施勇,龔甜,李健雄,肖芳,周珺,熊英
(江西省疾病預防控制中心,江西南昌330029)
三種實驗室檢測方法在瘧疾檢測中的應(yīng)用比較
施勇,龔甜,李健雄,肖芳,周珺,熊英
(江西省疾病預防控制中心,江西南昌330029)
目的探討三種實驗室檢測方法對瘧疾檢測的應(yīng)用價值。方法分別采用傳統(tǒng)鏡檢法、巢式聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)法及實時熒光(Real-Time)PCR法,對江西省2012年-2014年的61份瘧疾疑似病例血樣進行檢測。結(jié)果巢式PCR法和Real-Time PCR法的結(jié)果一致,與鏡檢結(jié)果有17份樣本不一致。結(jié)論巢式PCR法和Real-Time PCR法檢測瘧疾感染具高度敏感性和特異性,對瘧疾鑒別診斷和明確診斷具有重要價值。
瘧疾;巢式聚合酶鏈反應(yīng);鏡檢法
瘧疾是經(jīng)蚊媒傳播的重要熱帶病,也是嚴重危害人類身體健康和生命安全及社會經(jīng)濟發(fā)展的重要寄生蟲病[1],主要流行于熱帶和亞熱帶地區(qū)。在目前瘧疾防治和監(jiān)測工作中,鏡檢仍為發(fā)現(xiàn)瘧疾病例的主要手段[2],但傳統(tǒng)的鏡檢方法檢出率低并費時、費力,且鏡檢人員的專業(yè)素質(zhì)和經(jīng)驗會直接影響結(jié)果的判定,當原蟲密度較低時,鏡檢容易出現(xiàn)漏檢,對于國內(nèi)少見的卵形瘧和三日瘧,容易錯判。近年來國內(nèi)外將巢式PCR和Real-Time PCR技術(shù)應(yīng)用于瘧疾的快速檢測和分型[3],能準確判斷疑似病例是否感染或攜帶瘧原蟲,以便及時發(fā)現(xiàn)和采取必要的防控措施。
本研究采用姬氏染色鏡檢、巢氏PCR及實時熒光(Real-Time)PCR法3種方法對江西省2012年-2014年各地市疾控中心上送的61份瘧疾疑似病例血樣進行檢測,并對結(jié)果進行分析,比較其優(yōu)缺點。
1.1 瘧疾樣本江西省2012年-2014年各地市疾控中心上送的61份瘧疾疑似病例血樣。
1.2 儀器和試劑核酸提取試劑盒(QIAamp DNA Mini Kit)購自德國Qiagen公司;PCR Master Mix (LOT.0000031171)購自美國Promega公司;光學顯微鏡購自日本Olympus公司,循環(huán)擴增儀購自美國Bio-rad公司,凝膠成像系統(tǒng)購自法國VILBER LOURMAT公司,熒光PCR儀為ABI7500。
1.3 顯微鏡檢查以姬氏染色法染色厚薄血片,參照中華人民共和國衛(wèi)生行業(yè)標準-瘧疾診斷標準(WS259-2015)附錄B《病原學檢查》規(guī)范要求,進行厚薄血膜制作與吉氏染色,顯微鏡油鏡下檢查。
1.4 巢氏PCR檢測用QIAamp DNA Mini Kit核酸提取試劑盒提取濾紙血中的瘧原蟲基因組DNA,按說明書操作,獲得100μl DNA,-70℃保存。對核酸進行巢氏PCR擴增,引物由上海生工生物工程有限公司合成,序列見表1。反應(yīng)體系(25μl):2×PCR Master Mix 12.5μl,上、下游引物(10μmol/ μl)各1μl,模板DNA 5μl(第1輪),用ddH2O補至25μl。反應(yīng)條件:94℃3min;94℃30s,58℃30s,72℃1min 40s,共35個循環(huán);72℃10min。取第一輪PCR產(chǎn)物1μl為模板DNA進行第二輪PCR,反應(yīng)體系和反應(yīng)條件同上。以2%瓊脂糖凝膠電泳鑒定第二輪PCR產(chǎn)物,用凝膠成像系統(tǒng)觀察結(jié)果。
1.5 實時熒光(Real-Time)PCR檢測用上海之江的商品化試劑盒按照說明書進行檢測,試劑盒分別為瘧原蟲核酸測定試劑盒(貨號ED-0066-02),惡性瘧核酸測定試劑盒(貨號ED-0214-02),卵形瘧核酸測定試劑盒(貨號ED-0215-02),三日瘧核酸測定試劑盒(貨號ED-0216-02),間日瘧核酸測定試劑盒(貨號ED-0217-02),卵形瘧原蟲Wallikeri亞種核酸測定試劑盒(貨號ED-0425-02)。
比較、分析61份樣品的檢測結(jié)果,61份樣品為2012年-2014年各地市疾控中心采集并鏡檢陽性樣本,上送至省疾控中心,均為輸入性瘧疾病例,其鏡檢結(jié)果為44份惡性瘧,13份間日瘧,4份瘧疾未分型。而巢式PCR法和Real-Time PCR法的結(jié)果一致,其結(jié)果為44份惡性瘧,6份間日瘧,1份卵形瘧,1份三日瘧,2份惡性瘧和三日瘧混合感染,其余7份陰性。PCR檢測結(jié)果與鏡檢結(jié)果有44份一致,其中惡性瘧39份,間日瘧5份;有17份樣本與鏡檢結(jié)果不一致(表2)。
表1 巢氏PCR檢測瘧原蟲種類的引物及其擴增產(chǎn)物長度
表2 61份樣本鏡檢法與巢式PCR法和Real-Time PCR法結(jié)果比較
瘧疾診斷標準(WS259-2015)中規(guī)定的三種實驗室檢查中,以形態(tài)學為基礎(chǔ)的血涂片顯微鏡檢查,是多數(shù)基層醫(yī)療單位主要或唯一的診斷手段,其敏感度可達到血樣10~20個原蟲/μl[4]。該方法簡便、經(jīng)濟,適用于基層應(yīng)用;缺點是結(jié)果判讀受檢驗人員鏡檢技術(shù)、制片染色技術(shù)、顯微鏡質(zhì)量和視力疲勞程度等因素影響,導致瘧疾病例的確診與鑒別診斷困難[5]。特別在瘧原蟲混合感染或藥物治療后,瘧原蟲形態(tài)遭到破壞,給原蟲染色鏡檢增加非常大的難度[6],而以分子形式存在血液中的核酸不受破壞,仍可被檢出。本研究中,經(jīng)過巢式PCR法和Real-Time PCR法的復核檢測,鏡檢有5份惡性瘧和8份間日瘧發(fā)生了誤診,對瘧疾病例的治療帶來了一定的影響。
PCR檢測是通過體外擴增,使得特異性靶DNA序列拷貝數(shù)在數(shù)小時內(nèi)成百萬倍的增加,大大提高了檢測的敏感性。檢測間日瘧和惡性瘧的敏感度血樣分別為0.1個原蟲/μl[7]和1.5個原蟲/ μl[8],顯著高于其他檢查方法。而且PCR檢測瘧疾具有瘧原蟲種、株的鑒別能力,并能方便地檢測出鏡檢漏診的混合感染。近年來,許多學者用PCR技術(shù)檢測瘧原蟲的實驗室研究中,均顯示了PCR在瘧疾診斷中比鏡檢檢測方法更具敏感性及特異性[9-11]。本研究中,巢式PCR法和Real-Time PCR法檢出了鏡檢漏檢的2例混合感染的病例,并對鏡檢未能分型的4份瘧疾病例進行了分型,其中1份惡性瘧,1份三日瘧,2份陰性,由于不同型別的瘧疾治療藥物有所不同,瘧疾病例正確的分型對于治療來說意義重大。
由于人群對瘧疾抵抗力的增強,加上抗瘧藥的濫用,病人治療不規(guī)范等,使傳染源多為低密度帶蟲者。常規(guī)鏡檢法不易檢出,常出現(xiàn)漏診,使傳染源不能及時發(fā)現(xiàn)和徹底根除。因此,PCR作為高度敏感、高度特異的瘧疾診斷技術(shù),更能適應(yīng)瘧疾監(jiān)測、診斷和鑒別診斷的需要[12],并為下一步的治療提供最正確的科學依據(jù)。隨著PCR技術(shù)的日趨成熟和檢測成本的降低,在瘧疾防治、監(jiān)測中,將具有廣闊的應(yīng)用價值和前景。
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A
1674-1129(2017)04-0545-02
10.3969/j.issn.1674-1129.2017.04.032
2016-09-19;
2017-06-12)