吳俊杰+汪宏錦+楊帥+劉楊+徐曉玉
[摘要]該研究通過觀察冰片是否具有促進梓醇、葛根素透過局灶性腦缺血模型大鼠血腦屏障的作用,及其是否與激活β2腎上腺素受體-eNOS-NO途徑有關,從醫(yī)學生物學作用角度闡釋冰片“通竅引經(jīng)”的傳統(tǒng)功效及其機制。該研究采用大鼠大腦中動脈阻塞局灶性腦缺血模型,5 d后神經(jīng)功能障礙評分達5分者為造模成功。將模型成功大鼠隨機分為7組,用藥前經(jīng)統(tǒng)計學檢驗各組間無顯著性差異后,灌服給予相應藥物[梓醇45 mg·kg-1、 葛根素200 mg·kg-1、冰片200 mg·kg-1、布他沙明(Butoxamine,BTX)1.5 mg·kg-1]:模型組(M組,溶劑)、梓葛組(ZG組)、梓葛冰組(ZGB組)、梓冰組(ZB組)、葛冰組(GB組)、β2受體阻斷劑+梓葛組(BTX+ZG組)、β2受體阻斷劑+梓葛冰組(BTX+ZGB組),另設假手術組(S組,溶劑),每組10只。各組給藥10 min后取材,采用UPLC-MS測定腦脊液中梓醇和葛根素含量,Western blot法測定腦組織中eNOS含量、β2受體表達,Griess法檢測腦組織中NO含量。結果顯示,與假手術組相比,造模大鼠神經(jīng)功能得分均值均在5分以上,具有顯著差異(P<0.05),顯示造模成功。除假手術組外,經(jīng)單因素方差分析,給藥前各組之間的神經(jīng)功能評分均無顯著性差異。給藥后與模型組相比,ZG組梓醇質量分數(shù)為26.673 μg·L-1,葛根素含量在檢測限以下,腦組織中eNOS表達和NO含量、β2受體表達沒有顯著差異;與ZG組相比,ZGB組、ZB組、GB組腦脊液中梓醇質量分數(shù)增加至40~43 μg·L-1、葛根素質量分數(shù)增加至72~75 μg·L-1,腦組織中eNOS表達和NO含量、β2受體表達均有顯著升高(P<0.05),顯示冰片有促進作用;與ZG組相比,BTX+ZG組大鼠腦脊液中梓醇質量分數(shù)為21.401 μg·L-1,葛根素檢測不出,2組無顯著差異,顯示BTX無抑制作用;與ZGB組相比,BTX+ZGB組腦脊液中梓醇質量分數(shù)32.826 μg·L-1、葛根素質量分數(shù)47.820 μg·L-1,腦組織中eNOS表達和NO含量均有顯著下降(P<0.05),顯示BTX有抑制作用。該研究說明冰片能夠顯著促進梓醇、葛根素透過局灶性腦缺血大鼠血腦屏障,其作用可被β2腎上腺素受體阻斷劑布他沙明所阻斷,其機制可能與上調β2腎上腺素受體從而促進eNOS表達,進而使NO含量升高有關。
[關鍵詞]冰片; 梓醇; 葛根素; 血腦屏障通透性;β2受體; eNOS; NO
[Abstract]Previous studies showed that borneol could promote some drugs crossing through the blood-brain-barrier (BBB) at certain conditions. However, the mechanism has not been clarified yet. This study aimed to investigate the effect of bornrol on promoting catalpol and puerarin through BBB and explore the relevant mechanism. The focal cerebral ischemic rats were divided into 7 groups randomly and then were administered corresponding drugs: model group (M, solvent), catalpol-puerarin group (ZG, catalpol 45 mg·kg-1+puerarin 200 mg·kg-1), catalpol-puerarin-bornrol group(ZGB, catalpol 45 mg·kg-1+puerarin 200 mg·kg-1 +bornrol 200 mg·kg-1), catalpol-bornrol group(ZB, catalpol 45 mg·kg-1 +bornrol 200 mg·kg-1), puerarin-bornrol group(GB, puerarin 200 mg·kg-1 +bornrol 200 mg·kg-1), butoxamine-ZG group(BTX+ZG, butoxamine 1.5 mg·kg-1+ catalpol 45 mg·kg-1+puerarin 200 mg·kg-1), and butoxamine-ZGB group(BTX+ZGB, butoxamine 1.5 mg·kg-1+ catalpol 45 mg·kg-1+puerarin 200 mg·kg-1 +bornrol 200 mg·kg-1). Another 10 sham-operated rats were set as control (S). Ten minutes after the administration, the cerebrospinal fluid was taken to test the content of catalpol and puerarin, and the brain tissue was taken to test the expression ofβ2-adrenergic receptor, eNOS, and NO. Compared with the M group, the ZG group showed content of catalpol is 26.673 μg·L-1 and the content of puerarin is below the detection limit;the expression levels ofβ2-adrenergic receptor, eNOS and the contents of NO in brain tissue are no significant difference. Compared with the ZG group, the ZGB, ZB and GB groups showed significantly increased content of catalpol andpuerarin, as well as the expression ofβ2-adrenergic receptor, eNOS and NO in the brain tissue (P<0.05). The content of catalpol in BTX+ZG group changed non-significantly. Compared with the ZGB group, the BTX+ZGB group presented significantly decreased content of catalpol and puerarin and reduced expression of eNOS and NO in the brain tissue (P<0.05).The results demonstrated that borneol could dramatically promote catalpol and puerarin crossing through BBB in the focal cerebral ischemic rats. Moreover, the effect may be related to the up-regulation ofβ2-adrenergic receptor and the increasing expression of eNOS and NO.
[Key words]bornrol; catalpol; puerarin; blood-brain barrier;β2-adrenergic receptor; eNOS; NO
doi:10.4268/cjcmm20162117
冰片(1,7,7-三甲基-二環(huán)庚-2-醇)系龍腦香科植物龍腦香Dryobalanops aromatica Caertn F.樹脂的加工品或菊科植物艾納香Blumea balsamiferaDC.葉提取的結晶,或以樟腦、松節(jié)油等為原料,經(jīng)化學方法合成的精制品片[1],性味辛、苦, 微寒,歸心、脾、肺經(jīng),具有開竅醒神、清熱止痛的功效[2]?,F(xiàn)代藥理學研究發(fā)現(xiàn)冰片具有抗炎[3]、抗菌[4]、鎮(zhèn)痛[5]作用,并能增加血腦屏障(blood-brain barrier,BBB)的通透性,促進砷劑[6]、慶大霉素[7]等藥物在腦中的轉運從而提高藥物生物利用度等,但對其機制的研究不多。
本實驗以前期研究顯示抗腦缺血有效[8-11]的梓醇、葛根素為載體,觀察冰片是否能提高腦缺血模型大鼠腦脊液中梓醇、葛根素的含量,從而從醫(yī)學生物學作用角度驗證冰片“通竅引經(jīng)”及“佐使有功”的傳統(tǒng)功效記載。同時,檢測腦組織中β2受體,eNOS,NO水平,并觀察β2受體阻斷劑對冰片的作用是否有阻斷效應,以探求冰片“通竅引經(jīng)”的生物學作用機制。
1 材料
賽龍100A高頻電刀(北京市亞可康達醫(yī)療科技有限公司);130型雙極電凝鑷(武漢麥朗醫(yī)療科技有限公司);68001立體定位儀(深圳市瑞沃德生命科技有限公司);SHH-150L生化培養(yǎng)箱(重慶永生試驗儀器廠);5417R臺式高速離心機(德國Eppendorf生命科學有限公司);ELX800酶標儀(美國BioTek儀器有限公司);化學發(fā)光成像分析系統(tǒng)(上海天能科技有限公司)。
SPF級雄性SD大鼠120只,體重(200±25) g,購于重慶市中藥研究院實驗動物研究所,動物許可證號SCXD(渝)2012-0006,實驗動物質量合格證號0003223,飼養(yǎng)于西南大學藥學院SPF級實驗動物中心,使用許可證號SYXK(渝)2014-0002。適應性喂養(yǎng)1周后進入實驗,對大鼠進行篩選,去掉體重過輕、過重、行運遲緩及反應遲鈍的動物。實驗過程中善待實驗動物,嚴格遵守實驗動物科學與管理的有關規(guī)定。
冰片(重慶市和平藥房,經(jīng)西南大學齊紅藝教授鑒定為龍腦香科植物龍腦香D.aromatica的精制品片,純度99.4%);梓醇(安徽康輝藥業(yè),純度99.8%);葛根素(四川玉鑫藥業(yè),純度100%);水合氯醛(國藥集團化學試劑有限公司);β2-AR抗體(0.2 mL/支,AD123114),一氧化氮合成酶-3(內皮型)抗體(0.2 mL/支,L8081801)均購于北京博奧森生物技術有限公司;Griess reagent(10 g/瓶,SLBC6343V),β2受體阻斷劑布他沙明鹽酸鹽(butoxamine hydrochloride)(50 mg/瓶,MKBR6952V)均購于Sigma-Aldrich。
2 方法
2.1 主要藥物溶液的配制
以47.5%乙醇溶液為溶劑,分別將冰片、梓醇、葛根素配制成藥物溶液,其中冰片200 mg·kg-1、葛根素200 mg·kg-1、梓醇45 mg·kg-1;布他沙明(Butoxamine,BTX)配成生理鹽水溶液(1.5 mg·kg-1)備用。
2.2 動物造模
取SD大鼠120只,參考文獻資料采用改良Tamura法制備大鼠局灶性腦缺血模型[12-13]。大鼠3.5%水合氯醛麻醉后,俯臥位固定于腦立體定位儀上。剪毛消毒,沿右側頂顳嵴切開大鼠頭皮,切口約2 cm,鈍性分離顳肌,充分暴露顳窩。用顱骨鉆在鱗狀骨前部打孔至有凹陷即可,使用小手術鉗向前下方擴大骨窗,注意不要破壞硬腦膜。在大腦皮層表面,約在左眼和右耳的連線上,可以看到向上行走的大腦中動脈。使用玻璃分針輕輕上抬大腦,使大腦中動脈暴露更加充分。用雙極電凝鑷對大腦中動脈進行凝斷(電凝強度為2,凝閉時間為2~3 s)。完成后傷口用青霉素處理,分別縫合肌肉和皮膚。
2.3 神經(jīng)功能評分及分組
術后5 d后采用改良神經(jīng)功能缺損評分 (modified neurological severity scores,mNSS)對造模大鼠進行功能評分[14-15]。mNSS評分包括運動、感覺、反射和平衡木4項測試,神經(jīng)功能記分在0~18分 (0分為正常,最大神經(jīng)功能缺損為18分)。評分在5分及5分以上分數(shù)的造模大鼠判定為造模成功。行為學檢查方法:由一個對試驗實施過程不了解的觀察者對大鼠進行行為學評測,評測續(xù)貫進行。如果大鼠在一次評測中出現(xiàn)恰當?shù)男袨?,而以后卻未出現(xiàn),按前者記分。將造模成功的大鼠隨機分為7組,模型組(M組)、梓葛組(ZG組)、梓葛冰組(ZGB組)、梓冰組(ZB組)、葛冰組(GB組)、β2受體阻斷劑+梓葛組(BTX+ZG組)、β2受體阻斷劑+梓葛冰組(BTX+ZGB組),每組10只大鼠,經(jīng)用藥前統(tǒng)計學檢驗各組間評分無顯著性差異后給藥。以僅暴露大腦中動脈,但不凝斷的大鼠10只作為假手術組(S組)。
2.4 動物給藥及取材
除假手術組及模型組外,其余各組模型大鼠分別灌胃給予相應藥物及劑量,灌服藥物體積為0.01 mL·g-1,β2受體阻斷劑布他沙明腹腔注射30 min后再給藥,劑量為1.5 mg·kg-1[16-17]。隨后用3.5%水合氯醛麻醉大鼠,給藥10 min后采集腦脊液(前期預實驗結果表明,大鼠灌胃后10 min冰片開始出現(xiàn)促透作用):用濕紗布擦試大鼠頸背部皮膚,剪去背毛暴露皮膚。兩耳連線剪一橫切口(1.5 cm左右),在其中點向尾側沿皮下剪開2 cm,將皮分離兩側,擴大視野。緊貼大鼠頭骨依次逐層剪切各肌層,并斷端依次拉向尾側擴大視野。接近頸后黃韌帶時,小心地分離附蓋的肌肉,暴露寰枕膜。用微量進樣器水平刺入蛛網(wǎng)膜下腔,固定針體,緩慢抽取腦脊液放置在離心管中,-80 ℃保存。斷頭取大鼠缺血側皮層腦組織,按每約100 mg組織加入700 μL裂解液于冰上研磨,于低溫高速離心機中12 000 r·min-1離心30 min,取上清液,-20 ℃保存。
2.5 UPLC-MS/MS檢測梓醇、葛根素含量[18-19]
2.5.1 色譜條件 I-Class色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.7 μm);流動相10 mmol·L-1甲酸胺水溶液-乙腈,梯度洗脫,洗脫條件見表1。
2.5.2 質譜條件 毛細管電壓2.7 kV,脫溶劑氣流速700 L·h-1,錐氣流速50 L·h-1, ESI正離子模式。質譜條件見表2。
2.6 Western blot法測定缺血側皮層腦組織中β2受體、eNOS含量
采用BCA法測定樣品蛋白含量,計算得到每孔總蛋白上樣量為50 μg。樣品蛋白加入Loading Buffer后渦旋混勻,用PCR儀進行蛋白處理(95 ℃,5 min);再配制5%濃積膠和10%分離膠,經(jīng)上樣、電泳、轉膜、切膜后條帶用TBST配制的5% BSA 4 ℃封閉過夜,繼而進行一抗孵育[37 ℃,90 min;兔抗eNOS(1∶300)、兔抗β2-AR(1∶300)];TBST清洗條帶后二抗孵育[室溫、90 min;小鼠抗GAPDH(1∶5 000)];最后得到的蛋白表達條帶用TBST洗后采用化學發(fā)光成像分析系統(tǒng)顯影并進行圖像分析。
2.7 Griess法檢測腦組織NO表達
按試劑盒說明操作,檢測NO表達。取一塊96孔板,依次加入S組、M組、ZG組、ZGB組、ZB組、GB模型組、BTX+ZG組、BTX+ZGB組樣品液100 μL,各孔再分別加入Griess reagent 100 μL,室溫反應15 min后用酶標儀檢測吸光度,檢測波長為490 nm。以吸光度大小衡量NO表達。
2.8 統(tǒng)計處理方法
試驗數(shù)據(jù)用SPSS 17.0軟件進行分析,GraphPad Prism 5.0作圖,統(tǒng)計結果以±s表示。
3 結果
3.1 模型成功判定結果及分組差異性檢驗
造模后大鼠精神萎靡,飲水、攝食狀況差,部分大鼠在造模后死亡。進行局灶性腦缺血造模的大鼠共120只,術中及術后死亡共16只,術后蘇醒進入存活率觀察的大鼠共104只。造模5 d后,除假手術組外,各組造模大鼠神經(jīng)功能評分在5分以上者76只,造模成功率為63.3%。去除造模后飲水、攝食狀況差所致的體重過輕、健康狀況過差的大鼠6只,按照隨機表將70只造模成功的大鼠分成7組,每組10只,各組大鼠神經(jīng)功能得分均值均在5分以上,與假手術組對照具有顯著差異(P<0.05),顯示造模成功。除假手術組外,經(jīng)單因素方差分析,給藥前各組的神經(jīng)功能評分均無顯著性差異,見表3。
3.2 冰片顯著升高局灶性腦缺血模型大鼠腦脊液中梓醇、葛根素含量
給藥10 min后,ZG組大鼠腦脊液中梓醇質量分數(shù)為(26.673±0.936) μg·L-1、葛根素含量在檢測限以下,無法檢出;與ZG組相比,在合用冰片后,ZGB組腦脊液中梓醇質量分數(shù)為(43.087±7.637) μg·L-1,葛根素質量分數(shù)為(75.554±3.555) μg·L-1;ZB組腦脊液中梓醇質量分數(shù)為(40.652±1.900) μg·L-1;GB組腦脊液中葛根素質量分數(shù)為(72.049±2.074) μg·L-1,ZGB組、ZB組、GB組腦脊液中梓醇或葛根素含量都顯著增加(P<0.05),顯示冰片能顯著促進梓醇、葛根素透過局灶性腦缺血大鼠血腦屏障,見表4。
3.3β2受體阻斷劑顯著抑制冰片對梓醇、葛根素的促透作用
在給藥前30 min用布他沙明預處理之后,與ZG組相比,BTX+ZG組腦脊液中梓醇和葛根素含量無顯著變化;與ZGB組相比,BTX+ZGB組腦脊液中梓醇和葛根素質量分數(shù)分別為(32.826±1.813),(47.820±2.574)μg·L-1,均顯著降低(P<0.05),說明阻斷β2腎上腺素受體能顯著降低冰片對梓醇、葛根素的促透作用,見表4。
3.4 冰片配伍梓醇、葛根素后顯著促進局灶性腦缺血模型大鼠腦內eNOS表達與NO含量升高
與假手術組相比,模型組大鼠eNOS表達量無顯著變化,NO含量顯著提高(P<0.05);與模型組相比,ZG組eNOS表達和NO含量無顯著變化;而與ZG組相比,ZGB組、ZB組和GB組eNOS表達和NO含量都顯著升高(P<0.05),說明冰片配伍梓醇、葛根素后能顯著促進腦內eNOS與NO的水平,見圖1,2。
3.5 β2受體阻斷劑顯著抑制冰片配伍梓醇、葛根素后上調eNOS表達和NO含量作用
與ZG組相比,BTX+ZG組eNOS表達和NO含量均沒有顯著變化,說明在沒有合用冰片條件下β2受體阻斷劑布他沙明對eNOS表達和NO含量沒有影響;但是與ZGB組相比,給藥前30 min用β2受體阻斷劑布他沙明預處理之后,BTX+ZGB組的eNOS表達量顯著下降(P<0.01)、NO含量顯著降低(P<0.05),說明β2受體阻斷劑能抑制冰片對eNOS表達和NO含量的促進作用,見圖1,2。
3.6 冰片配伍梓醇、葛根素后顯著上調局灶性腦缺血模型大鼠腦內β2受體表達
與假手術組相比,模型組β2受體表達無顯著變化;與模型組相比,ZG組β2受體表達無顯著變化;與ZG組相比,ZGB組β2受體表達量極顯著上升(P<0.01),同時ZB組、GB組β2受體表達量也顯著上升(P<0.05),說明冰片配伍梓醇、葛根素后能顯著上調局灶性腦缺血模型大鼠腦內β2受體表達,見圖3。
4 討論
4.1 冰片“通竅引經(jīng)”功效的生物學作用驗證
冰片引藥上行的作用自古就有記載?!侗静菥V目》稱其能“通諸竅、散郁火”, 而《本草衍義》總結出的其作用特點“獨行則勢弱, 佐使則有功”。后世冰片多作為中醫(yī)方劑配伍之佐使藥, 以引經(jīng)直達病所[20]。曾有研究表明,冰片內服后可經(jīng)胃腸道迅速吸收,5 min后即可通過血腦屏障進入腦組織,說明能夠快速打開血腦屏障[21-22]。本實驗通過配伍研究發(fā)現(xiàn),在給藥10 min后,配伍了冰片的給藥組比單純使用梓醇或葛根素的組別腦脊液中梓醇或葛根素的含量均顯著提高,說明冰片能夠顯著促進梓醇和葛根素透過血腦屏障。這一實驗結果從生物學作用的角度,印證了冰片“通竅引經(jīng)”及“佐使有功”的傳統(tǒng)功效記載。
4.2 eNOS來源的NO具有血腦屏障保護作用
NO是血腦屏障通透性的重要調節(jié)分子,由nNOS,eNOS,iNOS 3種一氧化氮合成酶催化合成。在腦缺血的發(fā)展過程中,不同細胞中不同類型的酶催化合成的NO及其量的多少、氧化或還原狀態(tài)不同則會產(chǎn)生不同的生物學作用。腦缺血發(fā)生后,nNOS產(chǎn)生的NO介導早期谷氨酸興奮毒性并導致缺血初期的神經(jīng)損傷[23-25]。亞急性期之后,iNOS在有充足底物和協(xié)同因子的條件下可持續(xù)由神經(jīng)元、星形膠質細胞、內皮細胞等組織細胞大量表達[26-27],并由其主要介導病理性損傷過程,產(chǎn)生過量NO,導致遲發(fā)性神經(jīng)損傷和促使微血管通透性增加誘發(fā)腦水腫,通過級聯(lián)反應促進半暗帶區(qū)進展為梗塞灶[28-32]。有研究使用同源重組技術發(fā)現(xiàn),nNOS及iNOS基因敲除小鼠在腦缺血后的梗死灶減小,證實nNOS和iNOS在腦缺血后的表達具有毒性作用[33-34],使用nNOS和iNOS阻斷劑可以分別減少腦缺血早期或晚期所誘導的神經(jīng)毒性和組織損傷[23-25,35-37];而eNOS基因缺陷小鼠在腦缺血后的梗死灶較野生型大, 提示eNOS源性NO在腦缺血中具有保護性作用[38]。但eNOS主要通過擴張血管、抑制血小板聚集、減少白細胞黏附增強側支循環(huán)而改善缺血后腦血流的神經(jīng)保護作用很快就會被iNOS介導的毒性作用所取代[38-39]。所以抑制iNOS的表達或促進eNOS的表達是腦缺血的一種良好治療策略。
4.3 冰片通過升高eNOS表達增加NO的含量
本研究結果顯示,模型組大鼠腦組織中NO含量相比假手術組顯著升高,可能與病理條件下iNOS表達上調從而生成NO增多有關;與梓醇+葛根素組相比,梓醇+葛根素+冰片組eNOS表達和NO含量進一步上升,提示冰片可進一步促進eNOS的表達,從而促使eNOS源性的NO增多,對血腦屏障的開放增強。并且有研究顯示,冰片能夠抑制iNOS的表達及其活性,減少iNOS源性的NO過度產(chǎn)生[40-42];將iNOS源性NO導致血腦屏障損傷性病理性開放轉變?yōu)閑NOS源性的NO對血腦屏障可逆性生理性的開放。冰片的這種血腦屏障促透作用與病理性血腦屏障擴張不同,不會損傷或加重血腦屏障損傷,具有顯著的腦和血腦屏障保護作用[40,42-44]。
4.4 冰片通過上調β2腎上腺素受體升高eNOS表達
曾有研究顯示,通過介導β2受體能促進eNOS表達[45-48],并使其磷酸化水平增強[49],且這種作用能夠被β2受體阻斷劑所抑制[50]。這引起了作者思考:冰片能否通過介導β2腎上腺素受體上調eNOS表達、增加NO含量進而促進血腦屏障開放。本研究結果首次證實,冰片能顯著上調局灶性腦缺血模型大鼠腦內β2受體表達;在使用β2受體阻斷劑布他沙明預處理后,eNOS表達和NO含量比未予阻斷組顯著減少,腦脊液中梓醇和葛根素含量也顯著降低,說明通過阻斷β2受體能顯著抑制冰片對eNOS表達和NO含量的上調作用,進而抑制冰片對血腦屏障的開放作用。這提示冰片可能通過上調β2腎上腺素受體進而上調eNOS表達和增加NO含量,促進血腦屏障的開放。這一實驗結果為冰片“通竅引經(jīng)”的傳統(tǒng)功效提供了生物學作用信號通路的依據(jù)。但是冰片對β2腎上腺素受體的調控是如何具體實現(xiàn)的,有待進一步深入研究。
[參考文獻]
[1]劉慶華,劉彥辰.實用植物本草[M].天津:天津科學技術出版社,1998:256.
[2]中國藥典.一部[S]. 2015:146.
[3]蔡瑞宏,姚宏,張亞鋒,等. 蘆薈冰片燒傷膏的生肌、鎮(zhèn)痛及抗炎作用[J]. 中國醫(yī)院藥學雜志,2007,27(2):170.
[4]黃曉敏,廖玲軍,曾松榮,等. 梅花冰片3種劑型體外抗菌活性研究[J]. 江西中醫(yī)藥大學學報, 2005,17(1):63.
[5]孫曉萍,歐立娟,宓穗卿,等. 冰片抗炎鎮(zhèn)痛作用的實驗研究[J]. 中藥新藥與臨床藥理, 2007,18(5):353.
[6]肖玉強,張良玉,唐海濤,等. 冰片促進砷劑透過血腦屏障實驗研究[J].中華神經(jīng)外科疾病研究雜志, 2007,6(3):244.
[7]劉啟德,梁美蓉,陳芝喜,等.冰片對慶大霉素透血腦屏障的影響[J]. 廣州中醫(yī)學院學報,1994,11(1):37.
[8]Liu Y, Xue Q, Li X, et al. Amelioration of stroke-induced neurological deficiency by lyophilized powder of catapol and puerarin[J]. Int J Biol Sci,2014,10(4):448.
[9]楊盛,張飛燕,何然,等. 梓葛凍干粉針抗血栓作用實驗研究[J]. 中國藥理學通報, 2016, 32(5):737.
[10]尚遠宏,汪宏錦,田金鳳,等. 梓葛凍干粉針對大鼠急性腦微循環(huán)障礙的改善作用[J]. 中國中藥雜志,2014,39(4):733.
[11]薛強,肖亞平,陳玉寶,等. 梓葛凍干粉針抗腦神經(jīng)血管單元炎癥及氧化損傷[J]. 中國藥理學通報,2016,32(3):442.
[12]劉海朋,胡永波,張小東,等. 電凝法制作大鼠腦卒中模型的改良研究[J]. 第三軍醫(yī)大學學報,2011,33(17):1798.
[13]Tamura A,Graham D I,Mcculloch J,et al. Focal cerebral ischaemia in the rat: 1.Description of technique and early neuropathological consequences following middle cerebral artery occlusion[J]. J Cereb Blood Flow Metab,1981, 1(1):53.
[14]Chen J, Li Y, Wang L, et al. Therapeutic benefit of intravenous administration of bone marrow stromal cells after cerebral ischemia in rats[J]. Stroke, 2001, 32(4):1005.
[15]Borlongan C V, Randall T S, Cahill D W, et al. Asymmetrical motor behavior in rats with unilateral striatal excitotoxic lesions as revealed by the elevated body swing test[J].Brain Res, 1995,676(1):231.
[16]芮云云.去甲腎上腺素能β2受體參與慢性異源性應激誘導的內臟痛覺過敏[D].蘇州:蘇州大學, 2014.
[17]Pei Y P, Bai X G, Dong H, et al.β2-adrenergic receptor antagonist butoxamine partly abolishes the protection of 100% oxygen treatment against zymosan-induced generalized inflammation in mice[J].Shock,2011, 36(3):272.
[18]王琴. 梓葛凍干粉針的藥代動力學及改善血腦屏障通透性的機制研究[D]. 重慶:西南大學, 2012.
[19]王琴, 邢茂, 唐勤,等. 梓葛凍干粉針中葛根素在正常大鼠和腦缺血大鼠的藥代動力學比較研究[J].中國藥學雜志, 2014, 49(7):583.
[20]魏楚蓉. 冰片的藥理作用及其機制研究進展[J]. 國際病理科學與臨床雜志,2010, 30(5):447.
[21]梁美蓉, 劉啟德, 黃天來,等. 冰片在大鼠血清和腦組織中的藥代動力學特征[J]. 中藥新藥與臨床藥理, 1993,4(4):38.
[22]呂旭瀟, 孫明江, 孫鳳志. 冰片促進藥物透過血腦屏障的研究進展[J]. 中國中藥雜志, 2012, 37(7):878.
[23]Izumi Y, Benz A M, Katsuki H, et al. Endogenous monocarboxylates sustain hippocampal synaptic function and morphological integrity during energy deprivation[J]. J Neurosci, 1997,17(24): 9448.
[24]Shibata M, Araki N, Hamada J, et al. Brain nitrite production during global ischemia and reperfusion: an in vivo microdialysis study[J]. Brain Res, 1996,734(1): 86.
[25]Iadecola C. Bright and dark sides of nitric oxide in ischemic brain injury[J]. Trends Neurosci, 1997, 20(3):132.
[26]Nathan C. Inducible nitric oxide synthase: what difference does it make[J]. J Clin Invest, 1997,100(10): 2417.
[27]O′Neill M J, Murray T K, Mccarty D R, et al. ARL 17477, a selective nitric oxide synthase inhibitor, with neuroprotective effects in animal models of global and focal cerebral ischaemia[J]. Brain Res, 2000,871(2):234.
[28]Sanovich E, Bartus R T, Friden P M, et al. Pathway across blood-brain barrier opened by the bradykinin agonist, RMP-7[J]. Brain Res, 1995, 705(1):125.
[29]劉輝. 一氧化氮, 一氧化氮合酶與腦缺血損傷[J]. 國外醫(yī)學·生理病理科學與臨床分冊, 1999,19(2): 121.
[30]Bonfoco E, Krainc D, Ankarcrona M, et al. Apoptosis and necrosis: two distinct events induced, respectively, by mild and intense insults withN-methyl-D-aspartate or nitric oxide/superoxide in cortical cell cultures[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1995, 92(16): 7162.
[31]Kawase M, Kinouchi H, Kato I, et al. Inducible nitric oxide synthase following hypoxia in rat cultured glial cells[J]. Brain Res, 1996, 738(2): 319.
[32]Montague P R, Gancayco C D, Winn M J, et al. Role of NO production in NMDA receptor-mediated neurotransmitter release in cerebral cortex[J]. Science, 1994, 263(5149): 973.
[33]Huang Z, Huang P L, Panahian N, et al. Effects of cerebral ischemia in mice deficient in neuronal nitric oxide synthase[J].Science,1994, 265(5180):1883.
[34]Iadecola C, Zhang F, Casey R, et al. Knockout mice lacking the inducible nitric oxide synthase gene are resistant to cerebral ischemia[J]. Soc Neurosci Abstr, 1996, 22: 1693.
[35]Mori K, Togashi H, Ueno K, et al. Aminoguanidine prevented the impairment of learning behavior and hippocampal long-term potentiation following transient cerebral ischemia[J]. Behav Brain Res, 2001, 120(2):159.
[36]Cárdenas A, De Alba J, Moro M A, et al. Protective effect of N-(3-(aminomethyl)benzyl) acetamidine,an inducible nitric oxide synthase inhibitor, in brain slicesexposed to oxygen-glucose deprivation[J]. Eur J Pharmacol,1998,354(2/3):161.
[37]Liu R, Gao M, Yang Z H, et al. Pinocembrin protects rat brainagainst oxidation and apoptosis induced by ischemia-reperfusionbothin vivo and in vitro[J]. Brain Res,2008,1216:104.
[38]Huang Z, Huang P L, Ma J, et al. Enlarged infarcts in endothelial nitric oxide synthase knockout mice are attenuated by nitro-L-arginine[J]. J Cerebr Blood F Met, 1996, 16(5): 981.
[39]Fagni L, Olivier M, Lafon-Cazal M, et al. Involvement of divalent ions in the nitric oxide-induced blockade ofN-methyl-D-aspartate receptors in cerebellar granule cells[J]. Mol Pharmacol, 1995, 47(6): 1239.
[40]趙保勝,劉啟德. 冰片促血腦屏障開放與病理性開放的比較[J]. 中藥新藥與臨床藥理, 2002,13(5):287.
[41]Liu R, Zhang L, Lan X, et al. Protection by borneol on cortical neurons against oxygen-glucose deprivation/reperfusion: involvement of anti-oxidation and anti-inflammation through nuclear transcription factor kappaB signaling pathway[J]. Neuroscience, 2011,176: 408.
[42]趙保勝, 董淑云, 宓穗卿,等.冰片對腦外傷腦血管內皮細胞iNOS表達的影響[J]. 中國藥理學通報, 2002,18(5):590.
[43]趙保勝. Ca2+、NO、ICAM-1對冰片促血腦屏障開放作用的影響[D].廣州:廣州中醫(yī)藥大學,2001.
[44]趙保勝, 徐勤, 宓穗卿,等. 冰片促血腦屏障開放與一氧化氮含量改變的關系初探[J]. 腦與神經(jīng)疾病雜志, 2001,9(4):207.
[45]Su K H, Shyue S K, Kou Y R, et al.β Common receptor integrates the erythropoietin signaling in activation of endothelial nitric oxide synthase[J]. J Cell Physiol, 2011, 226(12): 3330.
[46]Calvert J W, Lefer D J. Role ofβ-adrenergic receptors and nitric oxide signaling in exercise-mediated cardioprotection[J]. Physiology, 2013, 28(4): 216.
[47]Bhushan S, Kondo K, Predmore B L, et al. Selectiveβ2-adrenoreceptor stimulation attenuates myocardial cell death and preserves cardiac function after ischemia-reperfusion injury[J]. Arteriosci Throm Vas, 2012, 32(8): 1865.
[48]Ju H, Venema V J, Marrero M B, et al. Inhibitory interactions of the bradykininβ2 receptor with endothelial nitric-oxide synthase[J]. J Biol Chem, 1998, 273(37): 24025.
[49]Yao K, Biao X U, Liu Y P. Effects ofβ-adrenoceptor stimulation on endothelial nitric-oxide synthase phosphorylation of human umbilical vein endothelial cells[J]. Acta Pharmacol Sin, 2003, 24(3):219.
[50]Jayachandran M, Hayashi T, Sumi D, et al. Up-regulation of endothelial nitric oxide synthase throughβ2-adrenergic receptor—the role of aβ-blocker with NO-releasing action[J]. Biochem Bioph Res Co, 2001, 280(3): 589.
[責任編輯 陳玲]