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    拉米夫定與原兒茶酸藥物組合體內(nèi)抗鴨乙肝病毒研究

    2015-03-27 09:42:20張建武馬恒魏一王玲孟沫然韓鳳梅陳勇
    關(guān)鍵詞:原兒茶酸同組雛鴨

    張建武,馬恒,魏一,王玲,孟沫然,韓鳳梅,陳勇

    (湖北省中藥生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(湖北大學(xué)),湖北省生物資源綠色轉(zhuǎn)化協(xié)同創(chuàng)新中心(湖北大學(xué)),湖北武漢430062)

    0 引言

    拉米夫定(lamivudine,簡稱3TC)作為一種口服抗病毒藥物是第一個(gè)獲FDA批準(zhǔn)的,它對(duì)患者血清HBV(乙型肝炎病毒)-DNA呈現(xiàn)快速顯著的抑制作用,但是對(duì)抗原的抑制作用較低,而且停藥后癥狀易復(fù)發(fā),長期用藥會(huì)引起DNA聚合酶區(qū)YMDD基序變異,可增大病毒對(duì)該藥的耐受性,因此限制了其臨床應(yīng)用[1-2].原兒茶酸(protocatechuic acid,PA)具有一定的抗HBV的作用,且葉下珠、丹參、五味子等有效抗HBV的中藥提取物中均含有PA,前期有研究表明,PA體外對(duì)HepG2.2.15細(xì)胞中HBV DNA的抑制率高達(dá)46.54%,而且對(duì)HBsAg和HbeAg均具有一定的抑制作用[3-5].

    本實(shí)驗(yàn)室前期研究表明,3TC聯(lián)合PA可抑制HepG 2.2.15細(xì)胞分泌HBV DNA和抗原[6],同時(shí)對(duì)HBV X蛋白入核[7]及感染鴨乙型肝炎病毒(DHBV)吸附、進(jìn)入和感染鴨原代肝細(xì)胞[8]均有一定的協(xié)同抑制作用,同時(shí)還可降低血清AST和ALT[8].在藥動(dòng)學(xué)方面:二者聯(lián)用后3TC和PA的吸收速度均降低,同時(shí)3TC的吸收總量增大,PA消除減慢,即可延長二者其在體內(nèi)作用的時(shí)間[9].本實(shí)驗(yàn)主要是以櫻桃谷鴨雛鴨為研究對(duì)象,通過感染DHBV進(jìn)行造模,結(jié)合實(shí)驗(yàn)室前期的研究,進(jìn)一步考察3TC和PA藥物組合體內(nèi)抗DHBV的作用及其保肝護(hù)肝的作用.

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑 拉米夫定(純度≥98%)、原兒茶酸(純度≥98%)購于武漢施瑞科技有限公司;門冬氨酸鳥氨酸顆粒劑(簡稱門鳥)受贈(zèng)于武漢啟瑞藥業(yè)有限公司;阿昔洛韋受贈(zèng)于邦倫來福藥業(yè);重組質(zhì)粒PCR211-DHBV115(DQ276978片段,含3 024 bp[10])及DHBV強(qiáng)陽性血清(病毒拷貝數(shù)>5×109/mL)受贈(zèng)于同濟(jì)醫(yī)院臨床免疫研究室(質(zhì)??截悢?shù)為7.06×1010/mL);PCR引物是由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成;SYBR Green qPCR mix購自于TOYOBO(上海)生物科技有限公司;谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)試劑盒、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)試劑盒、堿性磷酸酶(ALP/AKP)測定試劑盒、白蛋白測定試劑盒(ALB)及總膽紅素(TBil)測定試劑盒購自于南京建成生物工程研究所;乙肝表面抗原(HBsAg)測定試劑盒購自于上海自科華生物工程股份有限公司;病毒DNAout購自于北京天恩澤基因科技有限公司.

    1.2 主要儀器 TriStar LB941多功能酶標(biāo)儀(德國Berthold公司);MJ-Mini Option Real-Time PCR system(美國Bio-Rad公司);超低溫冰箱(法國Jouan公司).

    1.3 動(dòng)物模型 櫻桃谷鴨,1~3日齡(簡稱雛鴨,雌雄不限),頸靜脈采血后分離血清,以滅菌雙蒸水作為空白對(duì)照、DHBV強(qiáng)陽性血清作為陽性對(duì)照,采用熒光定量PCR擴(kuò)增血清中DHBV DNA特異序列,從而篩選出血清中DHBV DNA拷貝數(shù)<104/mL的雛鴨.篩選后的雛鴨以0.2 mL/只的劑量經(jīng)腿靜脈注射DHBV強(qiáng)陽性血清(DHBV DNA拷貝數(shù)>5×109/mL)進(jìn)行感染,7 d后,采血分離血清,用RT-PCR篩選拷貝數(shù)在108/mL左右的雛鴨,即造模成功的模型動(dòng)物.

    1.4 RT-PCR標(biāo)曲的制備[11]首先,找出重組質(zhì)粒PCR211-DHBV115 DNA的保守序列(primer-BLAST軟件),根據(jù)該保守序列設(shè)計(jì)出熒光定量PCR檢測DHBV引物序列(primer3.0軟件):Ps1 5′-GCCTTAGCCAATGTGTATGATC-3′,Ps2 5′-CGTGCTGAATAAGATAACCTGTG-3′;然后配制一系列的標(biāo)準(zhǔn)溶液(質(zhì)粒拷貝數(shù)依次為103、104、105依次至1010/mL),再加入DHBV引物,最后進(jìn)行RT-PCR.PCR擴(kuò)增條件為:首先94℃預(yù)熱5 min,再按照94℃50 s,51℃45 s,72℃20 s的條件進(jìn)行40次PCR擴(kuò)增循環(huán).以縱坐標(biāo)為質(zhì)粒拷貝數(shù)對(duì)數(shù)(log拷貝數(shù)),橫坐標(biāo)為樣品到達(dá)對(duì)數(shù)期的循環(huán)數(shù)(Ct值),分別建立給藥周期的RT-PCR標(biāo)曲:log拷貝數(shù)=-0.285 7Ct+13.650,r=0.997 8和不同給藥劑量的RT-PCR標(biāo)曲:log拷貝數(shù)=-0.375 7 Ct+13.076,r=0.997 3.

    1.5 血清中DHBV DNA定量分析[12]用乙醚將雛鴨麻醉之后,經(jīng)腿經(jīng)脈采血0.5 mL,12 000 r/min離心10 min,分離血清,再用一管式病毒DNAout試劑盒提取血清中的病毒DNA進(jìn)行RT-PCR.根據(jù)前期已建立的RT-PCR標(biāo)曲,可測定待測樣品中的DHBV DNA拷貝數(shù).

    1.6 體內(nèi)量-效實(shí)驗(yàn)方法[13]實(shí)驗(yàn)分組:感染DHBV模型雛鴨對(duì)照組(灌胃等量0.85%氯化鈉),阿昔洛韋100.0 mg/kg組,門冬氨酸鳥氨酸(簡稱門鳥)5.0 g/kg組,以及3TC/PA(1∶1)分別為12.5、25.0、50.0、100.0、150.0 mg/kg的合用組,將感染后的雛鴨進(jìn)行隨機(jī)分組、每組10只.各組一日灌胃一次,連續(xù)灌胃給藥14 d.分別在給藥之前(T0)、給藥后第7天(T7)、給藥后第14天(T14)以及停藥后的第3天(P3),每只雛鴨經(jīng)腿經(jīng)脈采血0.5 mL,然后分離血清進(jìn)行肝功能相關(guān)的生化指標(biāo)和DHBV DNA拷貝數(shù)的檢測.

    1.7 體內(nèi)時(shí)-效實(shí)驗(yàn)方法[14]實(shí)驗(yàn)分為感染DHBV模型雛鴨對(duì)照組,正常雛鴨對(duì)照組,阿昔洛韋100.0 mg/kg組,門鳥5.0 g/kg組,以及3TC/PA(1∶1)50.0 mg/kg合用組,隨機(jī)分組、每組10只.每日灌胃給藥一次,連續(xù)給藥28 d.對(duì)照組灌胃等量0.85%氯化鈉.分別于給藥前(T0)、給藥7 d(T7)、給藥14 d(T14)、給藥21 d(T21)、給藥28 d(T28)和停藥5 d(P5),經(jīng)腿靜脈采血,每只0.8 mL,然后分離血清進(jìn)行DHBV DNA拷貝數(shù)和ALT、AST以及DHBsAg檢測.

    1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 使用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)每組數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析.

    2 結(jié)果

    2.1 不同的給藥劑量對(duì)病毒抑制作用及肝功能的影響 研究不同的給藥劑量情況下,血清中DHBV DNA含量的變化,結(jié)果見表1.

    表1 每組用藥前后血清中DHBV DNA的含量(Xˉ±s)

    模型對(duì)照組和門鳥5.0 g/kg組在用藥T0~T14及P3時(shí),血清DHBV DNA含量沒有出現(xiàn)顯著變化(P>0.05).阿昔洛韋100.0 mg/kg組給藥T7、T14時(shí)血清DHBV DNA含量顯著下降(P<0.05),P3后DHBV DNA含量與用藥T14相比顯著升高(P<0.05),出現(xiàn)明顯“反跳”.3TC/PA的各個(gè)劑量組于用藥第T7、T14時(shí)對(duì)血清DHBV DNA含量均有顯著的抑制作用,并且抑制作用隨著給藥劑量的加大而增強(qiáng);P3時(shí)對(duì)DHBV DNA的抑制率分別為15.8%、17.0%、21.7%、20.7%、21.5%,其中25.0、50.0、100.0 mg/kg組P3時(shí)DHBV DNA含量無明顯反跳,12.5、150.0 mg/kg組有較明顯反跳.另外,3TC/PA50.0 mg/kg給藥T14及P3時(shí)血清DHBV DNA含量均顯著低于阿昔洛韋100.0 mg/kg組(P<0.05或P<0.01).

    研究了給藥劑量對(duì)雛鴨肝功能的影響,各組用藥前后血清中各項(xiàng)肝功能生化指標(biāo)測定結(jié)果見表2.

    表2 各組用藥前后血清中肝功能生化指標(biāo)(Xˉ±s)

    結(jié)果顯示,在T14后,門鳥5.0 g/kg、3TC/PA(1:1)50.0及100.0 mg/kg組血清中的ALT、AST、ALB及TBil與同組給藥前水平相比,均顯著低于給藥前水平(P<0.05),3TC/PA 25.0 mg/kg組ALB、Tbil亦顯著低于同組給藥前水平(P<0.05);各組AKP活性較用藥前均大幅下降,即使模型對(duì)照組也不例外(原因尚不明確);阿昔洛韋100.0 mg/kg組給藥前后各項(xiàng)指標(biāo)(除AKP外)無顯著變化(P>0.05).另外,T14時(shí)50.0 mg/ kg 3TC/PA組AST、ALT和Tbil值亦顯著低于5.0 g/kg門鳥組(P<0.01或P<0.05).

    2.2 給藥周期對(duì)病毒抑制作用及肝功能的影響 研究給藥期間對(duì)血清DHBV DNA、DHBsAg含量的影響,其結(jié)果分別見于表3和表4.結(jié)果顯示,100.0 mg/kg劑量組的阿昔洛韋給藥T7~T28及和P5后的血清DHBV DNA含量與同組用藥前相比較具有顯著性降低(P<0.05或P<0.01),但是在P5后DHBV DNA含量與同組給藥T28時(shí)的水平相比,出現(xiàn)反跳現(xiàn)象,顯著高于給藥前水平(P<0.05).50.0 mg/kg劑量組的3TC/PA在給藥T28內(nèi),血清中DHBV DNA的水平均顯著低于同組給藥前水平(P<0.01),雖然在P5后DHBV DNA含量出現(xiàn)一定的反跳現(xiàn)象,但與T28時(shí)的DHBV DNA水平相比并沒有顯著差異(P>0.05).而且50.0 mg/kg劑量組的3TC/PA在給藥T21、T28以及P5的血清DHBV DNA水平均顯著低于100.0 mg/kg劑量的阿昔洛韋組(P<0.05或P<0.01).

    表3 各組給藥前后血清中DHBV DNA的含量(Xˉ±s)

    表4 各組給藥前后血清中DHBsAg水平(Xˉ±s)

    結(jié)果顯示,100.0 mg/kg劑量組的阿昔洛韋給藥T7~T28以及P5后血清DHBsAg含量與同組用藥前相比較具有顯著性降低(P<0.05或P<0.01),但是在P5后DHBsAg含量與同組T28時(shí)的水平相比出現(xiàn)反跳現(xiàn)象,顯著高于T28時(shí)水平(P<0.05).50.0 mg/kg劑量的3TC/PA組給藥T7~T28以及P5后血清DHBsAg含量與同組用藥前相比較具有顯著性降低(P<0.01),且P5后與同組T28時(shí)水平無顯著差異,并無明顯的反跳.另外,50.0 mg/kg劑量的3TC/PA組在給藥的T21、T28及P5的血清DHBsAg水平均顯著低于100.0 mg/kg劑量的阿昔洛韋組(P<0.05或P<0.01).

    研究給藥周期對(duì)雛鴨肝功能的影響,各組給藥前后血清AST、ALT測定結(jié)果見表5和表6.

    表5 各組用藥前后血清中ALT(U/L)水平(Xˉ±s)

    結(jié)果顯示,100.0 mg/kg劑量組的阿昔洛韋對(duì)血清中的ALT含量沒有明顯的影響(P>0.05).5.0 g/kg劑量組的門鳥在給藥的T14、T21及T28血清中的ALT值同給藥前水平比較均顯著性降低(P<0.05或P<0.01),但是在P5后ALT值同組T28時(shí)水平相比較,具有明顯反跳.50.0 mg/kg劑量組的3TC/PA在給藥T7~T28期間的ALT值同給藥前水平相比較,均顯著降低(P<0.05或P<0.01),并且P5后血清ALT值無明顯反跳.另外,P5后50.0 mg/kg劑量3TC/PA組的血清ALT水平亦顯著低于5.0 g/kg劑量門鳥組(P<0.05).

    表6 各組用藥前后血清中AST(U/L)水平(Xˉ±s)

    結(jié)果顯示,100.0 mg/kg劑量的阿昔洛韋在給藥期間對(duì)血清AST值水平?jīng)]有顯著性影響(P>0.05).5.0 g/kg劑量的門鳥在給藥T14、T21和T28時(shí)AST值與給藥前水平相比較,均顯著降低(P<0.05或P<0.01),同時(shí)在P5時(shí)AST水平值與T28時(shí)水平相比并無顯著差異.50.0 mg/kg劑量的3TC/PA在給藥T7、T14、T21和T28時(shí)AST水平值與同組給藥前水平相比較均有顯著性降低(P<0.05或P<0.01),在P5后AST值水平具有一定程度的反跳.另外,在給藥的T14、T28及P5時(shí),50.0 mg/kg劑量的3TC/PA組血清AST值均顯著低于5.0 g/ kg劑量的門鳥組(P<0.01).

    3 討論

    本實(shí)驗(yàn)室前期研究工作表明,3TC與PA的聯(lián)合給藥,當(dāng)二者的劑量比(質(zhì)量分?jǐn)?shù))為1∶1時(shí),對(duì)DHBV DNA的抑制作用最好,同時(shí)具有較好的保肝護(hù)肝作用[12].本實(shí)驗(yàn)選用門鳥[15]為保肝護(hù)肝的陽性對(duì)照藥,阿昔洛韋為抗DHBV的陽性對(duì)照藥[13]、結(jié)合實(shí)驗(yàn)室前期的研究,進(jìn)一步考察3TC和PA藥物組合體內(nèi)抗DHBV及其保肝護(hù)肝的作用.

    量-效關(guān)系研究表明,3TC/PA對(duì)血清中DHBV DNA的抑制作用隨著給藥劑量(12.5~150 mg/kg)的加大而增強(qiáng),其中100.0 mg/kg和150.0 mg/kg劑量組在P5后DHBV DNA量出現(xiàn)明顯的反跳現(xiàn)象.50.0 mg/ kg劑量組在給藥的T7~T14期間及P5時(shí)DHBV DNA的含量顯著低于對(duì)照組阿昔洛韋,ALT、AST及Tbil值水平均顯著低于門鳥對(duì)照組,該結(jié)果說明3TC/PA體內(nèi)抗DHBV的最佳給藥劑量為50.0 mg/kg.時(shí)-效關(guān)系研究表明,在給藥的T0~T28期間,3TC/PA在50.0 mg/kg時(shí),對(duì)血清中DHBV DNA、DHBsAg、AST和ALT的抑制作用隨著給藥周期的延長而增強(qiáng),并且在給藥周期中以及P5后血清中DHBV DNA和DHBsAg的水平均顯著低于阿昔洛韋對(duì)照組,同時(shí)血清AST和ALT的水平也顯著低于門鳥對(duì)照組.該實(shí)驗(yàn)結(jié)果再次表明,3TC/PA體內(nèi)抗DHBV的最佳給藥劑量為50.0 mg/kg,一方面其抗病毒效果優(yōu)于阿昔洛韋,另一方面保肝護(hù)肝效果優(yōu)于門鳥.結(jié)合早期大量的研究工作,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)一步證明了3TC聯(lián)合PA用于抗HBV的科學(xué)性與合理性.

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