邱 瑾, 姚文龍, 張 玥, 鄒姮婧, 燕 琳, 張傳漢
華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院麻醉科,武漢 430030
Cdh1 是細(xì)胞周期末期促進(jìn)復(fù)合物(anaphase promoting complex,APC)的調(diào)節(jié)亞基,在調(diào)控細(xì)胞增殖、糖代謝、膠質(zhì)細(xì)胞遷移、軸突生長(zhǎng)等多種細(xì)胞功能中都發(fā)揮著重要作用[1]。我們前期研究已發(fā)現(xiàn),Cdh1蛋白在大鼠全腦缺血模型海馬組織中表達(dá)下降,可能參與了腦缺血的發(fā)病機(jī)制[2],但引起Cdh1蛋白表達(dá)下降的原因目前尚不明確。本實(shí)驗(yàn)旨在觀察體外純化培養(yǎng)星形膠質(zhì)細(xì)胞氧糖剝奪(oxygen-glucose deprivation,OGD)后Cdh1蛋白的表達(dá)變化,及其是否與細(xì)胞外液葡萄糖含量有關(guān),為進(jìn)一步明確缺血缺氧性腦損傷的發(fā)病機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
根據(jù)McCarthy 等[3]報(bào)道的方法,取新生1~2 d SD 大鼠,75%乙醇消毒,無(wú)菌操作下取出全腦浸于4℃預(yù)冷D-h(huán)anks液中,用眼科鑷快速剝除腦膜及小腦,夾取皮層置于另一玻璃皿中。仔細(xì)剪碎皮層組織后,離心棄上清,加入0.25%胰酶,吹打懸浮細(xì)胞團(tuán)后,37℃消化15 min,中間間隔振蕩離心管壁,促進(jìn)細(xì)胞懸浮。終止消化后,離心棄上清,加入含10%胎牛血清(Gibco公司),青霉素100U/mL,鏈霉素100mg/mL的DMEM/F12(Gibco公司)培養(yǎng)液中,輕柔吹打制備單細(xì)胞懸液,200目細(xì)胞篩過(guò)濾,差速培養(yǎng)0.5h 后,取懸液種于新細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,37℃溫箱培養(yǎng),平均3~4d換液。細(xì)胞培養(yǎng)7~10d后,于37℃恒溫?fù)u床250r/min 過(guò)夜,以去除小膠質(zhì)細(xì)胞及少突膠質(zhì)細(xì)胞。0.25%胰酶消化后,接種于新細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,繼續(xù)培養(yǎng)7~10d后,重復(fù)純化傳代,得到成熟的星形膠質(zhì)細(xì)胞。
①以1.5×105/cm2的密度接種星形膠質(zhì)細(xì)胞于3.5cm 培養(yǎng)皿中,隨機(jī)分為3組,每組6個(gè)培養(yǎng)皿,分別為對(duì)照組、氧糖剝奪1h復(fù)氧組、氧糖剝奪6 h復(fù)氧組。細(xì)胞接種3d后,參考Lee等[4]的方法,吸去細(xì)胞培養(yǎng)液,根據(jù)分組情況,以含糖或不含糖Earle’s平衡液(NaCl 117mmol/L,KCl 5.4mmol/L,CaCl21.8 mmol/L,NaHCO326 mmol/L,MgSO40.8 mmol/L,NaH2PO41.0 mmol/L,Glucose 5.6mmol/L)沖洗細(xì)胞2 遍以去除血清的影響,對(duì)照組加入2mL 含糖Earle’s平衡液,繼續(xù)常氧培養(yǎng),氧糖剝奪1h復(fù)氧組及氧糖剝奪6h復(fù)氧組每培養(yǎng)皿加入2mL不含糖Earle’s平衡液,放入密閉小室內(nèi),通入混合氣體(5%CO2,95%N2)進(jìn)行1h或6h的缺氧處理,隨后更換為正常培養(yǎng)液,繼續(xù)37℃培養(yǎng)48h后棄液,預(yù)冷PBS沖洗2遍,提取細(xì)胞總蛋白。
②同樣以1.5×105/cm2的密度接種純化的星形膠質(zhì)細(xì)胞于3.5cm 培養(yǎng)皿中,隨機(jī)分為對(duì)照組、氧糖剝奪6h組、單純?nèi)毖?h組,于接種細(xì)胞3d后,棄培養(yǎng)液并沖洗細(xì)胞后,對(duì)照組及單純?nèi)毖?h組每培養(yǎng)皿加入2mL含糖Earle’s平衡液,氧糖剝奪6h組每培養(yǎng)皿加入2mL 不含糖Earle’s平衡液,對(duì)照組常氧培養(yǎng),氧糖剝奪6h組及單純?nèi)毖?h組進(jìn)行缺氧處理,6h 后收集培養(yǎng)液上清,血糖儀(Roche公司)檢測(cè)葡萄糖含量,同時(shí)將培養(yǎng)皿中細(xì)胞用預(yù)冷PBS沖洗2遍,提取總蛋白用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
以含PMSF(1μmol/L)的RIPA 裂解液冰上充分裂解細(xì)胞,收集裂解液于4℃離心收集上清,加入上樣緩沖液,100℃蛋白變性10min。以β-actin為內(nèi)參,取等量的蛋白質(zhì)經(jīng)10%聚丙烯酰胺凝膠電泳后,轉(zhuǎn)移蛋白至PVDF 膜上,用含5%脫脂奶粉的TBST 室溫慢搖封閉1h,以兔抗Cdh1多克隆抗體(北京奧維亞,1∶400),或兔抗Skp2 多克隆抗體(武漢博士德,1∶400)或小鼠抗β-actin單克隆抗體(武漢博士德,1∶400)4 ℃孵育過(guò)夜,TBST 漂洗3遍后加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的二抗(武漢博士德,1∶3 000),室溫慢搖孵育1h,TBST 漂洗3遍后進(jìn)行ECL 顯色(Pierce 公司),凝膠成像分析系統(tǒng)(BIO-RAD公司)進(jìn)行掃描照相。
采用SPSS 12.0統(tǒng)計(jì)軟件包進(jìn)行分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩組間的比較采用t檢驗(yàn),3組間比較采用方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
如圖1所示,體外培養(yǎng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞,氧糖剝奪1h或6h并復(fù)氧48h后,Cdh1蛋白表達(dá)均下降,與對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);氧糖剝奪1h或6h并復(fù)氧48h后,與對(duì)照組相比,星形膠質(zhì)細(xì)胞中Skp2蛋白表達(dá)均增加(P<0.05);氧糖剝奪1h及6h復(fù)氧兩組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
圖1 星形膠質(zhì)細(xì)胞不同程度氧糖剝奪/復(fù)氧后Cdh1及Skp2蛋白的表達(dá)變化Fig.1 The change in the expression of Cdh1and Skp2in astrocytes after OGD/recovery
單純?nèi)毖?h后,體外培養(yǎng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞中Cdh1蛋白表達(dá)沒(méi)有顯著變化;氧糖剝奪6h后,星形膠質(zhì)細(xì)胞中的Cdh1蛋白表達(dá)明顯下降,與對(duì)照組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);氧糖剝奪6h與單純?nèi)毖?h引起的Cdh1蛋白表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖2。
圖2 葡萄糖對(duì)缺氧后星形膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)Cdh1蛋白表達(dá)的影響Fig.2 Effect of glucose on the expression of Cdh1in astrocytes after hypoxia
含糖的Earle’s平衡液中葡萄糖初始含量為5.6mmol/L。常氧條件下,星形膠質(zhì)細(xì)胞在含糖的Earle’s平衡液中培養(yǎng)6h后,培養(yǎng)液中葡萄糖含量為(4.09±0.52)mmol/L;缺氧條件下,用含糖的Earle’s平衡液培養(yǎng)星形膠質(zhì)細(xì)胞6h后,培養(yǎng)液中葡萄糖含量為(4.40±0.38)mmol/L。兩組培養(yǎng)液中葡萄糖含量均下降。計(jì)算細(xì)胞外液葡萄糖攝取率,缺氧組葡萄糖攝取率(21.43±6.74)%低于常氧組(26.98±9.21)%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。
Cdh1作為APC在中樞神經(jīng)系統(tǒng)中重要的調(diào)節(jié)亞基,主要通過(guò)D-box、KEN box以及A-Box等特殊的結(jié)構(gòu)域識(shí)別底物,形成APC-Cdh1-底物復(fù)合物,從而啟動(dòng)底物蛋白的泛素化降解[5-6]。探討引起Cdh1在星形膠質(zhì)細(xì)胞氧糖剝奪后表達(dá)變化的因素,對(duì)治療缺血性腦損傷具有重要意義。
近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),星形膠質(zhì)細(xì)胞能耐受一定程度的缺氧,而神經(jīng)元缺氧后極易損傷,可能與二者細(xì)胞內(nèi)不同的Cdh1活性有關(guān)[7-8]。生理狀態(tài)下,神經(jīng)元細(xì)胞中Cdh1活性高于星形膠質(zhì)細(xì)胞,Cdh1通過(guò)泛素化降解Pfkfb3,使神經(jīng)元細(xì)胞中僅在mRNA水平能檢測(cè)到Pfkfb3 表達(dá),而在蛋白水平Pfkfb3完全消失。Pfkfb3可以產(chǎn)生果糖-2,6-二磷酸,是糖酵解限速酶磷酸果糖激酶-1(Phosphofructokinase-1,PKF-1)最有效的激活劑[9]。因此神經(jīng)元在缺氧后難以通過(guò)糖酵解提供能量。相反,星形膠質(zhì)細(xì)胞在缺氧后能夠有效啟動(dòng)糖酵解,具有一定的缺氧耐受性,與細(xì)胞內(nèi)Pfkfb3未被Cdh1完全降解有關(guān),較低的Cdh1活性是在缺氧條件下能否啟動(dòng)糖酵解,繼續(xù)提供能量的關(guān)鍵[7,10]。
中樞神經(jīng)系統(tǒng)的葡萄糖主要儲(chǔ)存于星形膠質(zhì)細(xì)胞中。當(dāng)體外純化培養(yǎng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞,因缺少神經(jīng)元缺氧損傷的信號(hào)刺激,能量供應(yīng)負(fù)荷也同時(shí)下降,星形膠質(zhì)細(xì)胞的缺氧耐受時(shí)間與體內(nèi)實(shí)驗(yàn)有所不同。體外實(shí)驗(yàn)已有報(bào)道,完全氧糖剝奪1h復(fù)氧48~72h后,星形膠質(zhì)細(xì)胞發(fā)生反應(yīng)性增殖,活細(xì)胞數(shù)量上升,而在氧糖剝奪4h復(fù)氧48h后,檢測(cè)到星形膠質(zhì)細(xì)胞發(fā)生凋亡壞死,活細(xì)胞數(shù)量下降[11]。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇對(duì)比觀察星形膠質(zhì)細(xì)胞體外氧糖剝奪1h及6h,復(fù)氧48h后細(xì)胞內(nèi)Cdh1蛋白的表達(dá)變化。結(jié)果顯示,兩組Cdh1 蛋白表達(dá)均下降,兩組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。我們推測(cè),氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞中Cdh1活性的進(jìn)一步下調(diào)與大量激活的糖酵解有關(guān),而這一變化不受缺氧時(shí)間長(zhǎng)短的影響。
Skp2作為SCF復(fù)合物泛素化降解細(xì)胞周期相關(guān)蛋白途徑的關(guān)鍵點(diǎn),與細(xì)胞增殖與凋亡都有一定的關(guān)聯(lián)[12]。同時(shí),Skp2也是Cdh1泛素化降解的下游底物之一[13]。我們前期的體內(nèi)實(shí)驗(yàn)證明,大鼠全腦缺血模型海馬組織中Cdh1 蛋白表達(dá)下降,而Skp2蛋白表達(dá)上升,提示Skp2參與了缺血性腦損傷發(fā)生機(jī)制,其表達(dá)增加可能與Cdh1活性下降有關(guān)[2,14]。本實(shí)驗(yàn)中也發(fā)現(xiàn),與氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)Cdh1蛋白表達(dá)下降相對(duì)應(yīng)的,Skp2蛋白表達(dá)明顯增加,再次證實(shí)了前述推測(cè)。
體外氧糖剝奪/復(fù)氧模型中,涉及了氧糖剝奪、復(fù)氧兩個(gè)階段,為進(jìn)一步明確引起Cdh1蛋白變化的具體機(jī)制,我們?cè)谛切文z質(zhì)細(xì)胞氧糖剝奪6h后,立即檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)Cdh1 蛋白的表達(dá)變化。結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,Cdh1 蛋白表達(dá)明顯下降,說(shuō)明Cdh1蛋白的表達(dá)變化參與的是氧糖剝奪的損傷機(jī)制。而在單純?nèi)毖?h組,細(xì)胞外液持續(xù)供應(yīng)葡萄糖的情況下,Cdh1蛋白表達(dá)并沒(méi)有發(fā)生顯著變化,與氧糖剝奪6h引起的Cdh1蛋白表達(dá)下降相比,二者差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。因此我們推測(cè),細(xì)胞外液中是否存在持續(xù)供應(yīng)的葡萄糖,與缺氧后Cdh1蛋白表達(dá)下降有著密切聯(lián)系。為驗(yàn)證細(xì)胞外液中的葡萄糖在缺氧后繼續(xù)參與了細(xì)胞代謝,我們對(duì)比了常氧培養(yǎng)6h及缺氧培養(yǎng)6h細(xì)胞外液中葡萄糖含量的變化。結(jié)果顯示,即使在缺氧環(huán)境中,細(xì)胞外液中的葡萄糖依舊被攝取進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),但其攝取率低于常氧情況下。
綜上可知,氧糖剝奪后星形膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)Cdh1蛋白表達(dá)下降,Skp2蛋白表達(dá)增加,與體內(nèi)模型中結(jié)果一致,其變化不受氧糖剝奪程度的影響而改變;氧糖剝奪引起的星形膠質(zhì)細(xì)胞內(nèi)Cdh1蛋白表達(dá)下降可能與細(xì)胞外液中缺少葡萄糖有關(guān),但其具體機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。
[1] Puram S V,Bonni A.Novel functions for the anaphase-promoting complex in neurobiology[J].Semin Cell Dev Biol,2011,22(6):586-594.
[2] Zhang Y,Yao W,Qiu J,et al.The involvement of down-regulation of Cdh1-APC in hippocampal neuronal apoptosis after global cerebral ischemia in rat[J].Neurosci Lett,2011,505(2):71-75.
[3] McCarthy K D,de Vellis J.Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue[J].J Cell Biol,1980,85(3):890-902.
[4] Lee W T,Hong S,Yoon S H,et al.Neuroprotective effects of agmatine on oxygen-glucose deprived primary-cultured astro-cytes and nuclear translocation of nuclear factor-kappa B[J].Brain Res,2009,1281(30):64-70.
[5] Rape M,Reddy S K,Kirschner M W.The processivity of multiubiquitination by the APC determines the order of substrate degradation[J].Cell,2006,124(1):89-103.
[6] Passmore L A,Barford D.Coactivator functions in a stoichiometric complex with anaphase-promoting complex/cyclosome to mediate substrate recognition[J].EMBO Rep,2005,6(9):873-878.
[7] Herrero-Mendez A,Almeida A,F(xiàn)ernandez E,et al.The bioenergetic and antioxidant status of neurons is controlled by continuous degradation of a key glycolytic enzyme by APC/CCdh1[J].Nat Cell Biol,2009,11(6):747-752.
[8] Bolanos J P,Almeida A,Moncada S.Glycolysis:a bioenergetic or a survival pathway?[J].Trends Biochem Sci,2010,35(3):145-149.
[9] Yalcin A,Telang S,Clem B,et al.Regulation of glucose metabolism by 6-phosphofructo-2-kinase/fructose-2,6-bisphosphatases in cancer[J].Exp Mol Pathol,2009,86(3):174-179.
[10] Turner D A,Adamson D C.Neuronal-astrocyte metabolic interactions:understanding the transition into abnormal astrocytoma metabolism[J].J Neuropathol Exp Neurol,2011,70(3):167-176.
[11] Huang X J,Zhang W P,Li C T,et al.Activation of CysLT receptors induces astrocyte proliferation and death after oxygen-glucose deprivation[J].Glia,2008,56(1):27-37.
[12] Liu Y,Wang Y,Cheng C,et al.A relationship between p27(kip1)and Skp2after adult brain injury:implications for glial proliferation[J].J Neurotrauma,2010,27(2):361-371.
[13] Wei W,Ayad N G,Wan Y,et al.Degradation of the SCF component Skp2in cell-cycle phase G1by the anaphase-promoting complex[J].Nature,2004,428(6979):194-198.
[14] 張雪,姚文龍,邱瑾,等.全腦缺血再灌注損傷大鼠海馬區(qū)Skp2的表達(dá)變化[J].華中科技大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2011,10(5):542-545.
華中科技大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2012年3期