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    分段調(diào)控pH值對陰溝腸桿菌WL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫的影響

    2018-06-08 00:51:36屈曉偉李艷賓
    中國釀造 2018年5期
    關(guān)鍵詞:糖液棉稈產(chǎn)氫

    屈曉偉,李艷賓,2,張 琴,2*

    (1.塔里木大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,新疆 阿拉爾 843300;2.塔里木大學(xué) 塔里木盆地生物資源保護利用兵團重點實驗室,新疆 阿拉爾 843300)

    氫能是地球上最清潔的終極能源,目前已成為世界各國競相開發(fā)的可再生能源。近年來,通過產(chǎn)氫微生物發(fā)酵木質(zhì)纖維素水解液生產(chǎn)生物氫已引起了廣泛地關(guān)注[1-5]。其中,產(chǎn)氫微生物在發(fā)酵產(chǎn)氫過程中起到了主導(dǎo)作用,自然界的發(fā)酵產(chǎn)氫微生物主要包括專性厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫菌、兼性厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫菌和需氧發(fā)酵產(chǎn)氫菌[6-11]。兼性厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫菌中的腸桿菌屬(Enterobacter)是目前研究最多的產(chǎn)氫細菌,能夠通過分解甲酸的代謝途徑產(chǎn)氫,即通過混合酸發(fā)酵途徑產(chǎn)氫[12-13]。該屬細菌在發(fā)酵產(chǎn)氫過程中會伴隨多種有機酸(如乳酸、乙酸等)的產(chǎn)生,使發(fā)酵液pH值降低。

    pH值是影響發(fā)酵產(chǎn)氫過程的重要因素,能影響產(chǎn)氫菌的活力和發(fā)酵產(chǎn)氫代謝過程[14]。發(fā)酵過程的pH調(diào)控直接影響產(chǎn)氫菌一些有機酸類代謝物(如乳酸、乙酸等)的濃度,有利于生物氫的合成[15]。QIU C S等[16]研究了pH和基質(zhì)濃度對極端嗜熱菌群發(fā)酵產(chǎn)氫的影響,發(fā)現(xiàn)菌群最適的發(fā)酵產(chǎn)氫起始pH在中性范圍(pH6.0~7.0),在起始pH7.0、木糖質(zhì)量濃度7.5g/L時獲得最高的生物氫產(chǎn)量(1.29 mol H2/mol消耗的木糖)。KHANNA N等[13]調(diào)控Enterobacter cloacaeIIT-BT 08發(fā)酵葡萄糖產(chǎn)氫過程中pH值恒定為6.5,獲得了較高的生物氫產(chǎn)量(3.1 mol H2/mol葡萄糖)、特異產(chǎn)氫潛力

    收稿日期:2018-01-26 修回日期:2018-04-26

    基金項目:國家自然科學(xué)基金資助項目(21406150)

    作者簡介:屈曉偉(1992-),男,碩士研究生,研究方向為產(chǎn)氫微生物發(fā)酵產(chǎn)氫及代謝調(diào)控。

    *通訊作者:張 琴(1980-),女,副教授,博士,研究方向為產(chǎn)氫微生物及其代謝工程改造。798.1 mL/g)和特異產(chǎn)氫速率(72.1 mL(/L·h·g))。

    棉稈是新疆分布最廣泛的生物質(zhì)原料,用棉稈水解糖液發(fā)酵產(chǎn)氫已成為棉稈高值化利用的重要方式之一,然而,目前棉稈水解糖液發(fā)酵產(chǎn)氫僅限于產(chǎn)氫動力學(xué)等基本特性的研究[17],尚未實現(xiàn)對其發(fā)酵過程的有效調(diào)控。本研究通過研究分段調(diào)控pH值對Enterobacter cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中發(fā)酵液pH值、生物氫合成、棉稈水解糖液中葡萄糖和木糖利用、菌株生長的影響,以期為有效調(diào)控該菌株發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫的過程提供理論指導(dǎo)和技術(shù)參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 材料

    陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)WL1318:由塔里木盆地生物資源保護利用兵團重點實驗室保藏;棉稈原料:采自新疆阿拉爾棉田,風(fēng)干、粉碎、過篩后經(jīng)水解獲得水解糖液用于發(fā)酵產(chǎn)氫實驗。

    1.1.2 主要試劑

    葡萄糖、木糖、牛肉膏、蛋白胨、3,5-二羥基甲苯(地衣酚)、3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)、酒石酸鉀鈉、瓊脂粉、重蒸酚:生工生物工程(上海)股份有限公司;NaCl、KH2PO4、MgSO4·7H2O、NaCl、FeCl3、濃鹽酸、濃硫酸、NaOH(均為分析純):國藥集團化學(xué)試劑有限公司;大孔吸附樹脂LS808:陜西藍深特種樹脂有限公司。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    斜面活化培養(yǎng)基:D-木糖10 g,葡萄糖10 g,牛肉膏5 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,KH2PO40.5 g,MgSO·47H2O 1 g,瓊脂22 g,pH7.0,水1 000 mL,110 ℃滅菌30 min。

    種子培養(yǎng)基:D-木糖10 g,葡萄糖10 g,牛肉膏5 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,KH2PO40.5 g,MgSO4·7H2O 1 g,pH 7.0,水1 000 mL,110℃滅菌30 min。

    發(fā)酵培養(yǎng)基:棉稈酸解糖液1 000 mL,牛肉膏5 g,蛋白胨10 g,NaCl 5 g,KH2PO40.5 g,MgSO·47H2O 0.5 g,pH 7.5,110℃滅菌30min。棉桿水解糖液初始糖濃度調(diào)節(jié)為40g/L。

    1.2 儀器與設(shè)備

    LDZX-50KB立式電熱壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;SW-CJ-2F超凈工作臺、HPX-9272MBE數(shù)顯電熱培養(yǎng)箱、GZX-9140MBE數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱、SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵:鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;UV754N紫外-可見分光光度計:上海精密科學(xué)儀器有限公司;RE-52CS旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器公司;PHS-3C精密酸度計:上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 棉稈水解糖液制備方法

    棉稈水解糖液制備參照ZHANG Q等[18]報道的棉稈酸解優(yōu)化工藝進行制備:過篩的棉稈(20目)采用4%(V/V)稀硫酸溶液按照固液比1∶5(g∶mL)于121 ℃水解30 min,抽濾得到棉稈的酸水解液。酸水解液經(jīng)NaOH和Ca(OH)2(1∶3,物質(zhì)的量比)沉淀、4%H2SO4回調(diào)脫毒,大孔吸附樹脂脫色,得到一定濃度脫毒、脫色的棉稈水解糖液,再經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮至所需糖濃度備用。

    1.3.2 菌種的活化與接種

    挑取2~3環(huán)活化的斜面菌種接種至種子培養(yǎng)基,250mL三角瓶裝液量為100 mL,于37℃、120 r/min振蕩培養(yǎng)15~16 h。調(diào)節(jié)種子液OD600nm為0.8~1.0,按10%(V/V)接種量接種于發(fā)酵培養(yǎng)基中,密封好發(fā)酵裝置并連接好各導(dǎo)氣管(500 mL自制產(chǎn)氫發(fā)酵裝置裝液量為350 mL,每個處理3個重復(fù)),置于37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.3.3 生物氫收集和檢測方法

    采用排氫氧化鈉溶液法[20]收集并檢測氫氣體積,每24h收集并檢測3次氫氣體積,累加計為日均產(chǎn)氫量。每24 h取8 mL發(fā)酵液,2 mL用于測定菌體OD600nm,1 mL通過稀釋平皿計數(shù)法檢測活菌數(shù),剩余5 mL置于離心管中,4 000 r/min離心20 min,取上清液,檢測葡萄糖和木糖的質(zhì)量濃度。

    1.3.4 分析檢測方法

    棉稈水解糖液及發(fā)酵液中葡萄糖和木糖質(zhì)量濃度分別采用DNS比色法[19]和地衣酚比色法[21]測定。培養(yǎng)基和發(fā)酵液的pH值采用精密酸度計測定。葡萄糖和木糖利用率:采用發(fā)酵過程中消耗的葡萄糖(或木糖)質(zhì)量濃度占初始葡萄糖(或木糖)質(zhì)量濃度的百分比來表示。

    1.3.5 計算公式和分析軟件

    采用Gompertz模型對不同處理下的累積產(chǎn)氫量進行擬合[22],方程如下所示:

    式中:H為累積產(chǎn)氫量,mL/L;P表示產(chǎn)氫潛力,mL/L,Rm為最大產(chǎn)氫速率,mL(/L·h),λ為延滯期時間,h,e為自然常數(shù),2.718 28;式中P、Rm和λ值通過Sigmaplot 12.0軟件進行計算和分析。

    各處理數(shù)據(jù)通過Origin 8.0軟件計算、分析并作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中發(fā)酵液pH值的影響

    檢測了不同pH值分段調(diào)控處理下,E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中的發(fā)酵液pH值變化,結(jié)果如圖1所示。

    由圖1可知,未進行pH調(diào)控的處理組,盡管發(fā)酵液初始pH值調(diào)節(jié)為7.5,但其pH值在發(fā)酵產(chǎn)氫過程中卻急劇下降,發(fā)酵48 h,發(fā)酵液pH值<5.0,至發(fā)酵結(jié)束(120 h),發(fā)酵液pH值<4.0。在分段調(diào)控pH值的處理中,自調(diào)控時間點起,發(fā)酵pH值調(diào)為初始pH值(7.5),之后發(fā)酵液pH值也隨發(fā)酵時間降低,但降低的幅度仍然小于未調(diào)控處理的,并且48 h調(diào)控組的pH值降低幅度小于28 h調(diào)控組的,這兩個pH值調(diào)控組至發(fā)酵結(jié)束(120 h)時,發(fā)酵液pH值均能維持在5.0左右。由此可見,E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中,適當進行pH值調(diào)控,可控制發(fā)酵液pH值不會急劇降低。

    圖1 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中發(fā)酵液pH值的影響Fig.1 Effect of subsection control of pH value on pH value of fermentative broth in the hydrogen production process of cotton stalk hydrolysate fermentation byE.cloacae WL1318

    2.2 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中生物氫合成的影響

    對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中的日均產(chǎn)氫量進行了監(jiān)測,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中日均產(chǎn)氫量的影響Fig.2 Effect of subsection control of pH value on daily average hydrogen yield in the hydrogen production process of cotton stalk hydrolysate fermentation byE.cloacae WL1318

    由圖2可知,發(fā)酵前48 h,分段調(diào)控pH值處理和未調(diào)控處理的日均產(chǎn)氫量沒有顯著差異(P>0.05)。發(fā)酵48 h后,分段調(diào)控pH值處理的日均產(chǎn)氫量顯著提高(P<0.05),尤其48 h調(diào)控pH值的處理提高幅度較大,發(fā)酵72 h的日均產(chǎn)氫量相較未調(diào)控處理的提高約1.5倍。至發(fā)酵結(jié)束(120 h),24 h調(diào)控pH值和48 h調(diào)控pH值處理的日均產(chǎn)氫量接近,均高于未調(diào)控處理的??梢姡{(diào)控pH值處理有效提高了發(fā)酵液pH值和菌株的日均產(chǎn)氫量,說明E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中進行pH調(diào)控可有效促進菌株生物氫的合成。

    日均產(chǎn)氫量按發(fā)酵時間累加,統(tǒng)計了E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液120 h的累積產(chǎn)氫量,統(tǒng)計結(jié)果見圖3。由圖3可知,發(fā)酵48 h后,分段調(diào)控pH值處理顯著提高了菌株的累積產(chǎn)氫量(P<0.05)。至發(fā)酵結(jié)束(120 h),24 h調(diào)控pH值和48 h調(diào)控pH值處理的累積產(chǎn)氫量相較未調(diào)控處理的分別提高了約15%和30%,表明調(diào)控pH值處理有利于菌株累積合成氫氣,對菌株生物氫的合成起到了正調(diào)控作用。

    圖3 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中累積產(chǎn)氫量的影響Fig.3 Effect of subsection control of pH value on cumulative hydrogen yield in the hydrogen production process of cotton stalk hydrolysate fermentation byE.cloacae WL1318

    采用Gompertz模型對不同處理下的累積產(chǎn)氫量進行擬合,并對其中的參數(shù)P、Rm和λ值進行計算,并計算模型的相關(guān)系數(shù)R2,結(jié)果見表1。由表1可知,在各處理條件下,相關(guān)系數(shù)R2均>0.99,說明各處理組的累積產(chǎn)氫量可充分通過Gompertz模型進行擬合。24 h調(diào)控pH值和48 h調(diào)控pH值處理的產(chǎn)氫潛力P均高于未調(diào)控處理的,說明在發(fā)酵的一定階段調(diào)控發(fā)酵液pH值可提高菌株的產(chǎn)氫潛力,有利于生物氫的合成。最大產(chǎn)氫速率Rm以24 h調(diào)控pH值的處理最高,說明在發(fā)酵24h調(diào)控pH值能促進生物氫的快速合成。24h調(diào)控pH值和48 h調(diào)控pH值處理的延滯期λ均較未調(diào)控處理的長,說明菌株在一定pH值調(diào)控處理下,通過延長延滯期、推遲生長峰期來適應(yīng)厭氧發(fā)酵產(chǎn)氫過程,從而提高自身產(chǎn)氫潛力,以提高生物氫的合成量。

    表1 不同pH值調(diào)控方式下Gompertz模型擬合累積產(chǎn)氫量的參數(shù)和相關(guān)系數(shù)Table 1 Parameters and correlation coefficients of Gompertz model fitted cumulative hydrogen yield in different pH value control methods

    2.3 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中棉稈水解糖液中葡萄糖和木糖利用的影響

    檢測了不同pH值分段調(diào)控處理下,E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中的葡萄糖和木糖質(zhì)量濃度變化,并換算了全發(fā)酵過程中的葡萄糖和木糖利用率,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中葡萄糖(A)和木糖(B)利用的影響Fig.4 Effect of subsection control of pH value on glucose(A)and xylose(B)utilization in the hydrogen production process of cotton stalk hydrolysate fermentation byE.cloacaeWL1318

    由圖4可知,在發(fā)酵過程中,24 h和48 h調(diào)控pH值處理的葡萄糖質(zhì)量濃度略低于未調(diào)控處理的,葡萄糖利用率略高于未調(diào)控處理的。由此可見,E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中調(diào)控發(fā)酵液pH值對棉稈水解糖液中葡萄糖利用的影響并不顯著(P>0.05),僅引起了葡萄糖質(zhì)量濃度及其利用率的略微變化(見圖4A)。發(fā)酵液24 h和48 h調(diào)控pH值對棉稈水解糖液中木糖利用的影響均不顯著(P>0.05),說明在發(fā)酵24 h和48 h調(diào)控pH值并不影響棉稈水解糖液中木糖的利用(見圖4B)。

    2.4 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中菌株生長的影響

    檢測了E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中的活菌數(shù)和菌體生長OD600nm的變化,結(jié)果如圖5所示。

    圖5 分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中活菌數(shù)和OD600 nm的影響Fig.5 Effect of alternative pH regulation on viable count and OD600 nm in the hydrogen production process of cotton stalk hydrolysate fermentation byE.cloacaeWL1318

    由圖5可知,分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中的活菌數(shù)變化影響較大,發(fā)酵24h調(diào)控pH值,其活菌數(shù)在發(fā)酵48 h達到峰值;48 h調(diào)控pH值的處理,其活菌數(shù)在發(fā)酵72 h達到另一個峰值;未調(diào)控處理,其活菌數(shù)在發(fā)酵24 h達到峰值后,數(shù)量急劇下降,至發(fā)酵結(jié)束(120 h),其活菌數(shù)已接近初始接種的活菌數(shù)量水平。相應(yīng)地,從OD600nm的變化曲線來看,分段調(diào)控pH值的處理,其OD600nm在調(diào)控時間點后均顯著高于未調(diào)控處理的(P<0.05)。可見,在一定的發(fā)酵階段進行pH值調(diào)控,有利于細菌菌體的生長,而細菌菌體的生長對于菌株發(fā)酵產(chǎn)氫是十分必要的。

    E.cloacaeWL1318是一類典型的兼性厭氧細菌,這類細菌發(fā)酵產(chǎn)氫主要通過混合酸發(fā)酵途徑進行[12-13],因此,這類細菌發(fā)酵產(chǎn)氫的過程會伴隨大量有機酸的產(chǎn)生,造成發(fā)酵液pH值的降低。發(fā)酵液pH值過低勢必引起細菌生長和生物氫合成受阻,為此,在菌株發(fā)酵產(chǎn)氫的一定階段進行pH值調(diào)控,可以促進細菌有效生長,從而有利于生物氫的合成。

    3 結(jié)論

    本研究采用分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程進行了調(diào)控。研究發(fā)現(xiàn),pH調(diào)控處理首先使得發(fā)酵液中的pH值不會急劇下降,從而不會產(chǎn)生過低的pH培養(yǎng)環(huán)境,并且能維持發(fā)酵結(jié)束的pH值維持在5.0左右。

    分段調(diào)控pH值對E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中生物氫合成和菌體生長有顯著影響(P<0.05)。發(fā)酵48 h后,分段調(diào)控pH值處理均能顯著提高日均產(chǎn)氫量和累積產(chǎn)氫量(P<0.05),尤以48 h調(diào)控pH值的處理提高幅度較大。采用Gompertz模型對不同處理下的累積產(chǎn)氫量擬合,其相關(guān)系數(shù)R2均高于0.99,闡明了動力學(xué)模型的可行性。分段調(diào)控pH值處理的產(chǎn)氫潛力P均高于未調(diào)控處理的,說明在發(fā)酵的一定階段調(diào)控發(fā)酵液pH值可提高菌株的產(chǎn)氫潛力,有利于生物氫的合成。分段調(diào)控pH值處理使E.cloacaeWL1318在調(diào)控時間點后達到活菌數(shù)峰值,且菌體生長OD600nm在調(diào)控時間點后均高于未調(diào)控處理的,表明其對菌株的生長有正調(diào)控作用。

    總的來看,E.cloacaeWL1318發(fā)酵棉稈水解糖液產(chǎn)氫過程中發(fā)酵液pH值會急劇降低。在其一定的發(fā)酵產(chǎn)氫階段進行pH值調(diào)控,可以促進細菌有效生長,從而有利于生物氫的合成,調(diào)控pH處理方式為有效調(diào)控該菌株的發(fā)酵產(chǎn)氫過程、提高生物氫產(chǎn)量提供了技術(shù)參考和理論指導(dǎo),具有重要的意義。

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