劉廣鵬 張文杰 李宇琳 孫 劍 周 恒 崔 磊
長期體外培養(yǎng)對(duì)人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化潛能的影響
劉廣鵬 張文杰 李宇琳 孫 劍 周 恒 崔 磊
目的觀察體外長期培養(yǎng)對(duì)人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞(Human umbilical cord blood derived mesenchymal stem cells,UCB-MSCs)成骨分化潛能的影響,探討其作為組織工程骨種子細(xì)胞的可行性。方法流式細(xì)胞技術(shù)觀察長期體外培養(yǎng)的UCB-MSCs細(xì)胞表面抗原表達(dá)的變化規(guī)律,并通過Alizarin Red染色及堿性磷酸酶活性、骨鈣蛋白含量和鈣離子含量的檢測(cè)觀察長期體外培養(yǎng)對(duì)UCB-MSCs成骨特性的影響。結(jié)果體外長期傳代培養(yǎng)的UCB-MSCs能夠高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物,7代之前的細(xì)胞體外增殖能力不隨傳代次數(shù)而發(fā)生明顯變化。Alizarin Red染色及堿性磷酸酶活性、骨鈣蛋白含量和鈣離子含量的檢測(cè)顯示8代之前的UCB-MSCs仍能保持較強(qiáng)的成骨分化能力。結(jié)論7代之前的UCB-MSCs能保持穩(wěn)定的體外成骨分化特性,有望成為較理想的組織工程骨種子細(xì)胞。
人臍血間充質(zhì)干細(xì)胞組織工程成骨分化體外培養(yǎng)
骨髓基質(zhì)干細(xì)胞(Bone marrow stromal cells, BMSCs)一直是成體干細(xì)胞研究的熱點(diǎn)。BMSCs通過細(xì)胞信號(hào)通路,分泌造血細(xì)胞生長因子等方式對(duì)造血干細(xì)胞(Hematopoietic stem cells,HSCs)的增殖分化具有支持、營養(yǎng)作用,同時(shí)具有在特定條件下快速增殖、定向分化等干細(xì)胞特性[1-2]。近年來的研究發(fā)現(xiàn),在臍帶血(Umbilical cord blood,UCB)中也存在類似的間充質(zhì)干細(xì)胞(UCB derived mesenchymal stem cells,UCB-MSCs)。與BMSCs相比,UCB-MSCs來源更豐富,取材更方便,蘊(yùn)藏著巨大的臨床應(yīng)用價(jià)值[3-4]。本研究將對(duì)人UCB-MSCs長期體外培養(yǎng)過程中細(xì)胞表面標(biāo)志、增殖與成骨分化潛能等特性進(jìn)行闡述,研究其作為組織工程骨種子細(xì)胞的可行性。
1.1 UCB-MSCs的分離與培養(yǎng)
5份臍血標(biāo)本均來源于上海第六人民醫(yī)院產(chǎn)科,獲得產(chǎn)婦同意。以等量的PBS緩沖液混勻,緩慢滴入到等量的淋巴細(xì)胞分離液(Ficoll,美國Sigma公司),600 g離心20 min。抽取白膜層細(xì)胞,以等量的PBS緩沖液洗滌離心,基礎(chǔ)培養(yǎng)液(含低糖DMEM,10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和鏈霉素、2 mmol/L L-谷氨酰胺)重懸,接種至100 mm培養(yǎng)皿,置于37℃、飽和濕度、5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。第5天首次全量換液,之后每周2次換液,2周后達(dá)60%~80%融合時(shí),0.25%胰酶(含0.02%EDTA)消化傳代。
1.2 UCB-MSCs細(xì)胞表面抗原分析
分別取第1、4、7、10代細(xì)胞,胰蛋白酶消化,制成單細(xì)胞懸液。含2%牛血清白蛋白的PBS緩沖液沖洗細(xì)胞,室溫下分別與CD29-PE、CD31-PE、CD34-PE、CD45-PE、CD105-PE及CD166-FITC單克隆抗體避光孵育15 min。PBS緩沖液沖洗細(xì)胞,離心,棄上清。加入含1%多聚甲醛的PBS緩沖液0.2 mL,使用同型對(duì)照單克隆抗體確定背景標(biāo)記,流式細(xì)胞儀(Beckman Coulter)分析標(biāo)記細(xì)胞。
1.3 UCB-MSCs體外增殖能力檢測(cè)
分別取第1、4、7、10代細(xì)胞,胰蛋白酶消化,接種24孔板,每孔1×103個(gè)細(xì)胞。細(xì)胞計(jì)數(shù)儀連續(xù)計(jì)數(shù)10 d,每天計(jì)數(shù)3孔,繪制生長曲線,計(jì)算細(xì)胞倍增時(shí)間。
1.4 UCB-MSCs成骨分化能力檢測(cè)
分別取第1、4、7、10代細(xì)胞,胰蛋白酶消化,接種6孔板,每孔1×105個(gè)細(xì)胞。細(xì)胞接種次日起改用成骨條件培養(yǎng)液進(jìn)行成骨誘導(dǎo)。誘導(dǎo)液配方:基礎(chǔ)培養(yǎng)液,10~8 M地塞米松,10 mM β-磷酸甘油酸鈉,50 μg/L磷酸抗壞血酸。誘導(dǎo)2周后行Alizarin Red染色[5],觀察細(xì)胞外基質(zhì)鈣化和鈣結(jié)節(jié)形成情況,并測(cè)定鈣離子含量。以未誘導(dǎo)組細(xì)胞作為對(duì)照。
細(xì)胞成骨誘導(dǎo)2周時(shí),同時(shí)行堿性磷酸酶(Alkaline phosphatase,ALP)活性和骨鈣蛋白(Osteocalcin,OCN)含量測(cè)定,觀察細(xì)胞成骨分化狀況。采用磷酸對(duì)硝基苯酯二鈉鹽(美國Sigma公司)比色法測(cè)定細(xì)胞內(nèi)ALP活性,OCN放免試劑盒(美國Biomedical Technologies公司)檢測(cè)OCN含量,實(shí)驗(yàn)方法參照試劑盒說明操作。以未誘導(dǎo)組細(xì)胞作為對(duì)照。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
應(yīng)用SAS 6.12統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行處理,采用方差分析和Student-Newman-Keuls檢驗(yàn),結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,P<0.05認(rèn)為差異有顯著性意義。
2.1 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
原代細(xì)胞接種5 d后首次換液,細(xì)胞呈圓形或短梭形(圖1A)。9 d后細(xì)胞進(jìn)入增殖期,形成細(xì)胞集落,細(xì)胞形態(tài)也逐漸向長梭形改變(圖1B)。2周后基本達(dá)到70%融合狀態(tài),傳代培養(yǎng)。傳代后細(xì)胞分布均勻,呈成纖維樣細(xì)胞形態(tài),4~5 d后可達(dá)80%融合。
圖1 原代培養(yǎng)的UCB-MSCs形態(tài)學(xué)觀察(A:第5天;B:第9天)
2.2 細(xì)胞表面抗原分析
不同代次UCB-MSCs表面抗原檢測(cè)結(jié)果見表1。第1~10代細(xì)胞的CD29、CD105和CD166均呈較高表達(dá),陽性率在50%~60%左右。CD31、CD34和CD45則呈低表達(dá),陽性率不超過5%。
表1 不同代次UCB-MSCs表面抗原的陽性表達(dá)率(%)(n=5)
2.3 細(xì)胞倍增時(shí)間分析
細(xì)胞傳代培養(yǎng)的潛伏期約為36~48 h,第2~3天開始,數(shù)量逐漸增多,對(duì)數(shù)增殖期約為5~7 d,隨后進(jìn)入增殖平臺(tái)期。根據(jù)生長曲線可知,UCB-MSCs的群體倍增時(shí)間為(36.5±5.52)h。從第7代開始細(xì)胞倍增時(shí)間逐漸延長達(dá)(45.6±4.28)h,差異有顯著性意義(P<0.05)。
2.4 細(xì)胞成骨分化能力檢測(cè)
UCB-MSCs成骨誘導(dǎo)2周后,Alizarin Red染色為陽性,形成面積大小不等的紅色鈣鹽沉積區(qū)域。對(duì)照組則始終無明顯鈣沉積。細(xì)胞傳代至第10代時(shí),成骨誘導(dǎo)組仍有鈣鹽沉積形成,但與之前代次細(xì)胞相比,成骨能力明顯下降(圖2)。
鈣離子定量(圖3)、ALP活性(圖4)和OCN含量(圖5)的檢測(cè)結(jié)果則表明,與未誘導(dǎo)組相比,UCB-MSCs傳至第7代時(shí)仍保持較強(qiáng)的成骨分化能力。其中第7代細(xì)胞的ALP活性和OCN含量開始下降,第10代細(xì)胞的鈣離子含量則明顯降低,但仍顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。
圖2 UCB-MSCs成骨誘導(dǎo)2周后Alizarin Red染色
圖3 鈣離子定量檢測(cè)
圖4 堿性磷酸酶活性檢測(cè)
圖5 骨鈣蛋白含量檢測(cè)
與骨髓(Bone marrow,BM)含有HSCs一樣,人臍帶血(Umbilical cord blood,UCB)中也含有數(shù)量較為豐富的HSCs。并且臍帶血免疫原性相對(duì)較弱,其淋巴細(xì)胞相對(duì)不成熟,可用于人類白細(xì)胞抗原(HLA)配型不符者之間的輸注[6-8]。因此,UCB用于治療造血系統(tǒng)疾病已有10余年歷史,國內(nèi)一些城市也建立了相應(yīng)的UCB庫。BMSCs通過細(xì)胞信號(hào)通路,分泌造血細(xì)胞生長因子等方式對(duì)HSCs的增殖分化具有支持、營養(yǎng)作用,同時(shí)還具有在特定條件下快速增殖、定向分化等干細(xì)胞特性。近年來研究發(fā)現(xiàn),在UCB中也存在類似的MSCs。這類細(xì)胞不表達(dá)造血系標(biāo)志(CD34、CD45、vWF等),而與BMSCs具有類似的生物學(xué)行為(貼壁生長、成纖維細(xì)胞形態(tài))和細(xì)胞表面標(biāo)志(CD105、CD166、SH2、SH3等)[2-4]。
本實(shí)驗(yàn)中,我們選擇了常用的鑒定間充質(zhì)來源的細(xì)胞表面標(biāo)記物CD29、CD105和CD166,發(fā)現(xiàn)這些表面抗原在UCB-MSCs中呈較高表達(dá),而低表達(dá)造血系細(xì)胞的表面抗原,如CD31、CD34和CD45。并且體外長期傳代培養(yǎng)未影響細(xì)胞表面抗原的表達(dá),與BMSCs比較相似,表明密度梯度離心和貼壁培養(yǎng)的方法可以獲得臍血來源的MSCs。而對(duì)傳代細(xì)胞倍增時(shí)間的分析結(jié)果顯示,隨傳代次數(shù)增多,7代之內(nèi)的細(xì)胞群體倍增時(shí)間變化不明顯,7代之后則逐漸延長,差異有顯著性。
MSCs表達(dá)、合成成骨特異性蛋白及細(xì)胞外鈣鹽沉積,是檢測(cè)MSCs向成骨細(xì)胞定向分化的標(biāo)志物。作為骨組織重要的基質(zhì)蛋白,ALP活性的高表達(dá)是成骨細(xì)胞成熟的重要標(biāo)志,而OCN主要沉積在骨組織的細(xì)胞外基質(zhì),被認(rèn)為是成骨細(xì)胞特征性的蛋白質(zhì)[9-10]。本實(shí)驗(yàn)檢測(cè)到7代之前的UCB-MSCs成骨誘導(dǎo)后能夠高表達(dá)ALP和OCN,而第10代的鈣離子含量則顯著降低。結(jié)合抗原分析與細(xì)胞倍增時(shí)間的結(jié)果,表明7代之前的UCB-MSCs具有較高的成骨分化能力和體外增殖能力。體內(nèi)回植的方法是評(píng)價(jià)MSCs成骨潛能的最有價(jià)值的標(biāo)準(zhǔn)[11]。因此,UCB-MSCs是否能夠作為組織工程骨的種子細(xì)胞,還需要進(jìn)一步開展體內(nèi)回植的相關(guān)研究。
本實(shí)驗(yàn)證實(shí),UCB-MSCs為間充質(zhì)來源的干細(xì)胞,生物學(xué)性能穩(wěn)定,較長期(7代之內(nèi))體外傳代培養(yǎng)仍能保持成骨分化能力,有望在組織工程及再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域獲得進(jìn)一步的應(yīng)用。
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The Effects of Long-term Culture In Vitro on the Osteogenic Differentiation Potential of Human Umbilical Cord Blood Derived Mesenchymal Stem Cells
LIU Guangpeng1,ZHANG Wenjie2,LI Yulin1,SUN Jian1,ZHOU Heng1,CUI Lei12.
1 Shanghai Tissue Engineering Research and Development Center,Shanghai 200235,China.2 Tissue Engineering Key Laboratory,Shanghai Ninth People′s Hospital,Shanghai Jiaotong University School of Medicine,Shanghai 200011,China.
ObjectiveTo observe the effects of long-term culture in vitro on the osteogenic differentiation potential of human umbilical cord blood derived mesenchymal stem cells(UCB-MSCs).MethodsThe CD markers of UCB-MSCs were identified by flow cytometric analysis.Osteogenic differentiation of UCB-MSCs at different passages was evaluated by Alizarin Red staining,and measurement of alkaline phosphatase activity,osteocalcin content,and calcium content respectively.ResultsThe CD marker expression of UCB-MSCs maintained high until passage 10,while the osteogenic differentiation potential of UCB-MSCs began to decrease from passage 7.ConclusionUCB-MSCs(before passage 7)may serve as optimal seed cells for tissue engineered bone.
Human umbilical cord blood derived mesenchymal stem cells;Tissue engineering;Osteogenic differentiation; Long-term culture in vitro
Q813.1+1
A
1673-0364(2009)-01-0004-03
2008年11月13日;
2009年1月5日)
10.3969/j.issn.1673-0364.2009.01.002
國家自然科學(xué)基金(30800232);上海市科技啟明星計(jì)劃項(xiàng)目(07QA14053);上海-英格蘭東北地區(qū)科技合作計(jì)劃(075407072)。
200235上海市上海組織工研究與開發(fā)中心(劉廣鵬,李宇琳,孫劍,周恒,崔磊)。200011上海市上海交通大學(xué)附屬第九人民醫(yī)院組織工程實(shí)驗(yàn)室(張文杰,崔磊)。