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    HSV-TK逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞系建立及病毒滴度測(cè)定

    2011-11-21 01:15:12井宏宇錢東華吉林大學(xué)第一醫(yī)院呼吸內(nèi)科吉林長春3002
    中國老年學(xué)雜志 2011年16期
    關(guān)鍵詞:逆轉(zhuǎn)錄滴度細(xì)胞株

    李 洋 錢 明 井宏宇 錢東華 (吉林大學(xué)第一醫(yī)院呼吸內(nèi)科,吉林 長春 3002)

    HSV-TK逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞系建立及病毒滴度測(cè)定

    李 洋 錢 明1井宏宇 錢東華 (吉林大學(xué)第一醫(yī)院呼吸內(nèi)科,吉林 長春 130021)

    目的 建立HSV-TK逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞系并獲得高產(chǎn)病毒的細(xì)胞株。方法 將TK基因與逆轉(zhuǎn)錄表達(dá)載體PLEGFP-N1連接后轉(zhuǎn)染到包裝細(xì)胞PA317中,經(jīng)G418及熒光蛋白雙重篩選得到高產(chǎn)病毒的細(xì)胞株。結(jié)果 經(jīng)酶切鑒定成功構(gòu)建PlEGFP-N1-TK重組載體,含HSV-TK基因重組逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞PA317成功建立,經(jīng)病毒滴度測(cè)定獲得高產(chǎn)病毒的PA317/TK細(xì)胞株。結(jié)論 制備的重組病毒具有感染靶細(xì)胞的活性,為進(jìn)一步應(yīng)用HSV-TK基因進(jìn)行肺癌的自殺基因治療研究奠定基礎(chǔ)。

    HSV-TK;逆轉(zhuǎn)錄病毒;包裝細(xì)胞PA317

    惡性腫瘤的基因治療是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)領(lǐng)域的研究熱點(diǎn),其中自殺基因療法已經(jīng)成為極富希望的腫瘤治療新方法。自殺基因有多種,其中研究較多的主要有單純皰疹病毒胸苷激酶基因/丙氧鳥苷(HSV-TK/GCV)和大腸桿菌胞嘧啶脫氨酶基因/5-氟胞嘧啶(CD/5-FC)兩種自殺基因系統(tǒng)。本實(shí)驗(yàn)應(yīng)用HSV-TK/GCV系統(tǒng)將TK基因與逆轉(zhuǎn)錄表達(dá)載體PLEGFP-N1連接后轉(zhuǎn)染到包裝細(xì)胞PA317中,經(jīng)篩選得到高產(chǎn)病毒的細(xì)胞株,為HSV-TK/GCV自殺基因系統(tǒng)治療肺癌奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 載體、菌種和細(xì)胞株 pGEM-5Zf-HSV-TK,日本東京大學(xué)醫(yī)學(xué)部蘇肅博士慧贈(zèng);PLEGFP-N1,吉林大學(xué)第一醫(yī)院中心研究室保存;PA317細(xì)胞,購自Clontech公司;小鼠成纖維細(xì)胞(NIH3T3)細(xì)胞,購自中國科學(xué)院細(xì)胞庫;大腸桿菌DH5α,由東北師范大學(xué)遺傳病研究所實(shí)驗(yàn)室保存。

    1.1.2 主要試劑 脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑盒,凱基生物公司;高純度質(zhì)粒提取試劑盒,TIANGE公司;DNA片段凝膠回收試劑盒、T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶、DNA-Marker,TaKaRa公司;DNA測(cè)序,上海生工生物技術(shù)有限公司。

    1.1.3 主要試劑的配制 LB液體培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g/L、酵母抽提物5 g/L、NaCl 10 g/L、pH7.0;LA液體培養(yǎng)基:在LB培養(yǎng)基中加入氨芐青霉素80 μg/ml。LB平板:LB培養(yǎng)基中按15 g/L濃度加入瓊脂粉;LA平板:LA培養(yǎng)基中按15 g/L濃度加入瓊脂粉;以上均需高壓滅菌(15磅、20 min)。溶液Ⅰ:25 mmol/L Tris-Cl(pH 8.0),10 mmol/L EDTA.2Na(pH 8.0),高壓滅菌30 min,4℃冰箱中備用;溶液Ⅱ:0.2 mol/L NaOH,10%十二烷基硫酸鈉(SDS),室溫保存,現(xiàn)用現(xiàn)配(0.2 mol/L,1%為終濃度);溶液Ⅲ:5 mol/L乙酸鉀 300 ml,冰醋酸57.5 ml,無菌水142.5 ml,室溫下混勻,4℃冰箱中備用。

    1.1.4 主要儀器 CO2培養(yǎng)箱,SANYO日本;高速低溫離心機(jī)、PCR儀,美國Bio-Rad公司;DYY-Ⅲ穩(wěn)亞穩(wěn)流電泳儀、電泳槽,美國Bio-Rad公司;凝膠成像系統(tǒng),美國IBM公司;ZF型紫外透射反射分析儀、GNP型隔水式恒溫培養(yǎng)箱,上海精宏實(shí)驗(yàn)技術(shù)有限公司;快速恒溫?cái)?shù)顯水箱,常州國華電器有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 真核表達(dá)載體pLEGFP-N1-TK的構(gòu)建與鑒定 將載體pGEM-5Zf-HSV-TK、PLEGFP-N1 1 μl加入一管已制備好的感受態(tài)細(xì)胞中〔1,2〕進(jìn)行細(xì)菌轉(zhuǎn)化;含有 pGEM-5Zf-HSV-TK、PLEGFPN1轉(zhuǎn)化細(xì)菌大量培養(yǎng)及質(zhì)粒的提取與純化;質(zhì)粒的提取與純化,按照試劑盒說明操作。對(duì)pLEGFP-N1和pGEM-5Zf-HSVTK質(zhì)粒DNA用BglⅡ和HindⅢ分別進(jìn)行雙酶切,酶切后的plEGFP質(zhì)粒和目的DNA片段TK按1∶5摩爾比進(jìn)行連接,反應(yīng)體系10 μl:T4 DNA 連接酶1 μl,16 ℃ 過夜反應(yīng)。將連接產(chǎn)物進(jìn)行轉(zhuǎn)化和篩選,之后進(jìn)行重組載體的提取和鑒定,得到pLEGFP-N1-TK并進(jìn)行重組質(zhì)粒DNA的大量提取與純化。

    1.2.2 PLEGFP-N1-TK重組質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染、克隆細(xì)胞株的轉(zhuǎn)移和擴(kuò)增 用Lipofectamine2000將PLEGFP-N1-TK重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染PA317細(xì)胞中,G418和倒置熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白雙重篩選;將篩選出的克隆細(xì)胞株轉(zhuǎn)移并擴(kuò)增,轉(zhuǎn)移的細(xì)胞克隆生長相互融合達(dá)80%時(shí),用胰酶消化后,將其轉(zhuǎn)移入25 ml培養(yǎng)瓶中繼續(xù)培養(yǎng),維持G418濃度在300 μg/ml。待細(xì)胞生長良好后,挑取生長良好的細(xì)胞株進(jìn)行傳代擴(kuò)增,用于病毒滴度測(cè)定。提取PA317和PA317/TK細(xì)胞DNA,用PCR檢測(cè)HSVTK基因整合情況。

    1.2.3 重組逆轉(zhuǎn)錄病毒滴度的測(cè)定 取對(duì)數(shù)生長期的NIH3T3細(xì)胞,加含10%的小牛血清高清DMEM培養(yǎng)液,調(diào)整細(xì)胞濃度為2×105/ml,按1 ml/孔加入24孔板中,37℃ 5%CO2培養(yǎng)至細(xì)胞達(dá)60%融合。將收集到的含HSV-TK基因PA317 克隆細(xì)胞的病毒上清液分別作 10-1,10-2,10-3,10-4倍稀釋;倒去NIH3T3細(xì)胞培養(yǎng)孔內(nèi)液體,分別吸取1.5 ml稀釋的病毒液(含polybrene 8 μg/ml)加入培養(yǎng)孔內(nèi),不同稀釋度病毒各加 2孔,置 37℃,5%CO2條件下培養(yǎng) 3 d;更換含800 μg/ml G418的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)7~10 d,其間每3~4 d換液一次。未感染病毒的NIH3T3細(xì)胞在加入等量的G418后,一般第3~5天開始死亡,第7~10天基本完全死亡;而感染病毒的NIH3T3細(xì)胞仍有細(xì)胞存活,并逐漸會(huì)有新的細(xì)胞開始生長。約2 w細(xì)胞克隆基本完成;統(tǒng)計(jì)細(xì)胞克隆數(shù),計(jì)算病毒滴度。

    病毒滴度(CFU/ml)=2瓶細(xì)胞克隆數(shù)的平均數(shù)×病毒稀釋液倍數(shù)(其中CFU為colony forming units)。

    2 結(jié)果

    2.1 重組載體pLEGFP-TK構(gòu)建 將pLEGFP-N1質(zhì)粒和pGEM-5Zf-HSV-TK分別以HindⅢ和BglⅡ進(jìn)行酶切,經(jīng)回收純化和連接反應(yīng),構(gòu)建成功PlEGFP-N1-TK重組載體,行凝膠電泳。見圖1,圖2。

    2.2 重組載體pLEGFP-N1-TK的酶切鑒定結(jié)果 重組質(zhì)粒分別進(jìn)行HindⅢ和BglⅡ雙酶切,將酶切產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,在紫外燈下觀察,結(jié)果在預(yù)期位置出現(xiàn)陽性條帶與實(shí)驗(yàn)預(yù)想一致。見圖3。

    2.3 含HSV-TK基因重組逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞PA317的建立

    用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法將載體pLEGFP-N1-TK導(dǎo)入PA317細(xì)胞,用400 μg/ml的G418篩選2 d后,細(xì)胞開始死亡;在4~5 d內(nèi)死亡達(dá)高峰;5 d后有少數(shù)細(xì)胞貼壁生長;1 w后細(xì)胞逐漸形成陽性克隆細(xì)胞團(tuán);培養(yǎng)14 d后,篩選得到陽性克隆細(xì)胞。挑取其中生長較好的抗G418及帶有綠色熒光的細(xì)胞克隆,再用含G418 800 μg/ml的低糖DMEM培養(yǎng)液進(jìn)一步選擇培養(yǎng),最后形成的陽性克隆細(xì)胞命名為PA317/TK。見圖4,圖5。

    2.4 PCR檢測(cè)HSV-TK基因在PA317中整合情況 經(jīng)PCR鑒定在PA317/TK細(xì)胞中檢測(cè)到完整的約1.1 kb TK基因,而未轉(zhuǎn)染TK基因的PA317細(xì)胞沒有檢測(cè)到TK基因。

    2.5 PA317/TK細(xì)胞產(chǎn)病毒的滴度測(cè)定 用最終濃度800 μg/ml的G418篩選到的PA317/TK擴(kuò)大培養(yǎng)后,收集病毒液,感染NIH3T3測(cè)定病毒滴度,結(jié)果為4×104cfu/ml。

    圖1 pLEGFP質(zhì)粒雙酶切圖

    圖2 pGEM-5Zf-HSV-TK雙酶切

    圖3 重組載體pLEGFP-N1-TK雙酶切結(jié)果

    圖4 PA317/TK細(xì)胞在熒光纖維鏡下表現(xiàn)(×400)

    圖5 經(jīng)篩選形成陽性克隆細(xì)胞團(tuán)(×400)

    3 討論

    在目前的眾多基因治療實(shí)驗(yàn)中,逆轉(zhuǎn)錄病毒載體是被廣泛采用的載體之一〔3〕,經(jīng)過人工構(gòu)建去除其中的3個(gè)功能基因(pol,gag,env),保留了其中的長末端重復(fù)序列(LTR)和包裝序列ψ的復(fù)制缺陷型病毒,因此它不具備感染細(xì)胞的能力。它必需與一種經(jīng)過改造的含有輔助病毒基因組的包裝細(xì)胞相互重組,將病毒RNA包裝進(jìn)去,才產(chǎn)生具有感染能力的完整病毒顆粒,此病毒顆粒能感染靶細(xì)胞,但不能復(fù)制〔4〕。PA317是逆轉(zhuǎn)錄病毒的包裝細(xì)胞,其內(nèi)有逆轉(zhuǎn)錄病毒的輔助病毒基因組。因此,本文通過把帶有TK基因的逆轉(zhuǎn)錄病毒載體PLEGFP-N1導(dǎo)入PA317中,建立含HSV-TK重組逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞。

    逆轉(zhuǎn)錄病毒載體PLEGFP-N1包含一個(gè)選擇標(biāo)記新霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶基因(neo),此外還有一個(gè)加強(qiáng)綠色熒光蛋白基因(green fluorescent protein,GFP)。當(dāng)PLEGFP-N1-TK導(dǎo)入PA317后通過G418及GFP篩選得到細(xì)胞陽性克隆,在抗生素G418存在的培養(yǎng)基中,沒有被導(dǎo)入PLEGFP-N1-TK的PA317細(xì)胞逐漸死亡,而導(dǎo)入PLEGFP-N1-TK的PA317細(xì)胞存活并逐漸生長,從而得到陽性細(xì)胞克隆PA317/TK。在G418篩選之前應(yīng)做預(yù)實(shí)驗(yàn),找出G418最適宜濃度,在最初篩選時(shí)應(yīng)注意G418的濃度不能過高,待細(xì)胞生長穩(wěn)定,neo基因在細(xì)胞中的表達(dá)達(dá)到一定程度時(shí)再改換高濃度的G418,以維持細(xì)胞克隆的篩選。本實(shí)驗(yàn)G418的初始篩選濃度為400 μg/ml,維持細(xì)胞克隆篩選濃度為800 μg/ml。由于逆轉(zhuǎn)錄病毒載體PLEGFP-N1含有GFP,所以通過倒置的熒光纖維鏡觀看被轉(zhuǎn)染的PA317發(fā)出綠色熒光來進(jìn)一步篩選陽性細(xì)胞克隆〔5〕。再通過病毒滴定度的測(cè)定挑選出產(chǎn)病毒較高的細(xì)胞株。

    本實(shí)驗(yàn)將HSV-TK基因克隆至逆轉(zhuǎn)錄病毒表達(dá)載體PLEGFP-N1,經(jīng)測(cè)TK基因序列正確后,用脂質(zhì)體法將重組質(zhì)粒導(dǎo)入逆轉(zhuǎn)錄病毒包裝細(xì)胞PA317,包裝后篩選出一株產(chǎn)感染性重組病毒細(xì)胞系PA317/TK,收集PA317/TK細(xì)胞培養(yǎng)上清液,再感染NI3T3細(xì)胞,測(cè)得病毒滴定度為4×104cfu/ml,從而證實(shí)了本實(shí)驗(yàn)制備的重組病毒具有感染靶細(xì)胞的活性,為進(jìn)一步應(yīng)用HSV-TK基因進(jìn)行肺癌的自殺基因治療研究奠定基礎(chǔ)。

    1 Culver KW,Ram Z,Wallbridge S,et al.In vivo gene transfer with retroviral vector-producer cells for treatment of experimental brain tumors〔J〕.Science,1992;256(5063):1550-2.

    2 Vitek JA.Reliability of the“kiss of death”method for evaluation of intercellular communication:effect of cloning and culture technique〔J〕.Folia Biol(Praha),1989;35(3):171-6.

    3 Jolly D.Viral vector systems for gene therapy〔J〕.Cancer Gene Ther,1994;1(1):51-64.

    4 Reeves L,Smucker P,Cornetta K.Packaging cell line characteristics and optimizing retroviral vector titer:the National Gene Vector Laboratory Experience〔J〕.Hum Gene Ther,2000;11(15):2093-103.

    5 Chalfie M,Tu Y,Euskirchen G,et al.Green fluorescent protein as a marker for gene expression〔J〕.Science,1994;263(5148):802-5.

    Q344+.13

    A

    1005-9202(2011)16-3101-03

    吉林省衛(wèi)生廳資助項(xiàng)目(No.1021Z031);吉林大學(xué)研究生創(chuàng)新基金(No.醫(yī)學(xué)704053)

    1 吉林大學(xué)口腔醫(yī)院

    錢東華(1965-),女,副教授,碩士生導(dǎo)師,主要從事肺癌及肺部感染性疾病研究。

    李 洋(1979-),女,主治醫(yī)師,博士,主要從事肺癌和哮喘的研究。

    〔2011-01-29收稿 2011-03-25修回〕

    (編輯 袁左鳴/徐 杰)

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