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      幽門螺旋桿菌候選疫苗抗原的研究進(jìn)展①

      2018-01-23 18:49:05趙福廣黃利亞
      中國免疫學(xué)雜志 2018年6期
      關(guān)鍵詞:表位毒力抗原

      趙 翠 趙福廣 黃利亞

      (吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,長春 130118)

      1 前言

      HP是一種螺旋形,寄居于人胃黏膜上的一種革蘭氏陰性微需氧菌,對(duì)生長條件要求十分苛刻。HP不依賴組織入侵的方式定植于胃上皮黏膜,這在很大程度上有利于逃避宿主免疫機(jī)制,同時(shí),HP有整合環(huán)境DNA的能力,這種能力增加了HP在變化的環(huán)境中得以生存的機(jī)會(huì)[1]。HP感染后的臨床表現(xiàn)多樣性提示了HP致病機(jī)制的復(fù)雜性。在與疾病的相關(guān)性方面,HP是慢性胃炎、十二指腸潰瘍等的主要致病菌,且與胃癌、胃黏膜相關(guān)淋巴組織(Mucosa associated lymphoid tissue,MATL)惡性淋巴瘤的發(fā)生有密切聯(lián)系。最近的研究表明[2],HP與神經(jīng)退行性疾病的關(guān)聯(lián)性呈上升趨勢,此外在多發(fā)性硬化患者中HP檢出率極低,推測HP可能是發(fā)展多發(fā)性硬化的保護(hù)因子[3]。在對(duì)HP疫苗的探究過程中,圍繞全菌體抗原進(jìn)行的攻毒試驗(yàn)獲得了較為理想的免疫保護(hù)率,但因其成分復(fù)雜,安全性差等缺點(diǎn),將其作為疫苗應(yīng)用于人體,還需進(jìn)一步研究。因此,研制一種經(jīng)濟(jì)、高效、安全的治療性疫苗是防治HP感染的有效途徑,而篩選高效抗原又是疫苗研制工作的重中之重,本文就HP疫苗的候選抗原的研究近況及發(fā)展前景作一綜述。

      2 抗原研究進(jìn)展

      2.1尿素酶 尿素酶(Urase)位于細(xì)菌表面,包括UreA和UreB兩個(gè)結(jié)構(gòu)基因,其豐富的蛋白含量約占全菌蛋白的5%~10%。在HP的致病機(jī)制方面,尿素酶主要通過水解尿素產(chǎn)生氨和二氧化碳,調(diào)節(jié)細(xì)菌細(xì)胞周圍的pH值,是HP在高強(qiáng)度胃酸中得以生存和定植的關(guān)鍵[4],同時(shí)尿素酶是HP重要的定植因子和毒力因子,因此,“無酸無潰瘍”的傳統(tǒng)觀點(diǎn)已經(jīng)被打破。

      目前,對(duì)尿素酶的研究比較廣泛,秦玉紅等[5]將純化的rUreB蛋白加弗氏佐劑經(jīng)腹腔注射免疫小鼠,可誘導(dǎo)產(chǎn)生高水平的特異性抗體,測得小鼠血清中的IgG抗體水平較對(duì)照組相比顯著增加,同樣的結(jié)果體現(xiàn)在Zhang等[6]的研究中。隨著研究的深入,研究者們發(fā)現(xiàn)將尿素酶和其他能誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生免疫保護(hù)作用的抗原聯(lián)合制成二價(jià)或多價(jià)疫苗,可能會(huì)進(jìn)一步增強(qiáng)疫苗的免疫效果。林煥建等[7]通過UreB和過氧化氫酶加免疫佐劑CT制成二價(jià)口服疫苗,獲得了近83.4%的免疫保護(hù)率,與單價(jià)疫苗組即過氧化氫酶加CT組的41.7%和UreB加CT組的54.2%相比獲得了較為理想的免疫效果,且二價(jià)疫苗組中小鼠胃黏膜中HP的定植密度也明顯降低。更多可喜的研究結(jié)果體現(xiàn)在Zhou等[8,9]的研究中。

      雖然不同地區(qū)的HP菌株具有多樣性和易變異等特點(diǎn),但不同HP菌株間UreB的核酸序列具有高度的保守性和同源性,且分子量大,特異性強(qiáng),能有效地誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生穩(wěn)定的免疫保護(hù)作用,與UreA相比,UreB具有更好的免疫保護(hù)作用[10]。因此,UreB被列為最有前景的候選抗原之一。

      2.2空泡毒素和細(xì)胞毒素

      2.2.1空泡毒素 空泡毒素相關(guān)基因A (Vacuolat-ing cytotoxin gen A,VacA)編碼的VacA蛋白是HP中重要的毒力因子和致病因子。有研究表明,VacA和CagA基因的可變序列可能是HP菌株多樣性和易變異的主要原因。目前,根據(jù)VacA和CagA的表達(dá)情況,可將HP分為兩類:Ⅰ型(CagA+VacA+)和Ⅱ型(CagA-VacA-)。

      VacA是一種約含有860個(gè)氨基酸殘基的多功能蛋白,該毒素通過在靶細(xì)胞膜上形成小孔,導(dǎo)致細(xì)胞中離子和小分子物質(zhì)泄漏。VacA最重要的生物學(xué)作用是誘導(dǎo)宿主細(xì)胞的細(xì)胞膜孔隙與空泡的形成,誘導(dǎo)上皮細(xì)胞空泡樣損傷[11]。Chiozzi等[12]研究表明:VacA可誘發(fā)炎癥反應(yīng),而VacA與氯化銨聯(lián)合作用,在誘發(fā)炎癥反應(yīng)的同時(shí),還可使人胃上皮細(xì)胞加速凋亡。Hasanzadeh等[13]將VacA的抗原區(qū)克隆到載體PET32a中,并在大腸桿菌BL21中表達(dá)目的蛋白,結(jié)果表明VacA蛋白不但具有抗原性,且重組VacA蛋白能夠與HP患者血清中IgG特異性識(shí)別。由以上結(jié)果不難看出VacA作為HP疫苗候選抗原的潛力,并推測VacA可以用于HP診斷試劑和HP疫苗的發(fā)展,但VacA單獨(dú)作為抗原對(duì)小鼠進(jìn)行攻毒試驗(yàn)并評(píng)價(jià)免疫效果的研究很少,一般是與細(xì)胞毒素相關(guān)基因A或其他抗原聯(lián)合應(yīng)用。

      2.2.2細(xì)胞毒素 細(xì)胞毒素相關(guān)基因A(Cytotoxin-associated gen A,CagA)的表達(dá)產(chǎn)物CagA蛋白是一種免疫原性較強(qiáng),存在于菌體表面的外膜蛋白。CagA基因5′端高度保守,不同毒力菌株之間的同源性高達(dá)80%以上,可以作為候選抗原刺激機(jī)體產(chǎn)生免疫反應(yīng),與此相反的CagA基因3′端相對(duì)多變,含有不同數(shù)量的重復(fù)序列。CagA是HP中能增強(qiáng)胃炎、消化性潰瘍的一種重要的毒力因子,還可能是胃上皮細(xì)胞癌變的關(guān)鍵因素[14]。據(jù)早些年研究表明[15],CagA陽性菌株常見于炎癥較為嚴(yán)重或胃癌患者中,這些患者胃上皮細(xì)胞中的AP-1和NFKB等轉(zhuǎn)錄因子活性升高,其激活可導(dǎo)致多種炎癥因子如IFN-γ、IL-2等的表達(dá),從而加劇胃黏膜損傷。再者,T細(xì)胞的FasL基因啟動(dòng)子區(qū)域有2個(gè)NF-κB和3個(gè)AP-1結(jié)合位點(diǎn),CagA可能通過激活轉(zhuǎn)錄因子增強(qiáng)T細(xì)胞FasL基因的表達(dá),損害Fas陽性上皮細(xì)胞,促進(jìn)T細(xì)胞間“相互殘殺”。因此以上研究并不支持CagA用于候選抗原的應(yīng)用。但隨著研究的深入,發(fā)現(xiàn)CagA基因完整的DNA序列因其含有非必需表位和較高分子質(zhì)量,不易克隆和表達(dá)。因此,研究者們選擇將CagA部分基因序列與其他抗原聯(lián)合,制備二價(jià)甚至多價(jià)疫苗,并在動(dòng)物模型中取得了較為可喜的成果,同時(shí)開啟了由HP單價(jià)疫苗轉(zhuǎn)向多價(jià)疫苗的時(shí)代[16,17]。

      近些年來,對(duì)VacA和CagA的研究僅限于動(dòng)物模型,鮮有VacA和CagA疫苗進(jìn)入臨床試驗(yàn)的相關(guān)報(bào)道,但對(duì)二者的研究熱度并沒有因此而減少。由于多抗原融合疫苗參與發(fā)病的不同階段,因而獲得了較為理想的免疫效果,為HP多價(jià)疫苗的發(fā)展提供一定的理論支持,HP多價(jià)疫苗可能是攻克HP感染道路上的成功一步。

      2.3黏附素 黏附素(Helicobacter pylori adhesin A,Hpa A)是由Hpa A基因編碼的脂蛋白,不同HP菌株間高度保守,迄今為止,并沒有發(fā)現(xiàn)Hpa A陰性菌株。Hpa A介導(dǎo)HP的黏附與定植,具有較好的免疫原性和免疫反應(yīng)性,但發(fā)揮免疫保護(hù)作用的關(guān)鍵表位和分子機(jī)制尚不明確。有研究表明,Hpa A由胞內(nèi)區(qū)、跨膜區(qū)、胞外區(qū)三個(gè)部分組成,其中跨膜區(qū)和胞外區(qū)發(fā)揮免疫保護(hù)作用[18],因此,F(xiàn)lach等[19]利用截短形式的HpaA聯(lián)合UreB免疫C57BL/6小鼠,與對(duì)照組全長的Hpa A聯(lián)合UreB相比較,HP特異性抗體IgG的滴度顯著升高。近期,Tobias等[20]構(gòu)建重組無毒的霍亂弧菌,將Hpa A和產(chǎn)腸毒素大腸桿菌定植因子(CFA/I)共表達(dá)(VC-HpaA-CFA/I),發(fā)現(xiàn)與VC-HpaA相比,Hpa A水平在重組菌株VC-HpaA-CFA/I中的表達(dá)量更高,理論上,此種疫苗可以對(duì)抗包括大腸桿菌、幽門螺旋桿菌、霍亂弧菌在內(nèi)的三種病原體,可能成為抗HP感染的潛在候選疫苗,為今后研制對(duì)抗多種病原體疫苗提供更多的理論支持,但此疫苗的安全性有待進(jìn)一步評(píng)估。

      2.4過氧化氫酶 過氧化氫酶(Catalase,KatA)是一種高度保守,暴露于菌體表面的蛋白酶,約占HP菌體蛋白的1.5%左右。在功能上KatA與Urase似乎有著異曲同工之妙,KatA通過將有毒的代謝產(chǎn)物轉(zhuǎn)化成水,保證代謝平衡的同時(shí),保護(hù)HP免受中性粒細(xì)胞殺傷,是HP逃避宿主免疫的重要組成部分。同時(shí)KatA在pH<3的環(huán)境中仍可保持活性,是HP在胃黏膜極酸環(huán)境中得以定植和生存的關(guān)鍵。近些年,關(guān)于KatA表位疫苗的研究較多,并證實(shí)含有較少氨基酸序列的KatA表位疫苗等同甚至優(yōu)于KatA全序列疫苗[21,22]。隨著研究的深入,KatA抗原與疾病的關(guān)聯(lián)程度備受關(guān)注,尤其是在胃癌中。有研究表明[23],較高的KatA抗體滴度在一定程度上可以預(yù)防胃癌的發(fā)生,并可以作為胃癌篩選的生物標(biāo)志物。經(jīng)查閱文獻(xiàn)可以看出,在2010年甚至更早以前涌現(xiàn)了大量關(guān)于證實(shí)KatA免疫原性的研究[24,25],為KatA作為HP疫苗候選抗原、KatA聯(lián)合其他抗原、KatA表位疫苗的發(fā)展提供理論依據(jù)。雖然表位疫苗的表位識(shí)別和正確組裝技術(shù)尚不成熟,表位之間的相互影響仍需探索,但KatA表位疫苗已經(jīng)展現(xiàn)了不俗的發(fā)展前景,這為探究HP疫苗的大方向奠定基礎(chǔ)。

      2.5膜炎性蛋白 膜炎性蛋白(Outer inflammatory protrin,OipA)由hopH基因編碼,相對(duì)分子質(zhì)量約34 kD。關(guān)于OipA與臨床疾病的關(guān)系尚無統(tǒng)一定論,有研究發(fā)現(xiàn),在胃潰瘍患者中OipA+HP的總檢出率高達(dá)100%,顯著高于胃炎患者26.2%的檢出率。相似的結(jié)果也體現(xiàn)在Markovska等[26]的研究中,OipA幾乎表達(dá)于從消化性潰瘍患者分離的所有菌株中(97%),在胃炎患者中分離的菌株中較少(66%)。但在最近的研究卻展現(xiàn)相反的結(jié)果,OipA與胃部疾病無關(guān)聯(lián),不能作為預(yù)測診斷胃腸疾病的標(biāo)志[27]。

      目前,對(duì)于OipA能否直接影響促炎性信號(hào)還存在爭議,有研究表明,功能性的hopH基因失活導(dǎo)致IL-8分泌減少50%左右,因此功能性的OipA在IL-8的誘導(dǎo)中起著重要作用。與此相反,在Dossumbekova等[28]的研究中發(fā)現(xiàn)hopH基因表達(dá)與IL-8分泌并沒有相關(guān)性。出現(xiàn)上述兩種結(jié)果的原因可能是菌種的區(qū)域性差異,因此,不同地理區(qū)域的臨床報(bào)告預(yù)測毒力因子與疾病的發(fā)生結(jié)果是有爭議的。

      2.6十二指腸潰瘍促進(jìn)因子 DupA(Duodenal ulcer promoting gene,DupA)被稱為十二指腸潰瘍促進(jìn)因子,因常見于十二指腸潰瘍患者中而得名。DupA是近些年研究的熱門,因此,圍繞DupA的相關(guān)研究并不完善,研究結(jié)果不盡相同甚至相反。有研究表明[29],不同區(qū)域DupA陽性檢出率不同,且與臨床疾病無顯著相關(guān)性,該研究還發(fā)現(xiàn),DupA的存在與否與HP的其他毒力因子無關(guān)。同年Shiota等[30]表明,DupA與十二指腸潰瘍密切相關(guān),但與胃癌的關(guān)系尚不明確。近年來Souod等[27]通過研究DupA、OipA與胃部疾病的關(guān)系中指出,DupA可以作為預(yù)測十二指腸潰瘍的標(biāo)志物和胃癌的抑制因子,同時(shí)發(fā)現(xiàn)HP中的一些毒力因子并不單獨(dú)存在,而是與其他毒力因子聯(lián)合形成“協(xié)同活性”,此研究結(jié)果與Shiota等[30]完全相反。最近,在探索HP中毒力因子與胃部疾病的關(guān)聯(lián)性發(fā)現(xiàn),HP中的毒力因子之間存在關(guān)聯(lián)性(VacA、CagA、DupA、OipA),這種關(guān)聯(lián)性與胃部疾病聯(lián)系緊密,特別是胃炎[31]。以上種種結(jié)果不難看出,雖然圍繞DupA的相關(guān)研究日漸廣泛,但關(guān)于DupA與臨床疾病的關(guān)聯(lián)性尚無統(tǒng)一定論,且目前并沒有關(guān)于DupA作為候選抗原制成HP疫苗的相關(guān)報(bào)道。

      2.7脂多糖 脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)是重要的毒力因子,被認(rèn)為是引起黏膜炎癥反應(yīng)的一種強(qiáng)效內(nèi)毒素,介導(dǎo)多種細(xì)胞因子和趨化因子的釋放,從而誘導(dǎo)免疫反應(yīng)的發(fā)生[32]。LPS主要表達(dá)LewisX和LewisY抗原決定簇,HP患者產(chǎn)生Lewis抗原決定簇抗體并通過自身免疫反應(yīng)造成胃黏膜損傷和潰瘍創(chuàng)面形成[33]。此外LPS促進(jìn)Th1型免疫應(yīng)答反應(yīng),并在受試小鼠體內(nèi)檢測到細(xì)胞因子IFN-γ增加,這可能是消除HP感染的關(guān)鍵[34]。在對(duì)此種抗原的學(xué)習(xí)和查閱文獻(xiàn)中發(fā)現(xiàn),LPS的研究現(xiàn)狀處于探究其生物活性,評(píng)價(jià)免疫原性階段,且對(duì)其引起免疫應(yīng)答的類型處于研究探索中,因此,尚且沒有LPS作為抗原或與其他抗原聯(lián)合制備HP疫苗的相關(guān)報(bào)道。

      3 前景展望

      除上述幾種抗原外,中性粒細(xì)胞激活蛋白(Nap)[35,36]、熱休克蛋白(Hsp)[37,38]都有作為候選抗原的相關(guān)報(bào)道,在這里不再一一概述。就HP疫苗的研究現(xiàn)狀而言,HP疫苗仍處于實(shí)驗(yàn)階段,現(xiàn)階段的研究成果尚不能完全清除體內(nèi)感染和阻斷HP傳播,且保護(hù)率不高的問題在國內(nèi)外一直未有突破。目前為止,尚且沒有HP疫苗進(jìn)入臨床的相關(guān)報(bào)道,因此,現(xiàn)階段的治療方式仍以抗生素治療為主,但抗生素耐藥性(克拉霉素)成為應(yīng)用抗生素治療失敗的主要原因[39],基于目前理論研究成果,推薦使用益生菌[40,41]和中藥制劑作為輔助治療。

      HP疫苗的研究尚存在許多問題,但取得的成果不容忽視,Naz等[42]基于反向疫苗學(xué)方法預(yù)測HP疫苗的潛在候選抗原,并預(yù)測VacA、BabA、Hpa A等是首要候選抗原?,F(xiàn)如今,大部分的臨床研究已經(jīng)運(yùn)用重組尿素酶作為抗原?;蛟S研究不同抗原組合的多價(jià)疫苗、篩選高效抗原并增加抗原的表達(dá)量、探索HP表位疫苗中表位結(jié)合的新型方式是HP疫苗未來的發(fā)展方向。隨著生物學(xué)、信息科學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展和完善,HP疫苗的研制必將取得成功。

      參考文獻(xiàn):

      [1] Hanada K,Yamaoka Y.Genetic battle between Helicobacter pylori,and humans.The mechanism underlying homologous recombination in bacteria,which can infect human cells[J].Microbes Infect,2014,16(10):833-839.

      [2] Diaconu S,Predescu A,Moldoveanu A,etal.Helicobacter pylori infection:old and new[J].J Med Life,2017,10(2):112-117.

      [3] Jaruvongvanich V,Sanguankeo A,Jaruvongvanich S,etal.Association between Helicobacter pylori infection and multiple sclerosis:A systematic review and meta-analysis[J].Mult Scler Relat Dis,2016,7(5):92-97.

      [4] Wang B,Pan X,Wang H,etal.Immunological response of recombinant H.pylori multi-epitope vaccine with different vaccination strategies[J].Int J Clin Exp Pathol,2014,7(10):6559-6566.

      [5] 秦玉紅,劉昆梅,廖國玲,等.幽門螺旋桿菌重組尿素酶B亞基的純化及其免疫學(xué)性質(zhì)的研究[J].中國生物工程雜志,2014,34(12):23-29.

      Qin HY,Liu KM,Liao GL,etal.Purification of recombinant urease B-subunit from Helicobacter pylori and its immunological properties[J].China Biotechnol,2014,34(12): 23-29.

      [6] Zhang HX,Qiu YY,Zhao YH,etal.Immunogenicity of oral vaccination with Lactococcus lactis derived vaccine candidate antigen (UreB) of Helicobacter pylori fused with the human interleukin 2 as adjuvant[J].Mol Cell Probe,2014,28(1):25-30.

      [7] 林煥建,楊 勤,李 菁,等.過氧化氫酶和尿素酶B亞單位二價(jià)疫苗預(yù)防小鼠幽門螺桿菌感染[J].南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2008,28(3):436-437.

      Lin HJ,Yang Q ,Li Q ,etal.Prevention of Helicobacter pylori infection in mice by bivalent vaccine of catalase and urease B-subunit [J].J Southern Med Uni,2008,28(3): 436-437.

      [8] Zhou Z,Dong H,Huang Y,etal.Recombinant Bacillus subtilis spores expressing cholera toxin B subunit and Helicobacter pylori urease B confer protection against H.pylori in mice[J].J Med Microbiol,2017,66 (1):83-89.

      [9] Zhou Z,Gong S,Li XM,etal.Expression of Helicobacter pylori urease B on the surface of Bacillus subtilis spores[J].J Med Microbiol,2015,64(1):104-110.

      [10] Corthésy-Theulaz I,Porta N,Glauser M,etal.Oral immunization with Helicobacter pylori,urease B subunit as a treatment against Helicobacter,infection in mice [J].Gastroenterology,1995,109(1):115-121.

      [11] Junaid M,Linn AK,Javadi MB,etal.Vacuolating cytotoxin A (VacA)-A multi-talented pore-forming toxin from Helicobacter pylori[J].Toxicon,2016,118:27-35.

      [12] Chiozzi V,Mazzini G,Oldani A,etal.Relationship between Vac A toxin and ammonia in Helicobacter pylori-induced apoptosis in human gastric epithelial cells[J].J Physiol Pharmacol,2009,60(3):23-30.

      [13] Hasanzadeh L,Ghaznavirad E,Soufian S,etal.Expression and antigenic evaluation of VacA antigenic fragment of helicobacter pylori[J].Iran J Basic Med Sci,2013,16(7):835-840.

      [14] Markus S,Paolo R,Rino R,etal.Helicobacter pyloriCagA:from pathogenic mechanisms to its use as an anti-cancer vaccine[J].Front Immunol,2013,4(10):328-329.

      [15] Matsui K,Fine A,Zhu B,etal.Identification of two NF-kappa B sites in mouse CD95 ligand (Fas ligand) promoter:Functional analysis in T cell hybridoma[J].J Immunol,1998,161(7):3469-3473.

      [16] Liu KY,Shi Y,Luo P,etal.Therapeutic efficacy of oral immunization with attenuated Salmonella typhimurium,expressing Helicobacter pylori,CagA,VacA and UreB fusion proteins in mice model[J].Vaccine,2011,29(38):6679-6685.

      [17] Meza B,Ascencio F,Sierrabeltrán AP,etal.A novel design of a multi-antigenic,multistage and multi-epitope vaccine against Helicobacter pylori:An in silico approach[J].Infect Genet Evol,2017,49(4):309-317.

      [18] 郭 玲,章金勇,劉 東,等.幽門螺桿菌黏附素HpaA重組蛋白的表達(dá)、純化及晶體生長[J].免疫學(xué)雜志,2015,31(11):986-990.

      Guo L,Zhang JY,Liu D ,etal.Expression,purification and crystal growth of Helicobacter pylori adhesin HpaA recombinant protein[J].Immunol J , 2015,31(11): 986-990.

      [19] Flach CF,Svensson N,Blomquist M,etal.A truncated form of Hpa A is a promising antigen for use in a vaccine against Helicobacter pylori[J].Vaccine,2011,29(6):1235-1241.

      [20] Tobias J,Lebens M,Wai SN,etal.Surface expression of Helicobacter pylori Hpa A adhesion antigen on Vibrio cholerae,enhanced by co-expressed enterotoxigenic Escherichia coli fimbrial antigens[J].Microb Pathogenesis,2017,105:177-184.

      [21] Ghasemian SH,Faghri J,Moghim S,etal.Production of IFN-γ and IL-4 against intact catalase and constructed catalase epitopes of helicobacter pylori from T-cells[J].Jundishapur J Microb,2015,8(12):24697-24704.

      [22] Rashidi N,Moghim S,Fagheri J,etal.Catalase epitopes vaccine design for Helicobacter pylori:A bioinformatics approach[J].Afr J Biotechnol,2011,10(44):8895-8901.

      [23] Miyashita M,Joh T,Watanabe K,etal.Immune responses in mice to intranasal and intracutaneous administration of a DNA vaccine encoding Helicobacter pylori-catalase[J].Vaccine,2002,20(17):2336-2342.

      [24] Radcliff FJ,Hazell SL,Kolesnikow T,etal.Catalase,a novel antigen for Helicobacter pylori vaccination[J].Infect Immunity,1997,65(11):4668.

      [25] Bing Z,Li HL,Fan Q,etal.Serum Helicobacter pylori KatA and AhpC antibodies as novel biomarkers for gastric cancer[J].World J Gastroentero,2016,22(21):5060-5067.

      [26] Markovska R,Boyanova L,Yordanov D,etal.Helicobacter pylori oipA,genetic diversity and its associations with both disease and cagA,vacA,s,m,and ialleles among Bulgarian patients[J].Diangn Micr Infec Dis,2011,71(4):335-340.

      [27] Souod N,Sarshar M,Dabiri H,etal.The study of the oipA and dupA genes in Helicobacter pylori strains and their relationship with different gastroduodenal diseases[J].Gastroenterol Hepatol Bed Bench,2015,8(1):47-53.

      [28] Dossumbekova A,Prinz C,Mages J,etal.Helicobacter pylori HopH (OipA) and bacterial pathogenicity:genetic and functional genomic analysis of hoph gene polymorphisms[J].J Infect Dis,2006,194(10):1346-1355.

      [29] Hussein NR.The association of dupA and Helicobacter pylori-related gastroduodenal diseases[J].Eur J Clin Microbiol,2010,29(7):817-821.

      [30] Shiota S,Matsunari O,Watada M,etal.Systematic review and meta-analysis:the relationship between the Helicobacter pylori dupA gene and clinical outcomes[J].Gut Pathogens,2010,2(1):13-19.

      [31] Sallas ML,Melchiades JR,Zabaglia LM,etal.Prevalence of Helicobacter pylori vacA,cagA,dupA and oipA Genotypes in Patients with Gastric Disease[J].Adv Microbiol,2017,7(7):1-9.

      [32] Slomiany BL,Slomiany A.Role of LPS-elicited signaling in triggering gastric mucosal inflammatory responses to H.pylori:modulatory effect of ghrelin[J].Inflammpharmacology,2017,25(4):415-429.

      [33] Ramakrishna YG,Savithri K,Kist M,etal.Aegle marmelos fruit extract attenuates Helicobacter pylori Lipopolysaccharide induced oxidative stress in Sprague Dawley rats[J].BMC Complement Altern Med,2015,15(1):375-385.

      [34] Davoud E,Mohabati MA,Hatef SA,etal.Bioactivity and immunological evaluation of LPS from different serotypes of Helicobacter pylori[J].Iran J Microbiol,2013,5(2):142-146.

      [35] Shuai Z,Huang Y,Liang B,etal.Systemic and mucosal pre-administration of recombinant Helicobacter pylori neutrophil-activating protein prevents ovalbumin-induced allergic asthma in mice[J].Fems Microbiol Lett,2017,364(2):288-295.

      [36] Dong H,Huang Y,Yao S,etal.The recombinant fusion protein of cholera toxin B and neutrophil-activating protein expressed on Bacillus subtilis spore surface suppresses allergic inflammation in mice[J].Appl Microbiol Biot,2017,101(3):1-11.

      [37] Chionh YT,Arulmuruganar A,Venditti E,etal.Heat shock protein complex vaccination induces protection against Helicobacter pylori without exogenous adjuvant[J].Vaccine,2014,32(20):2350-2358.

      [38] 趙慧琳,季曉飛,張艷麗,等.分子伴侶幽門螺桿菌Hsp60與UreB的相互作用分析[J].中國病原生物學(xué)雜志,2016,11(11):977-981.

      Zhao HL,Ji XF,Zhang YL,etal.Analysis of interaction between Hsp60 and UreB of Helicobacter pylori[J].J Pathogen Biol,2016,11(11): 977-981.

      [39] Daryani NE,Taher M,Shirzad S.Helicobacter pylori infection:a review[J].Iran J Clin Infect Dis,2011,6(1):56-64.

      [40] Zhang R,Duan G,Shi Q,etal.Construction of a recombinant Lactococcus lactis strain expressing a fusion protein of Omp22 and Hpa A from Helicobacter pylori for oral vaccine development[J].Biotechnol Lett,2016,38(11):1-6.

      [41] Ayala G,Escobedo-Hinojosa WI,Cf CH,etal.Exploring alternative treatments for Helicobacter pylori infection[J].World J Gastroentero,2014,20(6):1450-1469.

      [42] Naz A,Awan FM,Obaid A,etal.Identification of putative vaccine candidates against Helicobacter pylori exploiting exoproteome and secretome:a reverse vaccinology based approach[J].Infect Genet Evol,2015,32(6):280-291.

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