摘要:水稻(Oryza sativa L.)是世界上最重要的糧食作物,是人類獲得植物蛋白質(zhì)的主要來(lái)源之一。近年來(lái),水稻蛋白質(zhì)組學(xué)發(fā)展異常迅速,取得了非常顯著的成績(jī)。綜述了國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)水稻組織器官蛋白質(zhì)組、亞細(xì)胞水平蛋白質(zhì)組、逆境脅迫下的蛋白質(zhì)組、激素誘導(dǎo)下的蛋白質(zhì)組以及水稻突變體蛋白質(zhì)組的最新研究進(jìn)展。
關(guān)鍵詞:水稻(Oryza sativa L.);蛋白質(zhì)組;雙向電泳;質(zhì)譜
中圖分類號(hào):S511;Q71 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: A 文章編號(hào):0439-8114(2013)10-2233-05
水稻是世界上最重要的糧食作物之一,為全世界超過(guò)2/3的人口提供主食[1]。水稻的基因組較小,由430M個(gè)堿基組成,重復(fù)序列少,易于遺傳操作且與其他禾谷類作物存在共線性,目前已成為單子葉植物分子生物學(xué)研究領(lǐng)域的模式生物[2]。2002年水稻栽培品種秈稻和粳稻基因組框架圖繪制完成,2005年8月,國(guó)際水稻基因組測(cè)序計(jì)劃(IRGSP)已經(jīng)構(gòu)建了水稻基因組的框架圖,完成了水稻基因組95%高通量序列的測(cè)序工作[3,4]。
隨著基因組研究的進(jìn)一步深入,人們認(rèn)識(shí)到單純進(jìn)行基因組研究已不能完全解釋生命現(xiàn)象的本質(zhì)問(wèn)題[5]。水稻從基因組時(shí)代步入后基因組時(shí)代,注重于功能的研究[6]。傳統(tǒng)的基因組功能研究方法主要有基因表達(dá)系統(tǒng)分析、微陣列法、基因芯片等,但這些方法都局限于研究mRNA在組織細(xì)胞中的豐度變化。事實(shí)上mRNA受轉(zhuǎn)錄調(diào)控的局限,并不能完整描繪蛋白水平上的變化[7]。而蛋白質(zhì)組是動(dòng)態(tài)的,能通過(guò)分離、鑒定和分析細(xì)胞、組織或生物體復(fù)雜的蛋白混合物來(lái)研究目的基因在不同時(shí)間是否表達(dá)、表達(dá)量有無(wú)變化、蛋白質(zhì)不同修飾及亞細(xì)胞分布等[8]。因此蛋白質(zhì)組學(xué)研究對(duì)后基因組的發(fā)展是不可或缺的。
雙向電泳和質(zhì)譜技術(shù)是蛋白質(zhì)組的核心研究工具[9]。通過(guò)雙向電泳獲得蛋白質(zhì)組表達(dá)譜或差異蛋白,再通過(guò)質(zhì)譜技術(shù)對(duì)感興趣的蛋白點(diǎn)進(jìn)行鑒定。通過(guò)分析各種蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和功能可以直接研究細(xì)胞、組織或生物體在不同生理過(guò)程或逆境條件下的變化機(jī)制。目前,水稻蛋白質(zhì)組學(xué)主要集中在對(duì)水稻各個(gè)組織器官及亞細(xì)胞水平基本表達(dá)模式的研究,同時(shí)水稻環(huán)境脅迫應(yīng)答過(guò)程的比較蛋白質(zhì)組學(xué)和水稻突變體、激素誘導(dǎo)的蛋白質(zhì)組學(xué)研究也正在進(jìn)行并逐步深入。
1 蛋白質(zhì)組學(xué)在水稻研究中的應(yīng)用
1.1 水稻組織器官的蛋白質(zhì)組
水稻蛋白質(zhì)組早期的研究主要集中在對(duì)各個(gè)器官組織進(jìn)行蛋白質(zhì)表達(dá)譜的研究,以構(gòu)建水稻蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù),確定一些基因在水稻不同發(fā)育階段和不同組織器官表達(dá)的特異性。近年來(lái),隨著水稻全基因組測(cè)序工作的完成,運(yùn)用蛋白質(zhì)組學(xué)方法可以更加快速、全面地研究水稻的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程及其調(diào)控。
Tsugita等[10]對(duì)水稻9種組織和1個(gè)器官的蛋白質(zhì)進(jìn)行了雙向電泳分離,并對(duì)分離后的蛋白點(diǎn)根據(jù)其等電點(diǎn)、分子量和N端測(cè)序作了定性。Woo等[11]對(duì)水稻胚乳蛋白質(zhì)組進(jìn)行了分析,共獲得700個(gè)蛋白點(diǎn),并對(duì)其中的100個(gè)蛋白進(jìn)行測(cè)序,確定了31個(gè)蛋白的N端序列,其余69個(gè)蛋白的序列不能確定,推測(cè)可能是由這些蛋白的N端封閉造成的。
Kerim等[12]利用蛋白質(zhì)組的方法研究水稻花粉在發(fā)育過(guò)程中蛋白質(zhì)合成的變化。該研究構(gòu)建了6個(gè)不連續(xù)的孢子發(fā)育階段的蛋白質(zhì)表達(dá)譜,共獲得2 500個(gè)蛋白點(diǎn)。比對(duì)后發(fā)現(xiàn)超過(guò)155個(gè)蛋白點(diǎn)有2倍以上的豐度變化,155個(gè)蛋白點(diǎn)質(zhì)譜鑒定結(jié)果表明,除10個(gè)沒(méi)有獲得質(zhì)譜數(shù)據(jù)蛋白點(diǎn)外,鑒定的蛋白中有將近一半的蛋白在花粉發(fā)育的早期階段均不表達(dá)。
Islam等[13]研究了水稻成熟葉片的蛋白質(zhì)組,該研究以水稻2月齡葉片和5月齡葉片作為試驗(yàn)材料,比較了水稻葉片蛋白質(zhì)組在這2個(gè)時(shí)期的變化。經(jīng)比對(duì)發(fā)現(xiàn)僅有5個(gè)差異表達(dá)的蛋白,同源性搜索鑒定它們?yōu)楹送嵌姿狒然搁L(zhǎng)鏈前體、光合體系Ⅱ放氧復(fù)合體蛋白前體、絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶、核酮糖二磷酸羧化酶大亞基前體和假定蛋白。
在水稻乳熟期,上位節(jié)間對(duì)種子質(zhì)量和產(chǎn)量起著至關(guān)重要的作用,Yang等[14]運(yùn)用蛋白質(zhì)組的方法分析了水稻乳熟期上位節(jié)間的所有可溶性蛋白。通過(guò)雙向電泳共檢測(cè)到762個(gè)蛋白點(diǎn),對(duì)其中的132個(gè)高豐度蛋白點(diǎn)進(jìn)行質(zhì)譜鑒定,鑒定出98個(gè)蛋白點(diǎn),對(duì)應(yīng)80個(gè)基因的表達(dá)產(chǎn)物。這些蛋白屬于11個(gè)功能類別,與能量相關(guān)蛋白排在首位,其他蛋白大部分與代謝、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和抗逆性有關(guān),表明水稻上位節(jié)間具有很高的生理活性和抗逆性。Yang等[15]比較了水稻萌發(fā)種子和干種子的蛋白質(zhì)組差異,共發(fā)現(xiàn)148個(gè)差異表達(dá)的蛋白點(diǎn),其中63個(gè)蛋白下調(diào)表達(dá),69個(gè)蛋白上調(diào)表達(dá)。下調(diào)蛋白主要是貯藏蛋白、與種子成熟相關(guān)蛋白及與干燥作用相關(guān)蛋白。貯藏蛋白的降解主要發(fā)生在萌發(fā)階段Ⅱ的后期(吸漲48 h),與種子成熟和干燥相關(guān)蛋白的降解主要發(fā)生在萌發(fā)階段Ⅱ的早期(吸漲24 h)。除了α-淀粉酶以外,上調(diào)蛋白主要涉及糖酵解途徑,例如UDP-葡萄糖脫氫酶、果糖激酶、葡萄糖磷酸變位酶和丙酮酸鹽脫羧酶。通過(guò)該試驗(yàn)結(jié)果可以推測(cè)水稻種子萌發(fā)過(guò)程中可能的生理生化過(guò)程。
Shao等[16]選擇水稻幼苗2~5葉期4個(gè)時(shí)期的葉片作為試驗(yàn)材料來(lái)研究葉片蛋白質(zhì)組在幼苗階段的變化。通過(guò)2-DE分離和Imagemaster 2D Elite 5.0軟件分析,共檢測(cè)到41個(gè)差異表達(dá)蛋白,17個(gè)是在3葉期后新出現(xiàn)的蛋白,其中9個(gè)蛋白點(diǎn)只出現(xiàn)在3葉期。在41個(gè)差異表達(dá)蛋白中,有13個(gè)蛋白點(diǎn)的表達(dá)量呈現(xiàn)先增后減的趨勢(shì),直至最后消失。另外的11個(gè)蛋白點(diǎn)中,有3個(gè)蛋白點(diǎn)表達(dá)量下降,6個(gè)蛋白點(diǎn)表達(dá)量增加,還有2個(gè)蛋白點(diǎn)的表達(dá)量在2葉期后呈不規(guī)則變化。隨后,作者對(duì)這41個(gè)蛋白點(diǎn)進(jìn)行了質(zhì)譜鑒定,共鑒定出15個(gè)蛋白點(diǎn),歸為4類:涉及光合作用的蛋白、防御相關(guān)蛋白、代謝相關(guān)蛋白和氨基酸合成代謝蛋白。該研究發(fā)現(xiàn),葉片蛋白上調(diào)的關(guān)鍵時(shí)期是3葉期,水稻植株可能從這一時(shí)期開始由異養(yǎng)階段轉(zhuǎn)為自養(yǎng)階段,開始進(jìn)行光合作用。
He等[17]研究了水稻萌發(fā)種子的蛋白質(zhì)組,進(jìn)而根據(jù)鑒定的蛋白構(gòu)建水稻種子在萌發(fā)過(guò)程中的代謝及調(diào)控途徑。該研究共鑒定出673個(gè)不同的蛋白。到目前為止,這是水稻萌發(fā)種子最全面的蛋白表達(dá)譜。所有蛋白按功能可以歸為14類。代謝蛋白為第一大類,共有203個(gè)蛋白,占總數(shù)的37.6%;第二大類是與發(fā)育相關(guān)的蛋白,包括貯藏蛋白,大約占總數(shù)的25.9%;第三大類包含120個(gè)蛋白,涉及蛋白質(zhì)生物合成、修飾、降解、折疊和運(yùn)輸。其他功能蛋白類別包括信號(hào)(42個(gè))、應(yīng)激反應(yīng)(41個(gè))、RNA(27個(gè))、DNA(17個(gè))、氧化還原調(diào)控(25個(gè))、轉(zhuǎn)運(yùn)(18個(gè))、細(xì)胞(18個(gè))、其他酶類(20個(gè))、激素(9個(gè))和金屬處理(4個(gè)),另外還有94個(gè)蛋白為未知功能蛋白。
1.2 水稻亞細(xì)胞水平蛋白質(zhì)組
隨著研究的深入,人們不再把目光僅局限于水稻組織器官水平上的蛋白質(zhì)組研究,而是深入地研究水稻亞細(xì)胞水平的蛋白質(zhì)組。對(duì)水稻進(jìn)行亞細(xì)胞水平上的蛋白質(zhì)組研究,有助于豐富水稻蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù),為以后蛋白的鑒定奠定基礎(chǔ)。
Tsugita等[10]首先對(duì)水稻葉綠體進(jìn)行了蛋白質(zhì)組分析。經(jīng)2-DE分離共檢測(cè)到276個(gè)蛋白點(diǎn),對(duì)16個(gè)蛋白進(jìn)行了N-端序列分析,并對(duì)13個(gè)蛋白進(jìn)行了測(cè)序分析。這是首次對(duì)水稻葉綠體蛋白質(zhì)組分析的報(bào)道,提供了水稻葉綠體蛋白的概況。Heazlewood等[18]對(duì)水稻線粒體蛋白質(zhì)組進(jìn)行了研究,經(jīng)雙向電泳共分離到250個(gè)蛋白點(diǎn),并對(duì)其中145個(gè)高豐度蛋白進(jìn)行了質(zhì)譜分析,共鑒定出80個(gè)蛋白,預(yù)測(cè)由63個(gè)基因表達(dá)所得。
Aki等[19]通過(guò)分析水稻細(xì)胞核蛋白質(zhì)組以期發(fā)現(xiàn)在植物糖類應(yīng)答中起保守進(jìn)化作用的新蛋白。最初運(yùn)用納升級(jí)液相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法獲得了563個(gè)差異點(diǎn),通過(guò)DNA親和層析發(fā)現(xiàn),307個(gè)差異點(diǎn)與核酸有關(guān),經(jīng)生物信息學(xué)篩查最終確定了2個(gè)新蛋白。該研究不僅提高了我們對(duì)核蛋白的認(rèn)識(shí),還提供了一種鑒定個(gè)別特殊因子的新方法。Tan等[20]為了研究水稻染色質(zhì)的構(gòu)成蛋白和高級(jí)結(jié)構(gòu),提取水稻懸浮細(xì)胞的染色質(zhì)蛋白,經(jīng)二維電泳獲得972個(gè)蛋白點(diǎn),隨后對(duì)這些蛋白點(diǎn)進(jìn)行質(zhì)譜分析,共鑒定出509個(gè)蛋白點(diǎn),對(duì)應(yīng)269種蛋白。對(duì)染色質(zhì)純化蛋白進(jìn)行鳥槍法分析發(fā)現(xiàn),除4種常見的核心組蛋白外還鑒定出許多組蛋白變體。其他鑒定出的蛋白包括核小體組裝蛋白、高遷移率蛋白、組蛋白修飾蛋白、轉(zhuǎn)錄因子還有許多假設(shè)或功能未知的蛋白。
1.3 逆境脅迫下水稻蛋白質(zhì)組
在水稻生長(zhǎng)過(guò)程中往往會(huì)受到來(lái)自各方面的脅迫,有生物脅迫也有非生物脅迫。在各種脅迫情況下,水稻植株總會(huì)產(chǎn)生許多應(yīng)激反應(yīng),然而對(duì)于這些應(yīng)激反應(yīng)的機(jī)制卻知之不多。蛋白質(zhì)組方法的誕生為研究這些應(yīng)激機(jī)制提供了便利,可以通過(guò)水稻在不同脅迫下產(chǎn)生的蛋白表達(dá)變化,分析不同脅迫對(duì)水稻的傷害機(jī)制及水稻對(duì)不同脅迫的適應(yīng)機(jī)制。
Agrawal等[21]運(yùn)用雙向電泳、氨基酸測(cè)序和免疫印跡技術(shù)首次研究了臭氧對(duì)水稻幼苗的影響。與對(duì)照相比共找到了52個(gè)差異表達(dá)的蛋白點(diǎn),臭氧處理使得水稻葉片中的光合作用蛋白急劇減少,同時(shí)誘導(dǎo)許多與防御相關(guān)蛋白的表達(dá)。研究還發(fā)現(xiàn),許多葉片中突出變化的蛋白都發(fā)生在臭氧處理后的24 h之內(nèi),誘導(dǎo)了與發(fā)病機(jī)制相關(guān)的蛋白、抗壞血酸過(guò)氧化物酶、超氧化物歧化酶、鈣結(jié)合蛋白等蛋白的表達(dá)。
Ventelon-Debout等[22]通過(guò)雙向電泳和質(zhì)譜鑒定技術(shù)研究了水稻在水稻黃斑病毒感染期間的蛋白表達(dá)譜。該研究選取了2個(gè)水稻品種作為試驗(yàn)材料,一個(gè)是易感染水稻黃斑病毒的IR64,另一個(gè)是對(duì)水稻黃斑病毒有一定抗性的Azucena。通過(guò)比較對(duì)照和病毒感染細(xì)胞的蛋白質(zhì)組,在IR64的表達(dá)譜中變化顯著的蛋白點(diǎn)有40個(gè),而在Azucena的表達(dá)譜中變化顯著的蛋白點(diǎn)有24個(gè)。對(duì)這些點(diǎn)進(jìn)行質(zhì)譜鑒定,2個(gè)品種分別鑒定出19個(gè)和13個(gè)蛋白。這些蛋白屬于3大功能類別:新陳代謝相關(guān)蛋白、脅迫相關(guān)蛋白和翻譯相關(guān)蛋白。
Kim等[23]選用液體培養(yǎng)18 d的水稻幼苗作為試驗(yàn)材料,用鹽溶液處理3 d后比較水稻蛋白質(zhì)組的變化。比較對(duì)照組和處理組的水稻葉片蛋白表達(dá)譜,一共得到55個(gè)差異表達(dá)蛋白,其中有47個(gè)蛋白點(diǎn)在鹽處理后表達(dá)上調(diào)。隨后用納升級(jí)液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法對(duì)這些蛋白點(diǎn)進(jìn)行鑒定,共鑒定出33個(gè)蛋白點(diǎn)。鑒定的這些蛋白多數(shù)參與主要的代謝過(guò)程,例如二氧化碳同化和光呼吸作用。此外,雙向電泳免疫印跡和酶活測(cè)定結(jié)果顯示關(guān)鍵的標(biāo)記酶的顯著變化與鹽脅迫氧化損傷有關(guān)。
Yan等[24]為了研究水稻在低溫脅迫下的應(yīng)激反應(yīng),對(duì)3周齡水稻幼苗分別在6 ℃處理6 h和24 h,隨后恢復(fù)24 h,再通過(guò)雙向電泳技術(shù)研究水稻葉片中蛋白質(zhì)的變化。對(duì)凝膠進(jìn)行分析共得到31個(gè)下調(diào)蛋白和65個(gè)上調(diào)蛋白。通過(guò)質(zhì)譜鑒定了85個(gè)差異表達(dá)的蛋白,涉及多種生理過(guò)程,包括信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、RNA加工、翻譯過(guò)程、蛋白質(zhì)加工、氧化還原平衡、光合作用、光呼吸作用,還有碳、氮、硫和能量代謝。
Fan等[8]選取2周齡水稻幼苗作為試驗(yàn)材料,分別用綿羊唾液處理2、6、12和24 h,通過(guò)蛋白質(zhì)組方法研究了水稻幼苗對(duì)綿羊唾液脅迫的反應(yīng)。定量分析表明,經(jīng)綿羊唾液處理后共有54個(gè)蛋白點(diǎn)的表達(dá)量發(fā)生了變化,19個(gè)蛋白點(diǎn)在處理2 h時(shí)發(fā)生變化(19個(gè)蛋白點(diǎn)中有1個(gè)在6 h和12 h時(shí)同樣發(fā)生變化,還有2個(gè)蛋白點(diǎn)分別在12 h和24 h時(shí)發(fā)生變化);7個(gè)蛋白點(diǎn)在處理6 h時(shí)發(fā)生變化;16個(gè)蛋白點(diǎn)在12 h時(shí)發(fā)生變化(16個(gè)蛋白點(diǎn)中有1個(gè)在24 h時(shí)同樣發(fā)生變化);16個(gè)蛋白點(diǎn)在處理24 h時(shí)發(fā)生變化。上述54個(gè)蛋白點(diǎn)通過(guò)質(zhì)譜鑒定出37個(gè),根據(jù)功能將它們分為8類。有許多蛋白參與復(fù)雜的代謝途徑,例如過(guò)氧化氫酶、過(guò)氧化物氧化酶、ATP合酶、3-磷酸甘油醛脫氫酶和核酮糖二磷酸羧化酶。
低濃度的亞硒酸鈉對(duì)水稻幼苗的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,高濃度的亞硒酸鈉會(huì)抑制水稻幼苗的生長(zhǎng)。為了研究硒引起這些反應(yīng)的詳細(xì)調(diào)控機(jī)制,Wang等[25]運(yùn)用雙向電泳和質(zhì)譜技術(shù)進(jìn)行了比較蛋白質(zhì)組研究。分別用3種不同濃度硒對(duì)水稻幼苗和根進(jìn)行處理,與對(duì)照相比分別得到66個(gè)和97個(gè)差異表達(dá)蛋白(3種處理濃度的總和),表明根比幼苗對(duì)硒處理表現(xiàn)出更為敏感。在這些差異點(diǎn)中,在3種濃度處理下都上調(diào)的蛋白點(diǎn)在苗和根中分別有8個(gè)和24個(gè),在3種濃度處理下都下調(diào)的蛋白點(diǎn)在苗和根中分別有48個(gè)和46個(gè),苗和根中分別有7個(gè)和17個(gè)蛋白點(diǎn)在低濃度處理下是上調(diào)的,但在高濃度處理下又發(fā)生了下調(diào)。此外,苗和根中分別還有3個(gè)和10個(gè)蛋白點(diǎn)在低濃度處理下是下調(diào)的,在高濃度處理下反而上調(diào)。經(jīng)質(zhì)譜完全鑒定,66個(gè)苗蛋白差異點(diǎn)鑒定為54種蛋白,97個(gè)根蛋白差異點(diǎn)鑒定為80種蛋白,其中只有7個(gè)蛋白均在苗和根中出現(xiàn)。Gene ontology和分類分析表明,初級(jí)代謝、光合作用和氧化還原平衡是最容易受硒處理影響的生理過(guò)程。低濃度的硒處理能活化抗氧化體系,增強(qiáng)光合作用和初級(jí)代謝作用。高濃度的硒處理會(huì)損傷光合作用裝置,抑制光合作用和初級(jí)代謝。
1.4 激素誘導(dǎo)下水稻蛋白質(zhì)組
激素在水稻的生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中起著不可忽視的調(diào)控作用,運(yùn)用蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù)研究激素對(duì)水稻的調(diào)控作用可以通過(guò)蛋白表達(dá)的變化來(lái)推測(cè)激素對(duì)水稻生長(zhǎng)發(fā)育調(diào)控的作用機(jī)制。
Shen等[26]研究了水稻葉鞘經(jīng)5μmol/L赤霉素處理不同時(shí)間后的蛋白表達(dá)情況,經(jīng)2-DE分離和計(jì)算機(jī)圖像分析,共檢測(cè)到33個(gè)差異表達(dá)蛋白,其中21個(gè)蛋白點(diǎn)表達(dá)上調(diào),12個(gè)蛋白點(diǎn)表達(dá)下調(diào),說(shuō)明水稻葉鞘經(jīng)赤霉素處理至少有30多個(gè)基因產(chǎn)物與之相關(guān)。Rakwal等[27]研究了水稻各組織中受赤霉素調(diào)控的蛋白。作者分別研究了水稻葉鞘、根和懸浮細(xì)胞經(jīng)赤霉素處理前后的蛋白表達(dá)情況,葉鞘、根和懸浮細(xì)胞中分別獲得79、73和140個(gè)差異表達(dá)蛋白,這些蛋白點(diǎn)中分別鑒定出8、21和14個(gè)受赤霉素調(diào)控的蛋白。這些蛋白在葉鞘中參與一般的新陳代謝、能量產(chǎn)生、轉(zhuǎn)錄調(diào)控和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),在根中參與代謝和防御作用,在懸浮細(xì)胞中參與代謝、能量產(chǎn)生、細(xì)胞生長(zhǎng)、防御和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。
Tanaka等[28]在蛋白質(zhì)組水平上研究了外源的脫落酸對(duì)2周齡水稻幼苗葉片的影響。從葉片蛋白脫落酸處理前后蛋白表達(dá)譜上來(lái)看,脫落酸處理后的蛋白點(diǎn)與對(duì)照相比有顯著差異,共檢測(cè)到36個(gè)差異蛋白點(diǎn)。氨基酸序列分析表明,脫落酸主要引起光合蛋白、1,5-二磷酸核酮糖羧化酶/加氧酶和一些防御蛋白的劇烈變化。Kim等[29]研究了赤霉素和脫落酸在種子萌發(fā)過(guò)程中所起的作用,經(jīng)蛋白質(zhì)2-DE圖譜分析后得到16個(gè)受赤霉素或脫落酸顯著調(diào)控的蛋白,15個(gè)蛋白點(diǎn)經(jīng)赤霉素處理后表達(dá)上調(diào),1個(gè)蛋白點(diǎn)經(jīng)脫落酸處理后表達(dá)下調(diào)。這些經(jīng)赤霉素處理增加而經(jīng)脫落酸處理后又減少的蛋白被視作赤霉素反應(yīng)蛋白。Zhang等[30]為了驗(yàn)證脫落酸是否在劣質(zhì)子粒灌漿期中起重要作用,采用基于雙向電泳的比較蛋白質(zhì)組學(xué)和磷酸化蛋白質(zhì)組學(xué)來(lái)研究劣質(zhì)子粒經(jīng)外源的脫落酸處理后蛋白表達(dá)的變化。試驗(yàn)總共檢測(cè)到111個(gè)顯著差異的蛋白和31個(gè)磷蛋白。經(jīng)質(zhì)譜鑒定的蛋白和磷蛋白分別有100個(gè)和23個(gè)。這些差異表達(dá)的蛋白在防御、次級(jí)代謝以及細(xì)胞發(fā)育和光合作用中起著作用。
1.5 水稻突變體的蛋白質(zhì)組
突變體是遺傳學(xué)研究的重要材料,應(yīng)用蛋白質(zhì)組學(xué)方法對(duì)基因突變引起的蛋白質(zhì)表達(dá)變化進(jìn)行研究,可直觀地將差異表達(dá)的蛋白呈現(xiàn)出來(lái),有助于揭示突變體的生理生化及遺傳機(jī)制,從而得到植物遺傳學(xué)的重要數(shù)據(jù)。
Komatsu等[31]比較了水稻綠苗和白化苗的蛋白質(zhì)2-DE圖譜,發(fā)現(xiàn)參與光合作用的蛋白質(zhì)只存在于綠苗中,而白化苗中僅以此蛋白質(zhì)前體的形式出現(xiàn)??箟难徇^(guò)氧化物酶只存在于白化苗中,說(shuō)明抗氧化酶在水稻白化苗中起細(xì)胞保護(hù)的作用。王玉忠等[32]比較了溫敏失綠突變體水稻失綠前后的2-DE圖譜,發(fā)現(xiàn)失綠部分某蛋白P1特異缺失,在復(fù)綠后P1正常表達(dá),推測(cè)該蛋白與葉綠素代謝密切相關(guān)。溫敏核不育水稻是兩系核不育水稻的重要育種材料,低溫下可育。謝錦云等[33]對(duì)不育和可育花藥樣品通過(guò)2-DE圖譜分離,發(fā)現(xiàn)從不育到可育的2-DE圖譜上,明顯上調(diào)的蛋白質(zhì)包括幾丁質(zhì)酶、酸性磷酸酶、谷蛋白前體等,明顯下調(diào)的蛋白有谷氨酸氨甲酰轉(zhuǎn)移酶等。模擬病斑突變體通常能在無(wú)病原物存在的情況下產(chǎn)生系統(tǒng)性過(guò)敏性壞死斑,并表現(xiàn)出對(duì)多種病原物抗性的提高。
Tsunezuka等[34]對(duì)一種cdr2突變體的3個(gè)病斑形成階段材料用2-DE分離,與野生型相比,有37個(gè)蛋白點(diǎn)差異表達(dá),其中28個(gè)蛋白點(diǎn)在突變體中表達(dá)上調(diào),9個(gè)蛋白點(diǎn)表達(dá)下調(diào),經(jīng)質(zhì)譜鑒定,差異表達(dá)的蛋白點(diǎn)與防御作用相關(guān)。此外代謝酶類蛋白有27個(gè),暗示該突變體發(fā)生的細(xì)胞程序化死亡與活躍的代謝有關(guān)。Chen等[35]用藍(lán)綠膠和2-DE的方法對(duì)水稻黃綠突變體中葉綠體類囊體膜上的蛋白復(fù)合物進(jìn)行了分離,共鑒定了52個(gè)蛋白點(diǎn)。歐立軍[36]研究了溫敏核不育水稻淡黃葉突變體安農(nóng)810 S的葉綠體蛋白,發(fā)現(xiàn)突變體的葉綠體蛋白約為對(duì)照安農(nóng)810 S的55%,經(jīng)質(zhì)譜鑒定,與光合作用相關(guān)的差異蛋白點(diǎn)有13個(gè),其中4個(gè)缺失蛋白,包括1個(gè)RuBP大亞基缺失。
2 前景和展望
水稻蛋白質(zhì)組學(xué)作為一門新興的學(xué)科已經(jīng)受到越來(lái)越多的關(guān)注。目前水稻蛋白質(zhì)組學(xué)已經(jīng)從組織器官、亞細(xì)胞水平、逆境脅迫、激素誘導(dǎo)、突變體等方面進(jìn)行了研究,并在蛋白鑒定和功能分析方面取得了巨大進(jìn)展,已建立了一些水稻蛋白質(zhì)組的數(shù)據(jù)庫(kù),包括各組織器官、亞細(xì)胞及不同發(fā)育期的雙向電泳圖譜。另外,水稻的逆境脅迫和激素的蛋白質(zhì)組學(xué)研究有利于提高水稻的品質(zhì)、產(chǎn)量。但是水稻蛋白質(zhì)組的研究還停留在一個(gè)比較基礎(chǔ)的層面上,大多數(shù)研究都只局限于一種組織、一種處理,單一地研究水稻生長(zhǎng)、發(fā)育、代謝調(diào)控機(jī)制,并沒(méi)有從系統(tǒng)的角度來(lái)看待這一問(wèn)題,在代謝途徑、調(diào)控網(wǎng)絡(luò)方面的研究還有所欠缺。
隨著各種數(shù)據(jù)庫(kù)的不斷豐富,生物信息學(xué)的發(fā)展,質(zhì)譜等高通量支撐技術(shù)的改進(jìn),以及大規(guī)模水稻功能基因組的研究,將有利于實(shí)現(xiàn)水稻蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)和與其基因組數(shù)據(jù)庫(kù)的整合,這有助于實(shí)現(xiàn)諸如水稻生長(zhǎng)、發(fā)育、進(jìn)化及代謝調(diào)控等生命活動(dòng)規(guī)律等方面的重大突破,有助于人們整體理解作為重要農(nóng)作物的水稻。另外,水稻的蛋白質(zhì)組學(xué)研究也為其他禾谷類農(nóng)作物的功能基因組研究打下了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。
總之,2-DE在目前的蛋白質(zhì)分離科學(xué)中仍然占有很重要的地位,與其他具有快速、高通量特征的方法相互補(bǔ)充將是當(dāng)前及未來(lái)相當(dāng)長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)研究蛋白質(zhì)組的一種趨勢(shì)。隨著蛋白質(zhì)組學(xué)研究的不斷深入,蛋白質(zhì)組學(xué)的規(guī)模和研究關(guān)注的焦點(diǎn)在不斷改變,需要發(fā)展生物計(jì)算機(jī)技術(shù)來(lái)整合蛋白質(zhì)組的巨大數(shù)據(jù)并用以描述復(fù)雜生物系統(tǒng),蛋白質(zhì)組學(xué)研究的重點(diǎn)將從蛋白表達(dá)轉(zhuǎn)向蛋白功能研究。與此同時(shí),完整的水稻蛋白質(zhì)組學(xué)還要深入研究蛋白質(zhì)翻譯后修飾(PTMs)以及蛋白質(zhì)之間相互作用復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)關(guān)系,這是蛋白質(zhì)組學(xué)研究的一項(xiàng)艱巨任務(wù),也是今后研究的重點(diǎn)。
參考文獻(xiàn):
[1] SASAKI T, BURR B. International Rice Genome Sequencing Project: the effort to completely sequence the rice genome[J]. Current Opinion in Plant Biology,2000,3(2):138-141.
[2] AGRAWAL G K, RAKWAL R. Rice proteomics: A move toward expanded proteome coverage to comparative and functional proteomics uncovers the mysteries of rice and plant biology[J]. Proteomics,2011,11(9):1630-1649.
[3] LIU Q P, XUE Q Z. Genome sequencing and identification of gene function in rice[J]. Acta Genetica Sinica,2006,33(8):669-677.
[4] International Rice Genome Sequencing Project. The map-based sequence of the rice genome[J]. Nature,2005,436(7052):793-800.
[5] KOMATSU S, KOJIMA K, SUZUKI K, et al. Rice Proteome Database based on two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis: its status in 2003[J]. Nucleic Acids Research,2004,32:D388-D392.
[6] MIERNYK J A, PRETOVA A, OLMEDILLA A, et al. Using proteomics to study sexual reproduction in angiosperms[J]. Sexual Plant Reproduction,2011,24(1):9-22.
[7] JUGRAN A, BHATT I D, RAWAL R S. Characterization of agro-diversity by seed storage protein electrophoresis: focus on rice germplasm from Uttarakhand Himalaya, India[J]. Rice Science,2010,17(2):122-128.
[8] FAN W H, CUI W T, LI X F, et al. Proteomics analysis of rice seedling responses to ovine saliva[J]. Journal of Plant Physiology,2011,168(5):500-509.
[9] AHRNE E,OHTA Y,NIKITIN F, et al. An improved method for the construction of decoy peptide MS/MS spectra suitable for the accurate estimation of 1 discovery rates[J]. Proteomics,2011,11(20):4085-4095.
[10] TSUGITA A, KAWAKAMI T, UCHIYAMA Y, et al. Separation and characterization of rice proteins[J]. Electrophoresis, 1994, 15(1):708-720.
[11] WOO S H, FUKUDA M, ISLAM N, et al. Efficient peptide mapping and its application to identify embryo proteins in rice proteome analysis[J]. Electrophoresis,2002,23(4):647-654.
[12] KERIM T, IMIN N, WEIMAN J J, et al. Proteome analysis of male gametophyte development in rice anthers[J]. Proteomics,2003,3(5):738-751.
[13] ISLAM N, LONSDALE M, UPADHYAYA N M, et al. Protein extraction from mature rice leaves for two-dimensional gel electrophoresis and its application in proteome analysis[J]. Proteomics,2004,4(7):1903-1908.
[14] YANG P F,LIANG Y,SHEN S H,et al. Proteome analysis of rice uppermost internodes at the milky stage[J].Proteomics,2006,6(11):3330-3338.
[15] YANG P F, LI X J, WANG X Q, et al. Proteomic analysis of rice(Oryza sativa) seeds during germination[J].Proteomics,2007,7(18):3358-3368.
[16] SHAO C H, LIU G R, WANG J Y, et al. Differential proteomic analysis of leaf development at rice(Oryza sativa) seedling stage[J]. Agricultural Sciences in China,2008,7(9):1153-1160.
[17] HE D L, HAN C, YAO J L,et al. Constructing the metabolic and regulatory pathways in germinating rice seeds through proteomic approach[J]. Proteomics,2011,11(13):2693-2713.
[18] HEAZLEWOOD J L, HOWELL K A, WHELAN J, et al. Towards an analysis of the rice mitochondrial proteome[J]. Plant Physiology,2003,132(1):230-242.
[19] AKI T, YANAGISAWA S. Application of rice nuclear proteome analysis to the identification of evolutionarily conserved and glucose-responsive nuclear proteins[J]. Journal of Proteome Research,2009,8(8):3912-3924.
[20] TAN F, LI G S, CHITTETI B R, et al. Proteome and phosphoproteome analysis of chromatin associated proteins in rice (Oryza sativa)[J]. Proteomics,2007,7(24):4511-4527.
[21] AGRAWAL G K, RAKWAL R, YONEKURA M, et al. Proteome analysis of differentially displayed proteins as a tool for investigating ozone stress in rice(Oryza sativa L.) seedlings[J]. Proteomics,2002,2(8):947-959.
[22] VENTELON-DEBOUT M, DELALANDE F, BRIZARD J P, et al. Proteome analysis of cultivar-specific deregulations of Oryza sativa indica and O. sativa japonica cellular suspensions undergoing rice yellow mottle virus infection[J]. Proteomics,2004,4(1):216-225.
[23] KIM D W, RAKWAL R, AGRAWAL G K, et al. A hydroponic rice seedling culture model system for investigating proteome of salt stress in rice leaf[J]. Electrophoresis,2005, 26(23):4521-4539.
[24] YAN S P, ZHANG Q Y, TANG Z C, et al. Comparative proteomic analysis provides new insights into chilling stress responses in rice[J]. Molecular Cellular Proteomics,2006,5(3):484-496.
[25] WANG Y D, WANG X, WONG Y S. Proteomics analysis reveals multiple regulatory mechanisms in response to selenium in rice[J]. Journal of Proteomics,2012,75(6):1849-1866.
[26] SHEN S, SHARMA A, KOMATSU S. Characterization of proteins responsive to gibberellin in the leaf-sheath of rice (Oryza sativa L.) seedling using proteome analysis[J]. Biological and Pharmaceutical Bulletin,2003,26(2):129-136.
[27] RAKWAL R,KOMATSU S. Abscisic acid promoted changes in the protein profiles of rice seedling by proteome analysis[J]. Molecular Biology Reports,2004,31(4):217-230.
[28] TANAKA N, KONISHI H, KHAN M M, et al. Proteome analysis of rice tissues by two-dimensional electrophoresis: an approach to the investigation of gibberellin regulated proteins[J]. Molecular Genetics and Genomics,2004,270(6):485-496.
[29] KIM S T, KANG S Y, WANG Y, et al. Analysis of embryonic proteome modulation by GA and ABA from germinating rice seeds[J]. Proteomics,2008,8(17):3577-3587.
[30] ZHANG Z X, CHEN J, LIN S S, et al. Proteomic and phosphoproteomic determination of ABA’s effects on grain-filling of Oryza sativa L. inferior spikelets[J]. Plant Science,2012,185-186:259-273.
[31] KOMATSU S, MUHAMMAD A, RAKWAL R. Separation and characterization of proteins from green and etiolated shoots of rice (Oryza sativa L.): towards a rice proteome[J]. Electrophoresis,1999,20(3):630-636.
[32] 王玉忠,邵繼榮,劉永勝,等.溫敏失綠突變體水稻1103s在失綠過(guò)程中全葉蛋白的變化[J]. 植物學(xué)報(bào),1999,41(5):519-523.
[33] 謝錦云,李小蘭,陳 平,等.溫敏核不育水稻花藥蛋白質(zhì)組初步分析[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2003,19(2):215-221.
[34] TSUNEZUKA H, FUJIWARA M, KAWASAKI T, et al. Proteome analysis of programmed cell death and defense signaling using the rice lesion mimic mutant cdr2[J]. Molecular Plant-microbe Interactions,2005,18(1):52-59.
[35] CHEN X, ZHANG W, XIE Y J, et al. Comparative proteomics of thylakoid membrane from a chlorophyll b-less rice mutant and its wild type[J]. Plant Science,2007,173(4):397-407.
[36] 歐立軍.水稻葉色突變體葉綠體發(fā)育規(guī)律研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2010,30(1):85-92.