王 堅(jiān) 趙 旦 李 潔 王國(guó)洪 胡蘭萍 邵加慶 顧 萍 杜 宏 王揚(yáng)天
摘要:目的:探討大鼠經(jīng)實(shí)驗(yàn)性水上漂浮、高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后血清皮質(zhì)酮(CORT)、促腎上腺皮質(zhì)激素(ACTH)以及白細(xì)胞介素1β、IL-6(IL-1β、IL-6)的變化及垂體ACTH陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞的變化。方法:將大鼠隨機(jī)分為水上漂浮組(A組)、水上漂浮并高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)組(B組)、對(duì)照組(C組),每組12只,均為10周齡雄性大鼠。A組在人工造浪水池中接受連續(xù)180min的水上漂浮,并加以貓恐嚇;B組按A組給予如前180min水上漂浮后繼續(xù)給予連續(xù)奔跑120min;C組除與A組、B組同時(shí)禁食、水外不給任何應(yīng)激。實(shí)驗(yàn)結(jié)束后測(cè)定CORT、ACTH及IL-1β、6水平及行垂體ACTH陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞的免疫組化分析。結(jié)果:與C組相比,A組CORT水平稍增高,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),而B組CORT的升高具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);與A組相比,B組CORT亦升高(P<0.01)。與C組相比,A組血清ACTH水平無(wú)改變(P>0.05),而B組ACTH降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.033)。與C組相比,A組IL-6升高(P=0.023),B組IL-1β、IL-6均升高(P=0.031,0.022)。免疫組化染色示A、B組垂體ACTH表達(dá)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量皆減少(P皆<0.05),但A、B組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)論:急性心理應(yīng)激可激活下丘腦-垂體-腎上腺軸,并導(dǎo)致細(xì)胞因子IL-6血濃度增加,在心理應(yīng)激基礎(chǔ)上予以單次大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)可進(jìn)一步增加大鼠應(yīng)激反應(yīng)的程度,致CORT以及細(xì)胞因子IL-1β、6血濃度進(jìn)一步升高,而ACTH受抑,且垂體ACTH陽(yáng)性細(xì)胞也相應(yīng)減少。
關(guān)鍵詞:大鼠;水上漂??;高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng);垂體腎上腺軸;白細(xì)胞介素
中圖分類號(hào):G804.7 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1004-4590(2009)02-0068-04
下丘腦-垂體-腎上腺軸(hypothalamic-pituitary-adrenal axis ,HPA軸)是與應(yīng)激關(guān)系最為密切的內(nèi)分泌軸,無(wú)論是心理性應(yīng)激還是運(yùn)動(dòng)應(yīng)激對(duì)HPA軸都有影響,表現(xiàn)為促腎上腺皮質(zhì)激素(adrenocorticotrophic hormone,ACTH)和皮質(zhì)醇水平的改變。HPA軸的激活或抑制主要與心理性應(yīng)激或運(yùn)動(dòng)應(yīng)激的時(shí)間和強(qiáng)度有關(guān)。一般說(shuō)來(lái),急性應(yīng)激可激活HPA軸,但慢性應(yīng)激對(duì)HPA軸有抑制作用。細(xì)胞因子是一種具有調(diào)節(jié)細(xì)胞功能的高活性小分子蛋白質(zhì),能調(diào)節(jié)免疫細(xì)胞的功能,與應(yīng)激的聯(lián)系亦十分密切。近年來(lái)對(duì)應(yīng)激的研究逐步發(fā)展,形成了以心理-神經(jīng)內(nèi)分泌-免疫網(wǎng)絡(luò)為基礎(chǔ)之跨學(xué)科概念。本文將急性心理應(yīng)激、高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)結(jié)合起來(lái),旨在觀察急性心理應(yīng)激及急性心理應(yīng)激與大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)結(jié)合后對(duì)HPA軸和部分細(xì)胞因子的影響。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與分組
于大鼠跑臺(tái)適應(yīng)性訓(xùn)練3天,剔除無(wú)法進(jìn)行跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)大鼠后成功篩選雄性Sprague-Dawley大鼠36只,鼠齡10周,體重180±20g(南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科提供)。試驗(yàn)前在清潔級(jí)動(dòng)物飼養(yǎng)中心以標(biāo)準(zhǔn)嚙齒類動(dòng)物維持期飼料適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,自由進(jìn)食和飲水,室內(nèi)溫度為20-26°C,濕度50%-70%,自然晝夜節(jié)律光照。大鼠隨機(jī)分為三組:水上漂浮組(A組)、水上漂浮并高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)組(B組)、對(duì)照組(C組),每組均為12只。
1.2 實(shí)驗(yàn)性水上漂浮、高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)模型的建立
實(shí)驗(yàn)性水上漂浮主要將大鼠置于人工造浪池中進(jìn)行:采用敞開(kāi)式塑料泡沫漂浮器(1×0.6×0.3m),將漂浮器置于1.8m直徑的圓形造浪池中,調(diào)節(jié)造浪強(qiáng)度至漂浮器產(chǎn)生±15°的搖擺度。將實(shí)驗(yàn)鼠置于漂浮器中,并由間隔0.75m的土貓進(jìn)行恐嚇。期間主要是綜合采用Adamec等提出的土貓恐嚇應(yīng)激模型[1]及新環(huán)境應(yīng)激模型以形成急性心理應(yīng)激。高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)模型采用大鼠跑臺(tái)[2],實(shí)驗(yàn)前篩選大鼠的適應(yīng)性訓(xùn)練負(fù)荷為坡度0%,速度15m/min,歷時(shí)10min,共3天;實(shí)驗(yàn)時(shí)負(fù)荷為5%坡度,速度26.8m/min,連續(xù)奔跑120min,跑程為3216m。
1.3 實(shí)驗(yàn)過(guò)程
晨8時(shí)將A組與B組大鼠進(jìn)行歷時(shí)180min的水上漂浮,并給予土貓恐嚇,之后A組大鼠結(jié)束實(shí)驗(yàn)而B組大鼠繼續(xù)進(jìn)行持續(xù)120min的跑臺(tái)奔跑。按實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)若跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)時(shí)大鼠提前出現(xiàn)力竭癥狀,即不能堅(jiān)持負(fù)荷跑速,滯留跑道后1/3處達(dá)3次以上,則提前處死。但本實(shí)驗(yàn)中無(wú)提前處死大鼠。
1.4 取樣和測(cè)試
實(shí)驗(yàn)結(jié)束,立即用水合氯醛腹腔麻醉,心臟靜脈竇取血5ml,制備血清待測(cè)皮質(zhì)酮(Corticosterone,CORT)、ACTH、白細(xì)胞介素1β、IL-6(Interleukin1β、6, IL-1β、IL-6)水平。測(cè)試均采用放射免疫分析法。ACTH、IL-1β、IL-6試劑盒由北京福瑞生物工程公司提供,大鼠CORT試劑盒由美國(guó)DSL公司提供。垂體ACTH陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞免疫組化采用EnVision方法。
1.5 統(tǒng)計(jì)與分析
所有數(shù)值均以“均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差”(mean±SD)表示, 統(tǒng)計(jì)分析使用SPSS11.0版軟件完成,。三組間比較采用One-Way ANOVA,組間多重比較采用LSD-t檢驗(yàn)。垂體ACTH細(xì)胞免疫組化每張切片取5個(gè)視野,以陽(yáng)性細(xì)胞所占百分比行秩和檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果
2.1 一般情況
C組大鼠神態(tài)安靜,皮毛光潔整齊,眼睛有神;A組、B組大鼠在急性心理應(yīng)激階段出現(xiàn)皮毛聳立,雙上肢離地直立現(xiàn)象顯著增多;B組大鼠進(jìn)行高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練后表現(xiàn)為神態(tài)倦怠、眼神黯淡無(wú)光、呼吸深急幅度大。
2.2 血清ACTH和CORT水平
與C組相比,A組CORT水平略增高,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);而B組CORT的升高具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);且與A組相比,B組CORT水平亦升高(P<0.01)。(圖1)
與C組相比,A組血清ACTH水平無(wú)改變(P>0.05),而B組ACTH降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.033)。(圖2)
2.3 血清IL-1β、IL-6水平
與C組相比,A組IL-1β無(wú)顯著改變(P>0.05),而IL-6升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.023);B組IL-1β、IL-6均升高(P=0.031,0.022)。(圖3)
2.4 垂體ACTH表達(dá)陽(yáng)性細(xì)胞免疫組化
光鏡下,各組大鼠垂體組織切片免疫組化染色均可見(jiàn)ACTH陽(yáng)性細(xì)胞:多為不規(guī)則形和星形,也可為圓形,彌漫分布于腺垂體遠(yuǎn)側(cè)部,陽(yáng)性物質(zhì)定位于細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞膜,為棕褐色,高倍鏡下呈顆粒狀。
C組,ACTH陽(yáng)性細(xì)胞染色深,為強(qiáng)陽(yáng)性反應(yīng),數(shù)量約占總細(xì)胞數(shù)的30%~40%;A組、B組ACTH陽(yáng)性細(xì)胞染色較深,數(shù)量較C組相比顯示減少(P<0.05),占細(xì)胞總數(shù)的5%~20%,但A、B組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。(圖4)
3 討 論
目前用以評(píng)價(jià)應(yīng)激程度的指標(biāo)多采用皮質(zhì)酮(鼠)、皮質(zhì)醇(人)、ACTH??偟膩?lái)說(shuō),下丘腦的室旁核是HPA軸活動(dòng)的直接控制部位[3]。在受到刺激時(shí),室旁核的小細(xì)胞神經(jīng)元分泌促腎上腺皮質(zhì)激素釋放激素和精氨酸加壓素,經(jīng)垂體門脈系統(tǒng)到達(dá)垂體前葉,刺激垂體分泌ACTH,隨血流到達(dá)腎上腺,刺激腎上腺皮質(zhì)合成和分泌糖皮質(zhì)激素。
心理應(yīng)激對(duì)HPA軸的影響與應(yīng)激作用的時(shí)間有關(guān)。一般應(yīng)激發(fā)生后5-10秒,促腎上腺皮質(zhì)激素分泌,數(shù)分鐘后,血漿中糖皮質(zhì)激素水平開(kāi)始升高,分泌高峰在應(yīng)激后30分鐘和1小時(shí)出現(xiàn)。因此,不同時(shí)程的應(yīng)激引發(fā)HPA軸的變化也有所不同。胡等指出:短期、急性應(yīng)激刺激可使大鼠皮質(zhì)酮水平顯著升高,在10分鐘內(nèi)增加8-10倍[4]。而Zarkovic的研究表明,長(zhǎng)期心理應(yīng)激可抑制皮質(zhì)激素的釋放[3]。本研究觀察到急性心理應(yīng)激后大鼠出現(xiàn)皮毛聳立、雙上肢離地直立等探索性行為現(xiàn)象顯著增多,表明大鼠處于焦慮狀態(tài)[5],但CORT水平的升高及ACTH水平的下降均不顯著,有觀察表明血清皮質(zhì)酮水平與應(yīng)激強(qiáng)度呈顯著的正相關(guān)[6],據(jù)此亦能說(shuō)明本研究中的水上漂浮并貓恐嚇作為急性心理應(yīng)激其程度仍較輕。
運(yùn)動(dòng)本身作為一種軀體應(yīng)激原可造成機(jī)體各種生理生化和行為的改變,有時(shí)甚至?xí)纬筛鞣N新的應(yīng)激原反作用于個(gè)體。本研究采用的跑臺(tái)模型是一種經(jīng)典的大鼠運(yùn)動(dòng)模型。根據(jù)Bedford最大攝氧量(VO2max)與運(yùn)動(dòng)強(qiáng)度的關(guān)聯(lián)分析[7]以及勞動(dòng)強(qiáng)度的劃分方法:中等強(qiáng)度勞動(dòng)為40%VO2max,重度勞動(dòng)為64%VO2max,極重度勞動(dòng)為70%VO2max,本研究采取的是單次大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)模型,最大攝氧量為74.3%±2.9%,符合本實(shí)驗(yàn)所需。
一般認(rèn)為,運(yùn)動(dòng)要造成HPA軸的激活,需要達(dá)到一定的強(qiáng)度閾值和時(shí)間閾值[8],強(qiáng)度閾值激發(fā)了激素的反應(yīng)速度,時(shí)間閾值則決定激素的釋放總量[9]。Luger指出,當(dāng)運(yùn)動(dòng)強(qiáng)度達(dá)到50%~60%VO2max強(qiáng)度時(shí),即可導(dǎo)致強(qiáng)度依賴性HPA軸的激活,表現(xiàn)為ACTH和皮質(zhì)酮的升高[10]。Wittert也認(rèn)為在無(wú)氧閾以上的急性大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)可激活HPA軸[11]。然而,當(dāng)長(zhǎng)期劇烈運(yùn)動(dòng)或力竭運(yùn)動(dòng)時(shí),皮質(zhì)酮水平往往下降,尤其在實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中更為常見(jiàn)。對(duì)此的解釋主要有兩類:有學(xué)者認(rèn)為力竭運(yùn)動(dòng)時(shí)機(jī)體糖原消耗很大,大量蛋白質(zhì)分解為氨基酸進(jìn)行糖異生,此時(shí)HPA軸受到抑制,腎上腺皮質(zhì)激素耗竭;但更多的學(xué)者認(rèn)為激烈運(yùn)動(dòng)中血漿CORT下降是“機(jī)體對(duì)能源致命性消耗所表現(xiàn)的一種防御性反應(yīng)”,此時(shí)腎上腺并未衰竭,可能是通過(guò)神經(jīng)調(diào)節(jié)使垂體減少了ACTH的釋放,導(dǎo)致皮質(zhì)酮分泌減少[12]。本研究中,B組皮質(zhì)酮水平較A組進(jìn)一步明顯升高,提示單次高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)對(duì)心理應(yīng)激大鼠可產(chǎn)生更大程度的應(yīng)激,與尹劍春等[13]的中小負(fù)荷運(yùn)動(dòng)對(duì)心理應(yīng)激后的大鼠皮質(zhì)酮釋放影響之結(jié)果截然不同。而本研究中ACTH的降低,推測(cè)可能與以下因素有關(guān):①相比于皮質(zhì)酮,ACTH對(duì)應(yīng)激的反應(yīng)更快速,而半衰期卻較短,故其分泌峰值出現(xiàn)在運(yùn)動(dòng)后的即刻,早于皮質(zhì)酮;②在HPA軸中,皮質(zhì)酮的負(fù)反饋調(diào)節(jié)可使ACTH的分泌受到抑制;③可能存在其他ACTH分泌的抑制機(jī)制。
垂體免疫組化檢查結(jié)果表明ACTH陽(yáng)性染色在不同大鼠間有較大差異,A組、B組大鼠ACTH陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)較C組減少。Polkowska的研究提示大鼠在經(jīng)歷20min/h、共4h的足底電擊以形成急性應(yīng)激后,垂體ACTH、β-內(nèi)啡肽、PRL的免疫組化染色反應(yīng)顯著降低;而當(dāng)大鼠經(jīng)歷20min/h、連續(xù)9h、共3天的長(zhǎng)時(shí)間應(yīng)激后,ACTH、β-內(nèi)啡肽的分泌活性增加,并表現(xiàn)為細(xì)胞的肥大和增生[29]。Kaur的研究也指出,大鼠在經(jīng)歷連續(xù)7天的高原低氧應(yīng)激后,ACTH陽(yáng)性細(xì)胞出現(xiàn)顯著的增生和肥大,且ACTH分泌增加[30]。本研究屬于急性應(yīng)激反應(yīng),垂體的免疫組化結(jié)果與Polkowska的結(jié)果以及血液中ACTH水平下降相吻合。說(shuō)明經(jīng)歷急性心理應(yīng)激和大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后,垂體ACTH分泌功能亦表現(xiàn)為受抑反應(yīng)。
應(yīng)激對(duì)免疫功能的影響可表現(xiàn)為影響細(xì)胞因子的級(jí)聯(lián)反應(yīng)。IL-1β和IL-6能啟動(dòng)并放大應(yīng)激后的急性期反應(yīng),促進(jìn)肝細(xì)胞源性急性期蛋白如C反應(yīng)蛋白的合成[14]。既往的研究認(rèn)為急性心理應(yīng)激能引起IL-1β的升高[15],而IL-1亦能作用于HPA軸致皮質(zhì)醇分泌增高[16],從而通過(guò)糖皮質(zhì)激素受體及干擾NF-κB的激活來(lái)抑制細(xì)胞因子諸如IL-2、IL-4等的進(jìn)一步生成而調(diào)控免疫功能[17]。Heinz的研究表明急性劇烈心理應(yīng)激下過(guò)度增高的皮質(zhì)醇并不會(huì)造成IL-1水平的下降[18],Reyes的研究也提示IL-6不受增高的皮質(zhì)酮所抑制[19]。但I(xiàn)L-6對(duì)心理應(yīng)激的反應(yīng)是極為迅速的[20, 21],在動(dòng)物試驗(yàn)中,足底電擊、束縛應(yīng)激等心理應(yīng)激都能使IL-6水平升高[22, 23],在人體試驗(yàn)中也有類似結(jié)果[24]。Li等提出IL-6的增高可能與急性心理應(yīng)激后雌二醇水平增高,從而促進(jìn)外周血單核細(xì)胞IL-6的分泌有關(guān)[25]。運(yùn)動(dòng)對(duì)細(xì)胞因子分泌亦有影響。運(yùn)動(dòng)可引起細(xì)胞因子IL-1β、IL-6濃度增加[20]。其機(jī)制可能與以下因素有關(guān):(1)運(yùn)動(dòng)過(guò)程中局部骨骼肌的損傷[26];(2)外周血單核細(xì)胞中各細(xì)胞亞群發(fā)生變化,分泌IL-1、IL-6的CD4+細(xì)胞比例增高[27];(3)運(yùn)動(dòng)過(guò)程中運(yùn)動(dòng)器官與內(nèi)臟器官之間血液重新分配,導(dǎo)致腸粘膜缺血,腸腔中內(nèi)毒素移入循環(huán)系統(tǒng),進(jìn)而觸發(fā)單核巨嗜細(xì)胞合成與釋放細(xì)胞因子[28]。本次研究中,急性心理應(yīng)激后,IL-1僅略升高但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,IL-6顯著增高,說(shuō)明IL-6對(duì)心理應(yīng)激的反應(yīng)更為迅速。在繼續(xù)經(jīng)歷高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后,IL-1、IL-6均顯著增高,表明高強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)可引起IL-1、IL-6的增高。由于免疫網(wǎng)絡(luò)本身很復(fù)雜,神經(jīng)—內(nèi)分泌-免疫網(wǎng)絡(luò)就更復(fù)雜,應(yīng)激所引發(fā)的免疫功能改變及其與HPA軸的變化之間的關(guān)系尚需進(jìn)一步研究探討。
致謝
感謝南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科提供清潔級(jí)實(shí)驗(yàn)大鼠,感謝江蘇省體育科學(xué)研究所武露凌主任指導(dǎo)動(dòng)物試驗(yàn)并提供大鼠跑臺(tái),感謝南京軍區(qū)南京總醫(yī)院病理科周曉軍、吳波、鄭曉剛主任提供實(shí)驗(yàn)條件并指導(dǎo)免疫組化檢測(cè)。
參考文獻(xiàn):
[1] [ZK(#]Adamec R, S Walling,P Burton. Long-lasting, selective, anxiogenic effects of feline predator stress in mice. Physiol Behav, 2004, 83(3):401-410.
[2] Chen JX, X Zhao, GX Yue, et al. Influence of acute and chronic treadmill exercise on rat plasma lactate and brain NPY, L-ENK, DYN A1-13. Cell Mol Neurobiol, 2007, 27(1):1-10.
[3] Zarkovic M, E Stefanova, J Ciric, et al. Prolonged psychological stress suppresses cortisol secretion. Clin Endocrinol (Oxf), 2003, 59(6):811-816.
[4] 胡健饒,許寧一. 應(yīng)激對(duì)神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng)影響的研究進(jìn)展. 杭州師范學(xué)院學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2002, 1(2):65.
[5] Rybkin, II, Y Zhou, J Volaufova, et al. Effect of restraint stress on food intake and body weight is determined by time of day. Am J Physiol, 1997, 273(5 Pt 2):R1612-1622.
[6] Weinstein RS, RW Nicholas,SC Manolagas. Apoptosis of osteocytes in glucocorticoid-induced osteonecrosis of the hip. J Clin Endocrinol Metab, 2000, 85(8):2907-2912.
[7] Bedford TG, CM Tipton, NC Wilson, et al. Maximum oxygen consumption of rats and its changes with various experimental procedures. J Appl Physiol, 1979, 47(6):1278-1283.
[8] Raastad T, T Bjoro,J Hallen. Hormonal responses to high- and moderate-intensity strength exercise. Eur J Appl Physiol, 2000, 82(1-2):121-128.
[9] Viru A. Plasma hormones and physical exercise. Int J Sports Med, 1992, 13(3):201-209.
[10]A[ZK(#]Luger A, PA Deuster, SB Kyle, et al. Acute hypothalamic-pituitary-adrenal responses to the stress of treadmill exercise. Physiologic adaptations to physical training. N Engl J Med, 1987, 316(21):1309-1315.
[11]AWittert GA, JH Livesey, EA Espiner, et al. Adaptation of the hypothalamopituitary adrenal axis to chronic exercise stress in humans. Med Sci Sports Exerc, 1996, 28(8):1015-1019.
[12]A楊錫讓. 實(shí)用運(yùn)動(dòng)生理學(xué)(修訂版). 北京:北京體育大學(xué)出版社, 1998, 167-168.
[13]A尹劍春,顏軍. 運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)心理應(yīng)激大鼠神經(jīng)內(nèi)分泌免疫若干指標(biāo)的影響. 北京體育大學(xué)學(xué)報(bào), 2006, 29(1):70-73.
[14]ACohen MC,S Cohen. Cytokine function: a study in biologic diversity. Am J Clin Pathol, 1996, 105(5):589-598.
[15]ADobbin JP, M Harth, GA McCain, et al. Cytokine production and lymphocyte transformation during stress. Brain Behav Immun, 1991, 5(4):339-348.
[16]AMaes M, E Bosmans, HY Meltzer, et al. Interleukin-1 beta: a putative mediator of HPA axis hyperactivity in major depression? Am J Psychiatry, 1993, 150(8):1189-1193.
[17]AMoynihan JA, TA Callahan, SP Kelley, et al. Adrenal hormone modulation of type 1 and type 2 cytokine production by spleen cells: dexamethasone and dehydroepiandrosterone suppress interleukin-2, interleukin-4, and interferon-gamma production in vitro. Cell Immunol, 1998, 184(1):58-64.
[18]AHeinz A, D Hermann, MN Smolka, et al. Effects of acute psychological stress on adhesion molecules, interleukins and sex hormones: implications for coronary heart disease. Psychopharmacology (Berl), 2003, 165(2):111-117.
[19]AReyes TM,CL Coe. Resistance of central nervous system interleukin-6 to glucocorticoid inhibition in monkeys. Am J Physiol, 1998, 275(2 Pt 2):R612-618.
[20]AGoebel MU, PJ Mills, MR Irwin, et al. Interleukin-6 and tumor necrosis factor-alpha production after acute psychological stress, exercise, and infused isoproterenol: differential effects and pathways. Psychosom Med, 2000, 62(4):591-598.
[21]ABrydon L, S Edwards, V Mohamed-Ali, et al. Socioeconomic status and stress-induced increases in interleukin-6. Brain Behav Immun, 2004, 18(3):281-290.
[22]ANukina H, N Sudo, G Komaki, et al. The restraint stress-induced elevation in plasma interleukin-6 negatively regulates the plasma TNF-alpha level. Neuroimmunomodulation, 1998, 5(6):323-327.
[23]AZhou D, AW Kusnecov, MR Shurin, et al. Exposure to physical and psychological stressors elevates plasma interleukin 6: relationship to the activation of hypothalamic-pituitary-adrenal axis. Endocrinology, 1993, 133(6):2523-2530.
[24]ASteptoe A, G Willemsen, N Owen, et al. Acute mental stress elicits delayed increases in circulating inflammatory cytokine levels. Clin Sci (Lond), 2001, 101(2):185-192.
[25]ALi ZG, VA Danis,PM Brooks. Effect of gonadal steroids on the production of IL-1 and IL-6 by blood mononuclear cells in vitro. Clin Exp Rheumatol, 1993, 11(2):157-162.
[26]ABruunsgaard H, H Galbo, J Halkjaer-Kristensen, et al. Exercise-induced increase in serum interleukin-6 in humans is related to muscle damage. J Physiol, 1997, 499 ( Pt 3)(833-841.
[27]AHaahr PM, BK Pedersen, A Fomsgaard, et al. Effect of physical exercise on in vitro production of interleukin 1, interleukin 6, tumour necrosis factor-alpha, interleukin 2 and interferon-gamma. Int J Sports Med, 1991, 12(2):223-227.
[28]ABagby GJ, DE Sawaya, LD Crouch, et al. Prior exercise suppresses the plasma tumor necrosis factor response to bacterial lipopolysaccharide. J Appl Physiol, 1994, 77(3):1542-1547.
[29]APolkowska J,F Przekop. Immunocytochemical changes in hypothalamic and pituitary hormones after acute and prolonged stressful stimuli in the anestrous ewe. Acta Endocrinol (Copenh), 1988, 118(2):269-276.
[30]AKaur C, J Singh, CM Peng, et al. Upregulation of adrenocorticotrophic hormone in the corticotrophs and downregulation of surface receptors and antigens on the macrophages in the adenohypophysis following an exposure to high altitude. Neurosci Lett, 2002, 318(3):125-128.