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      BVDV1型和2型焦磷酸測序檢測方法的建立

      2014-11-23 09:22:46劉海生張永強趙永剛吳延功王清華任煒杰劉春菊王志亮
      中國獸醫(yī)雜志 2014年7期
      關(guān)鍵詞:焦磷酸測序引物

      劉海生,張永強,趙永剛,吳延功,王清華,任煒杰,呂 艷,劉春菊,王志亮,單 虎

      (1.青島農(nóng)業(yè)大學山東省獸藥診斷試劑工程技術(shù)研究中心山東省高校預(yù)防獸醫(yī)學重點試驗室,山東 青島 266109;2.中國動物衛(wèi)生與流行病學中心,山東 青島 266032)

      牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)屬于黃病毒科,瘟病毒屬,同屬成員還包括豬瘟病毒(CSFV)和羊邊界病毒(BDV)。根據(jù)病毒5'-UTR基因序列可將BVDV分為BVDV 1型和BVDV 2型。

      牛病毒性腹瀉/黏膜病是BVDV引起的以牛發(fā)熱、黏膜糜爛潰瘍、白細胞減少、腹瀉、咳嗽及懷孕母牛流產(chǎn)或產(chǎn)出畸形胎兒為主要特征的傳染病。BVDV已被國內(nèi)外廣泛地研究報道,致病型BVDV 1常在免疫過疫苗的牛群中引起一過性發(fā)熱和下痢,BVDV 2型的強毒株常引起牛急性感染,表現(xiàn)為發(fā)燒、腹瀉、血小板減少癥、出血、呼吸失調(diào)、高流產(chǎn)率和高死亡率,另外,它還能引起懷孕后期母牛的流產(chǎn)、死胎和新生小牛的先天畸形、免疫抑制等[1-3]。持續(xù)感染牛(PI)是BVDV在牛群中持續(xù)存在和突然暴發(fā)的主要原因。PI牛除了引起奶牛腹瀉、流產(chǎn)外,與正常牛相比,還會出現(xiàn)體重增重減少、繁殖率大大降低、死亡率高、奶牛屢配不孕等情況。BVD的存在會給牧場造成極大的經(jīng)濟損失[4],嚴重影響著畜牧業(yè)的發(fā)展。

      BVDV的診斷方法主要有病毒的分離鑒定,ELISA和real-time RT-PCR等方法。病毒分離鑒定是BVDV的經(jīng)典診斷方法,但存在操作繁瑣,診斷時間較長(1周或更長時間)等不足。ELISA抗原檢測方法具有特異性強、重復(fù)性好等特點,同時具有敏感性差等缺點,不能檢測出牛的BVDV一過性感染。real-time RT-PCR是BVDV常用的病原檢測和分型方法,國外已經(jīng)建立了雙重熒光real time RT-PCR檢測方法[5],但是存在易污染,出現(xiàn)假陽性等問題。本研究建立的BVDV 1型和2型焦磷酸測序檢測方法能直接讀取檢測樣品的基因序列,實現(xiàn)快速確診BVDV,對于BVDV的分型、流行病學調(diào)查以及凈化具有重要意義。

      1 材料

      1.1 病毒和樣品 BVDV-BA株,購自中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所;牛冠狀病毒(BCV)、牛輪狀病毒(BRV)、牛傳染性鼻氣管炎病毒(IBRV)、牛病毒腹瀉病毒2型(BVDV2)和豬瘟病毒(CSFV)由中國動物衛(wèi)生與流行病學中心保存,腸出血性大腸桿菌(EHEC)由青島農(nóng)業(yè)大學保存,天津某規(guī)?;膛?6份抗凝血樣品。

      1.2 主要試劑和儀器 Transcriptor One-Step RTPCR Kit,High Pure Viral RNA Kit,購自 Roche 公司;IDEXX BVDV Ag Serum Plus病原檢測試劑盒,購自IDEXX公司;Pyro Gold SQA Reagents 1×96 Pyromark ID,購自Biotage AB公司;PyroMark Q96 MD儀器,購自QIAGEN公司。

      2 方法

      2.1 引物設(shè)計 根據(jù)GenBank中BVDV 1、BVDV 2和BDV的5′-UTR基因序列,運用PSQ Assay Design軟件分析,設(shè)計一對通用擴增引物和分別針對BVDV1和2型的兩條測序引物,其中通用引物的下游引物在5端采用生物素標記。引物均從上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。本研究中所用的引物及其序列詳見表1、表2。

      表1 擴增引物的序列

      表2 測序引物及序列

      2.2 RNA提取 采用Roche公司生產(chǎn)的High Pure Viral RNA Kit提取BVDV-BA、BVDV-2、BCV、BRV、IBRV和CSFV的RNA。使用煮沸裂解法提取腸出血性大腸桿菌(EHEC)和腸炎沙門菌的DNA。提取的核酸立即用于RT-PCR擴增或置-80℃保存。

      2.3 RT-PCR擴增條件優(yōu)化和待測樣品制備 以提取的病毒RNA為模板,不同退火溫度梯度進行RT-PCR反應(yīng),取5 μL擴增產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

      以最優(yōu)反應(yīng)條件,分別以BVDV 1型和2型核酸為模板進行RT-PCR,擴增產(chǎn)物分為2份,1份用于焦磷酸測序,另1份送交測序公司測序。

      2.4 焦磷酸測序反應(yīng)

      2.4.1 測序單鏈模板的制備 根據(jù)Gene Company Limited公司的焦磷酸測序反應(yīng)操作說明書制備測序單鏈模板。將45 μL RT-PCR單鏈模板分別加入到PSQ 96板的兩個孔中,其中一個孔含有45 μL 1型測序引物,另一個孔含有45 μL 2型測序引物,并在85℃的烘箱中放置2 min,取出冷卻后就可進行焦磷酸測序。

      2.4.2 測序反應(yīng) 根據(jù)PSQTM 96MA System儀器的軟件說明書在試劑艙中分別加入的底物APS、dNTP和酶混合物(DNA聚合酶、熒光素酶、ATP硫酸化酶和三磷酸腺苷雙磷酸酶);然后將試劑艙和PSQ 96板放入PSQ TM 96 MD Sys tem儀器中,進行Pyrosequencing反應(yīng)。

      2.5 特異性試驗 以BVDV-BA、BVDV-2、BCV、BRV、IBRV、CSFV、EHEC和Salmonella enteritidis的核酸為模板,用優(yōu)化好的RT-PCR反應(yīng)條件進行擴增,取5 μL擴增產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

      用1型和2型測序引物分別對上述RT-PCR產(chǎn)物進行焦磷酸測序反應(yīng)。

      2.6 重復(fù)性試驗 將擴增的RT-PCR產(chǎn)物分別進行3次焦磷酸測序,比較每次測得的序列結(jié)果,確定試驗的重復(fù)性和穩(wěn)定性。

      2.7 焦磷酸測序檢測方法在臨床樣品上的應(yīng)用

      從牛場采集86份抗凝血,使用Roche公司生產(chǎn)的High Pure Viral RNA Kit提取RNA,進行RT-PCR擴增,取5 μL進行凝膠電泳鑒定,陽性樣品進行焦磷酸測序。同時使用BVDV Ag Serum Plus檢測86份樣品,將陽性樣品提取核酸,使用文獻[6]中引物進行RTPCR擴增,將擴增結(jié)果送交公司測序。

      3 結(jié)果

      3.1 RT-PCR擴增條件優(yōu)化結(jié)果 優(yōu)化后的RTPCR反應(yīng)條件為:50℃反轉(zhuǎn)錄30 min;94℃預(yù)變性7 min;94 ℃ 15 s,58 ℃ 30 s,68 ℃ 15 s,45個循環(huán);68℃ 7 min。

      3.2 RT-PCR反應(yīng) 采用擴增引物對BVDV 1和2型2株病毒進行RT-PCR擴增,結(jié)果均能擴增出與目的條帶大小相符的特異性條帶(圖1)。

      3.3 焦磷酸測序反應(yīng) BVDV 1和2型的焦磷酸測序反應(yīng)每次均能測序到30個堿基以上,完全能用于BVDV的快速鑒定和分型。焦磷酸測序結(jié)果與普通測序結(jié)果完全一致,符合率為100%,序列測定結(jié)果圖略;證明該試驗具有很好的特異性(圖2)。

      3.4 特異性鑒定結(jié)果 以BCV、BRV、IBRV、CSFV、EHEC和沙門菌的核酸為模板的RT-PCR電泳結(jié)果沒有條帶,以BVDV 1型和2型為模板的RTPCR電泳結(jié)果顯示有惟一目的條帶,大小符合預(yù)期(圖3)。

      在焦磷酸測序儀中1型測序引物只與1型的RT-PCR產(chǎn)物結(jié)合,2型測序引物只與2型的RTPCR產(chǎn)物結(jié)合。本試驗具有良好的特意性。

      3.5 重復(fù)性試驗結(jié)果 對每個RT-PCR產(chǎn)物進行3次重復(fù)性檢測,檢測的結(jié)果均一致,證明該方法有很好的重復(fù)性與穩(wěn)定性。

      3.6 焦磷酸測序檢測方法在臨床樣品上的應(yīng)用結(jié)果 對86份樣品進行焦磷酸測序,結(jié)果顯示,有2份BVDV 1型陽性(圖4),沒有BVDV 2型。與IDEXX BVDV Ag Serum Plus檢測的陽性樣品測序結(jié)果一致。說明該奶牛場感染了BVDV 1型。

      4 討論

      BVDV能引起牛腹瀉、血小板減少、繁殖障礙、免疫耐受等癥狀,甚至可以引發(fā)黏膜病,給世界養(yǎng)牛業(yè)帶來了巨大的經(jīng)濟損失。PI牛是牛場中的主要危害,PI牛能長期帶毒、排毒,部分PI牛無典型臨床癥狀,嚴重影響了牛群中PI牛的清除工作。

      陳備娟等(2010)對我國11個省市的規(guī)模奶牛場進行BVDV感染情況的調(diào)查,抽樣檢測了57個規(guī)模奶牛場的大缸奶樣,抗體陽性的場有48個,陽性率為84.2%,表明了BVDV在奶牛場具有非常高的感染率[7]。我國需要建立一種準確、快速、高通量的檢測方法,用于牛群中BVDV的檢測和凈化。

      焦磷酸測序技術(shù)(Pyrosequencing)是近年發(fā)展起來的一種能夠通過對基因序列測序?qū)崿F(xiàn)檢測和確診的新型檢測技術(shù),具有高通量、快速、敏感等特點[8],與普通RT-PCR和real time RT-PCR等檢測技術(shù)相比,本技術(shù)無需將PCR產(chǎn)物送交公司測序以便確診,從而大大減少了病原確診時間。目前該技術(shù)在人乳頭瘤病毒和單純皰疹病毒快速分型上已得到成功應(yīng)用。

      本研究比對了GenBank中絕大多數(shù)BVDV 5′UTR序列,設(shè)計的擴增引物為BVDV通用引物,能同時擴增出BVDV 1和2型的目的基因片段。針對BVDV1和2型分別設(shè)計的測序引物有12個堿基不同,不能與另外1個型發(fā)生非特異性結(jié)合,但與本型毒株則能很好的結(jié)合,具有良好的特異性。由于此方法得到的數(shù)據(jù)為基因序列圖譜,排除了結(jié)果為CSFV或BDV的假陽性。本試驗發(fā)現(xiàn),在測序反應(yīng)中,將測序引物濃度從0.3 mol/L調(diào)至0.6 mol/L時,能得到峰值更高的圖形與結(jié)果。

      焦磷酸測序方法對PCR擴增產(chǎn)物的濃度與純度有一定的要求,因此該方法的敏感性低于國外常用的熒光定量分型方法。一過性感染BVDV牛的早期和末期,由于血液中病毒含量少,該方法存在漏檢的可能性。但是PI牛長期大量的排毒,病毒含量高,該方法完全可以用于牛場持續(xù)性感染牛(PI)的凈化。

      此外,使用IDEXX BVDV Ag Serum Plus對某奶牛場的86份抗凝血進行了檢測,將陽性結(jié)果的抗凝血提取核酸,RT-PCR擴增,并送到公司測序。得到的測序結(jié)果與焦磷酸測序結(jié)果一致,對序列進行進化樹分析顯示,2份陽性病料均為BVDV 1型。

      [1]Corapi W V,F(xiàn)rench T W,Dubovi E J.Severe thrombocytopenia in young calves experimentally infected with non-cytopathic bovine viral diarrhea virus[J].J Virol,1989,63:3934-3943.

      [2]Ridpath J F,Bolin S R,Dubovi E J.Segregation of bovineviral diarrhea virus into genotypes[J].Virology,1994,205:66-74.

      [3]Carman S,van Dreumel T,Ridpath J,et al.Severe acute bovine viral diarrhea in Ontario1998[J].J Vet Diagn Invest,1998,10(1):27-35.

      [4]Houe H.Economic impact of BVDV infection in dairies[J].Biologicals,2003,31:137-143.

      [5]Willoughby K,Valdazo-González B,Maley M,et al.Development of a real time RT-PCR to detect and type ovine pestiviruses[J].J Virol Methods,2006,132(1):187-194.

      [6]Charles P,Jacqveline L,Peter T,et al.Identification of a new group of bovine viral diarrhea virus strains associated with severe outbreaks and high mortalities[J].Virology,1994,203:260-268.

      [7]陳備娟,高全新,朱毅興,等.利用耳組織、血液、牛奶樣品檢測牛病毒性腹瀉病毒的比較[J].中國奶牛,2010(6):6-8.

      [8]Elahi E,Ronaghi M.Pyrosequencing:a tool for DNA sequencing analysis[J].Methods in molecular biology,2004,255:211-219.

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