752993.11.340 BCDM763096.71.230 BCDE
將所獲得的不定芽從鱗莖盤切下,轉(zhuǎn)移至MS培養(yǎng)基中,7~10 d后發(fā)育成正常植株,再將該植株轉(zhuǎn)入1/2MS+1 mg/L 6-BA+0.02 mg/L NAA培養(yǎng)基中生根,20 d左右生根,對所獲得的再生植株進行根尖染色體數(shù)分析,發(fā)現(xiàn)擴繁所得的洋蔥不育株含2n=2x=16條染色體(圖3)。
利用雄性不育系配制雜種一代是蔬菜雜交優(yōu)勢利用的主要育種途徑,洋蔥也是最早利用雄性不育系育種的蔬菜之一[8],但是由于洋蔥兩年生,3年1個世代,采用傳統(tǒng)育種方法選育洋蔥雄性不育系時間太長。國外對洋蔥雄性不育的研究較早較深入,目前中國市場上的洋蔥雜交品種也多從國外引進,我國缺乏具有自主知識產(chǎn)權(quán)的洋蔥雜交品種瓶頸在于洋蔥不育系的選育。國內(nèi)外利用分子標(biāo)記進行洋蔥雄性育性的相關(guān)研究已有不少報道[4,9-20],通過試驗比較,采用orf725標(biāo)記,不僅能快速鑒定出洋蔥育性,還能區(qū)分出洋蔥不育類型,方法簡單實用而經(jīng)濟。利用組培,能快速擴繁不育株,但是對于不同類型的洋蔥,不同配方的培養(yǎng)基,增殖效果不盡相同,本試驗條件下,連蔥15號以洋蔥鱗莖盤為外植體,含有7 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA的MS培養(yǎng)基增殖效果最好,通過染色體計數(shù)分析,洋蔥組培苗的倍性不變。分子標(biāo)記與組織培養(yǎng)兩者有效結(jié)合,能快速培育出不育系,為雜交種的選育提供材料。
圖3 再生洋蔥植株根尖細(xì)胞有絲分裂
參考文獻:
[1] 潘天春.洋蔥育種的探索與實踐[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(5):119-121.
[2] 王立浩,方智遠(yuǎn),杜永臣,等.我國蔬菜種業(yè)發(fā)展戰(zhàn)略研究[J].中國工程科學(xué),2016,18(1):123-136.
[3] 吳海濤,馬蓉麗,劉洪炯,等.洋蔥細(xì)胞質(zhì)雄性不育系選育研究進展[J].園藝學(xué)報,2009,36(2):297-302.
[4] Kim S, Lee E, Cho D Y, et al. Identification of a novel chimeric gene,orf725, and its use in development of a molecular marker for distinguishing among three cytoplasm types in onion (AlliumcepaL.)[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2009, 118(3): 433-441.
[5] 惠林沖.蓮藕NnDREB2A克隆,表達(dá)分析和功能驗證[D].揚州:揚州大學(xué),2015:33-34.
[6] 陳振泰,楊海峰,潘美紅,等.一種洋蔥組織培養(yǎng)的方法:中國,CN101986830A[P].2011-03-23.
[7] 張文霞,戴灼華,樊啟昶,等.遺傳學(xué)實驗指導(dǎo)[M].北京:高等教育出版社,2007:47-48.
[8] 陳沁濱,范育明.洋蔥雄性不育系101A的雜優(yōu)利用[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(3):183-184.
[9] Sato Y. PCR amplification of CMS-specific mitochondrial nucleotide sequences to identify cytoplasmic genotypes of onion (AlliumcepaL.)[J]. Theoretical and Applied Genetics, 1998, 96(3/4): 367-370.
[10] Engelke T, Terefe D, Tatlioglu T. A PCR-based marker system monitoring CMS-(S), CMS-(T) and (N)-cytoplasm in the onion (AlliumcepaL.)[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2003, 107(1): 162-167.
[11] 劉杰,崔成日,崔崇士,等.洋蔥細(xì)胞質(zhì)雄性不育系與相應(yīng)保持系線粒體DNA的PRAD分析[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2004,35(3):322-324.
[12] Martin W J, McCallum J, Shigyo M, et al. Genetic mapping of expressed sequences in onion and in silico comparisons with rice show scant collinearity[J]. Molecular Genetics and Genomics, 2005, 274(3): 197-204.
[13] 陳沁濱,侯喜林,王建軍,等.洋蔥細(xì)胞質(zhì)雄性不育系101A的分子鑒定[J].西北植物學(xué)報,2006(12):2430-2433.
[14] 陳沁濱,侯喜林,陳曉峰,等.洋蔥細(xì)胞質(zhì)雄性不育基因RAPD及SCAR分子標(biāo)記研究[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2007,30(4):16-19.
[15] 李園園,王忠,梁峰,等.洋蔥細(xì)胞質(zhì)雄性不育系70及其保持系71基因組DNA的RAPD分析[J].生物技術(shù)通報,2006(6):100-102.
[16] 吳海濤,王建軍,侯喜林,等.兩個洋蔥雄性不育系細(xì)胞質(zhì)類型的鑒定與分析[J].園藝學(xué)報,2009,36(5):723-726.
[17] 吳海濤,王建軍,侯喜林,等.洋蔥T型細(xì)胞質(zhì)雄性不育相關(guān)基因的結(jié)構(gòu)與表達(dá)模式研究[J].園藝學(xué)報,2010,37(4):631-636.
[18] Kim S, Yoon M. Comparison of mitochondrial and chloroplast genome segments from three onion (AlliumcepaL.) cytoplasm types and identification of a trans-splicing intron ofcox2[J]. Current Genetics, 2010, 56(2): 177-188.
[19] Yang Y Y, Huo Y M, Miao J, et al. Identification of two SCAR markers co-segregated with the dominantMsand recessivemsalleles in onion (AlliumcepaL.)[J]. Euphytica, 2013, 190(2): 267-277.
[20] Bang H, Kim S, Park S O, et al. Development of a codominant CAPS marker linked to theMslocus controlling fertility restoration in onion (AlliumcepaL.)[J]. Scientia Horticulturae, 2013(153): 42-49.