龍 輝,謝建紅
(1.廣東省清遠市婦幼保健院 511500;2.廣東省珠海市婦幼保健院 519000)
·論著·
單管多重RT-PCR檢測腸道病毒核酸及其臨床應用
龍輝1,謝建紅2
(1.廣東省清遠市婦幼保健院511500;2.廣東省珠海市婦幼保健院519000)
摘要:目的建立一種快速檢測腸道病毒通用型(EV)、科薩奇病毒A16(CA16)和腸道病毒71(EV71)核酸的單管多重反轉錄聚合酶鏈反應(RT-PCR),并探討其臨床應用價值。方法建立單管多重RT-PCR檢測EV、CA16和EV71的反應體系,并優(yōu)化退火溫度、各引物比例和循環(huán)參數等反應條件;采用自建RT-PCR體系檢測136例手足口病患兒大便標本的腸道病毒核酸。結果單管多重RT-PCR檢測體系的最佳反應條件:退火溫度為54 ℃;EV、CA16和EV71引物比例為2∶1∶1;循環(huán)參數為35。采用自建單管多重RT-PCR從136例標本中檢出EV陽性46例(33.82%),CA16陽性14例(10.29%),EV71陽性14例(10.29%),其中CA16、EV71同時陽性2例。結論成功建立檢測EV、CA16和EV71核酸的單管多重RT-PCR,并應用于手足口病患兒的病原學檢測。
關鍵詞:反轉錄聚合酶鏈反應;手足口病;腸道病毒;核酸
手足口病(HFMD)是由腸道病毒(EV)引起的常見傳染病,致病病原以柯薩奇病毒A組16型(CA16)和腸道病毒71型(EV71)多見[1]。以嬰幼兒發(fā)病為主,近年來呈現暴發(fā)流行的趨勢,嚴重影響嬰幼兒的生活及學習,成為影響社會穩(wěn)定的公共衛(wèi)生問題。尤其是2008年3月在安徽阜陽暴發(fā)的手足口疫情,出現了部分死亡病例,從而引起了全社會的廣泛關注[2]。如何對HFMD的病原進行快速檢測,對HFMD的早期診斷、治療和預后觀察顯得尤為重要。本研究旨在建立一種簡便、快速檢測EV核酸的單管多重反轉錄聚合酶鏈反應(RT-PCR),為HFMD的早期診斷及治療提供病原學依據,現報道如下。
1資料與方法
1.1一般資料收集2014年6月至2015年3月清遠市婦幼保健院兒科收治的136例疑診HFMD患兒的糞便標本,所有標本置-40 ℃保存待檢。其中男74例,女62例,年齡6個月至11歲,平均3歲零2個月。HFMD參照原衛(wèi)生部頒布的《HFMD診療指南(2010年版)》診斷標準[3]。
1.2試劑與儀器柱式病毒RNA提取試劑購自北京天恩澤基因科技有限公司,one-step RT-PCR試劑盒為Takara寶生物(大連)公司產品,采用珠海黑馬9600型PCR儀進行檢測。
1.3方法
1.3.1RNA提取先用生理鹽水將大便標本進行重懸,取0.2 mL重懸液至1.5 mL潔凈離心管中,嚴格按照病毒RNA提取試劑盒說明書提取病毒RNA。提取后的RNA可直接用于RT-PCR或-80 ℃保存。
1.3.2EV通用型(以下簡稱EV)、CA16和EV71單重RT-PCR退火溫度選擇分別對EV、CA16和EV71單重RT-PCR采用梯度PCR進行退火溫度摸索,溫度選擇47~63 ℃。采用Primer 5.0軟件設計各引物序列,交由Takara寶生物(大連)公司合成,引物序列見表1。 以實時熒光RT-PCR 檢測EV、CA16和EV71三者均為陽性的RNA作為RT-PCR反應的模板。RT-PCR反應條件為:50 ℃反轉錄反應30 min,94 ℃預變性2 min后,94 ℃ 30 s,梯度PCR退火溫度47~63 ℃ 30 s,72 ℃延伸45 s,35個循環(huán)后,72 ℃再延伸10 min。取5 μL PCR產物于2%的瓊脂糖凝膠電泳,采用凝膠成像儀對結果進行分析。
1.3.3EV、CA16和EV71單管多重RT-PCR退火溫度確定在確定各單重RT-PCR退火溫度后,選擇EV、CA16和EV71三者均能擴增出產物的溫度范圍作為單管多重RT-PCR退火溫度摸索條件,從而選擇最佳退火溫度。
表1 EV、CA16和EV71 RT-PCR引物序列
1.3.4單管多重RT-PCR按正交設計方法摸索EV、CA16和EV71各引物比例分別以EV、CA16和EV71引物(濃度為10 μmol/L)體積0.5、1.0 、1.5和2.0 μL作為引物比例摸索條件來選擇單管多重RT-PCR最佳引物比例。
1.3.5單管多重RT-PCR循環(huán)參數以25、30、35和40循環(huán)數進行單管多重RT-PCR來選擇最佳循環(huán)參數。
1.3.6單管多重RT-PCR檢測HFMD患兒EV核酸對單管多重RT-PCR各反應參數進行優(yōu)化后,建立最佳反應體系用于臨床標本檢測。將136例診斷為HFMD患兒的大便標本提取RNA后,采用單管多重RT-PCR同時檢測EV、CVA16和EV71,從而分析HFMD患兒EV感染情況。結果判斷標準見表2。
表2 單管多重RT-PCR檢測結果解釋
注:(+)表示陽性,(-)表示陰性。
2結果
2.1EV、CA16和EV71各單重RT-PCR退火溫度EV在溫度為47~62 ℃時均能擴增出產物,表明其退火溫度范圍較寬。CA16在48~54 ℃能擴增出產物,而在57~63 ℃未見擴增產物,由此說明CA16的退火溫度為48~54 ℃。雖然EV71在47~62 ℃均能擴增出產物,但在47~49 ℃出現非特異性條帶,說明該退火溫度范圍過低,因此EV71適宜的退火溫度為50~62 ℃。綜合三者單重RT-PCR的退火溫度,選擇49~55 ℃作為三者單管多重RT-PCR退火溫度摸索的范圍。EV、CA16和EV71單重梯度RT-PCR結果見圖1。
注:EV和EV71的01~06溫度范圍為47~62 ℃。CA16的01~06溫度范圍為48~63 ℃,07為內對照,M為DNAMaker DL500。
圖1EV、CVA16和EV71單重RT-PCR
各退火溫度范圍
2.2EV、CA16和EV71單管多重RT-PCR退火溫度三者在49~55 ℃均能擴增出產物(圖2),根據三者產物條帶灰度的強弱選擇54 ℃作為EV、CA16和EV71單管多重RT-PCR最適退火溫度。
注:01為49.4 ℃,02為50.4℃,03為51.6 ℃,04為52.9 ℃,05為54.2 ℃,06為55.0 ℃,M為DL500。
圖2單管多重RT-PCR 退火溫度
2.3單管多重RT-PCR EV、CA16和EV71各引物劑量見表3。 通過對各引物比例條件的摸索,根據不同引物比例產物灰度的強弱(圖3),選擇EV∶CA16∶EV71=2∶1∶1為單管多重RT-PCR為最佳引物比例條件。
圖3 單管多重RT-PCR EV、CA16和EV71
表3 單管多重RT-PCR檢測EV核酸引物劑量(μL)
2.4單管多重RT-PCR循環(huán)參數見圖4。25循環(huán)時無擴增產物,30循環(huán)時產物條帶較暗,說明產物量較少,40循環(huán)時已至PCR擴增的平臺期,因此選擇35循環(huán)作為單管多重RT-PCR的循環(huán)參數。
注:01為25循環(huán)參數,02為30循環(huán)參數,03為35循環(huán)參數,04為40循環(huán)參數。
圖4單管多重RT-PCR不同循環(huán)參數
2.5單管多重RT-PCR檢測HFMD患兒EV核酸見圖5。在136例大便標本中檢出EV陽性46例(33.82%),CA16陽性14例(10.29%),EV71陽性 14例(10.29%),其中CA16、EV同時陽性2例。
圖5 單管多重RT-PCR檢測HFMD患兒EV核酸
3討論
HFMD是由多種人EV引起的一種嬰幼兒常見的傳染病,大多數患者癥狀輕微,以發(fā)熱和手、足、口腔等部位的皮疹或皰疹為主要癥狀,其中以EV71和CA16感染較常見[4]。特別是EV71可出現無菌性腦膜炎、腦炎、腦脊髓炎等中樞神經系統(tǒng)病變,嚴重者可致死亡[5-6]。HFMD是一種可預防、可治愈的疾病,主要應于早期診斷、早期隔離、早期治療。因而對HFMD病原學進行快速檢測,為HFMD提供早期診斷依據顯得尤為重要。目前HFMD診斷以臨床表現為主要手段,傳統(tǒng)的實驗室診斷方法有病毒分離、中和試驗和ELISA等[7]。病毒分離時間長,操作繁瑣。血清中和試驗和ELISA用于疾病早期診斷靈敏度不高。通過檢測EV核酸則能更快速、更特異地對HFMD進行診斷[8]。常用于EV核酸檢測的方法有RT-PCR和實時熒光RT-PCR等,雖然實時熒光RT-PCR檢測時間短,操作簡便,但由于其要使用熒光探針,且不能用單管多重的方法同時檢測EV、CA16和EV71,因而檢測成本較高,增加了患者的經濟負擔[9]。為了提高檢測EV核酸的靈敏度,有研究者采用互補鎖定引物技術RT-PCR和反轉錄環(huán)介導等溫擴增法等方法來提高檢測的靈敏度,但是這些方法技術難度大,應用成本更高[10-11]。為了建立一種更簡便快速、經濟的方法,本研究將EV、CA16和EV71 3種引物加入同一管中,對各反應條件進行優(yōu)化,采用單管多重RT-PCR同時對EV、CA16和EV71進行檢測。
分別對單管多重RT-PCR的退火溫度、各引物的比例及循環(huán)參數等條件進行優(yōu)化,其退火溫度為54 ℃,EV、CA16和EV71的引物比例為2∶1∶1,循環(huán)參數為35,成功建立用于EV核酸檢測的單管多重RT-PCR。并對136例HFMD患兒臨床標本進行檢測,EV陽性率為33.82%,CA16陽性率為10.29%,EV71陽性率為10.29%,由此表明在HFMD患兒中CA16和EV71均有感染,為HFMD的診斷、治療及預后觀察提供了指導作用。為使單管多重RT-PCR能更好地應用于臨床,需要對單管多重RT-PCR進行方法學評價,包括特異性、靈敏度及與其他方法進行比較,這是本研究下一步將要解決的問題。
HFMD已在世界范圍內流行,常成暴發(fā)趨勢,可致嚴重的并發(fā)癥甚至死亡,在我國已列為丙類傳染病,因而實驗室檢查對HFMD的早期診斷有重要意義。本研究所建立的單管多重RT-PCR更能簡便快速、經濟有效地在各基層單位應用于HFMD的病原體檢測[12]。
參考文獻
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Development and application of single-tube multiplex RT-PCR for detecting enterovirus RNA
LONGHui1,XIEJianhong2
(1.MaternalandChildHealthHospitalofQingyuan,Qingyuan,Guangdong511500,China;2.MaternalandChildHealthHospitalofZhuhai,Zhuhai,Guangdong519000,China)
Abstract:ObjectiveTo establish a rapid single-tube multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) assay for rapid detection of enterovirus RNA including universal enterovirus (EV),coxsachievirus A-16 (CA16) and enterovirus 71 (EV71) and to evaluate the clinical value of this method.MethodsThe reaction conditions of single-tube multiplex RT-PCR were optimized systematically including annealing temperature,the proportion of three groups of primers and the cycle parameter.After the optimal conditions were determined,single-tube multiplex RT-PCR was used to test enterovirus RNA extracted from stool samples of 136 children diagnosed as hand-foot and mouth disease (HFMD).ResultsThe optimal reaction conditions were as follow:annealing temperature was 54 ℃,the proportion of EV,CA16 and EV71 primers corresponded to 2∶1∶1 and the cycle parameter was 35.Out of 136 samples analyzed by single-tube multiplex RT-PCR,46 samples were identified as positive for EV (33.82%),14 samples were identified as positive for CA16 (10.29%) and 14 samples were identified as positive for EV71 (10.29%),among which two samples were identified as positive for both CA16 and EV 71.ConclusionThe single-tube multiplex RT-PCR assay for detecting enterovirus RNA is successfully established and can be applied to provide etiological evidence for HFMD.
Key words:reverse transcription polymerase chain reaction;hand-foot and mouth disease;enterovirus;nucleotide
作者簡介:龍輝,男,副主任技師,主要從事醫(yī)學檢驗研究。
DOI:10.3969/j.issn.1673-4130.2016.11.019
文獻標識碼:A
文章編號:1673-4130(2016)11-1497-04
(收稿日期:2016-01-18修回日期:2016-02-25)