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      蘋果14-3-3 基因家族的鑒定與MdGRF13 的功能分析

      2023-09-10 18:29:59任家玄李艷梅馬維峰吳宙毛娟
      果樹學(xué)報(bào) 2023年3期
      關(guān)鍵詞:亞族擬南芥家族

      任家玄 李艷梅 馬維峰 吳宙 毛娟

      摘要:【目的】通過鑒定和分析蘋果14-3-3 基因家族,并在蘋果愈傷組織中過表達(dá)MdGRF13,研究逆境脅迫下其對(duì)蘋果愈傷組織生長(zhǎng)的影響,為探究該家族基因功能提供理論參考?!痉椒ā坷蒙镄畔W(xué)方法對(duì)蘋果14-3-3 基因家族進(jìn)行鑒定和表達(dá)分析,構(gòu)建MdGRF13 過表達(dá)載體并轉(zhuǎn)化蘋果愈傷組織?!窘Y(jié)果】共鑒定出36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族成員。系統(tǒng)進(jìn)化分析將該家族成員分為ε 類和非ε 類,每個(gè)亞族基因結(jié)構(gòu)相似,且高度保守。共線性分析發(fā)現(xiàn)片段重復(fù)是該基因家族擴(kuò)張的主要原因?;蚪M織特異性表達(dá)分析顯示,蘋果14-3-3 家族基因在莖中多數(shù)上調(diào)表達(dá)。亞細(xì)胞定位表明MdGRF13 蛋白定位在細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞膜上。qRT-PCR分析發(fā)現(xiàn),在PEG和NaCl 處理下分別有14 和13 個(gè)基因在不同時(shí)間點(diǎn)上調(diào)表達(dá)。過表達(dá)型(OE)愈傷組織在PEG和NaCl處理下長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于野生型(WT)?!窘Y(jié)論】鑒定出36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族成員,且各亞族成員結(jié)構(gòu)高度保守。過表達(dá)MdGRF13 增強(qiáng)了蘋果愈傷組織的抗旱性和耐鹽性。

      關(guān)鍵詞:蘋果;14-3-3 基因家族;表達(dá)分析;亞細(xì)胞定位;愈傷組織

      中圖分類號(hào):S661.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):1009-9980(2023)03-0405-17

      植物在生長(zhǎng)發(fā)育過程中會(huì)受到高鹽、干旱、低溫和重金屬離子毒害等環(huán)境變化引起的非生物脅迫,造成植物生長(zhǎng)緩慢或死亡[1-2]。為了適應(yīng)這些非生物脅迫,植物自身進(jìn)化出多種保護(hù)系統(tǒng)來抵御逆境脅迫所造成的損傷[3]。14-3-3 作為應(yīng)激誘導(dǎo)蛋白通過參與真核生物轉(zhuǎn)錄調(diào)控和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)來增強(qiáng)植物對(duì)逆境的耐受性,它通過激素信號(hào)途徑和離子通道來調(diào)控多種靶標(biāo)的活性,在非生物脅迫中起關(guān)鍵作用[4-6]。14-3-3 蛋白也具有調(diào)節(jié)植物生長(zhǎng)和發(fā)育的功能,其與鈣調(diào)蛋白激酶CDPK(calcium- dependentprotein kinase)共同作用調(diào)控植物新陳代謝、激素合成和開花等多種生物學(xué)途徑[7-8]。

      目前14-3-3 蛋白已在甜瓜(Cucumis melo)、擬南芥(Arabidopsis thaliana)、番茄(Solanum lycopersicum)、大豆(Glycine max)、苜蓿(Medicago truncatula)、楊樹(Populus trichocarpa)、水稻(Oryza sativa)、花生(Arachis hypogaea)、棉花(Gossypium hirsutum)和杧果(Mangifera indica)中完成了鑒定[9-17]。研究發(fā)現(xiàn),根據(jù)系統(tǒng)進(jìn)化和內(nèi)含子數(shù)量,14-3-3 基因家族劃分為ε 類和非ε 類,非ε 類含有4 個(gè)外顯子和3 個(gè)內(nèi)含子,而ε 類一般包含6~7 個(gè)外顯子和4~6 個(gè)內(nèi)含子[8,16-17]。14-3-3 基因在小麥、葡萄和香蕉生殖器官中高表達(dá)來調(diào)節(jié)植物淀粉合成、果實(shí)發(fā)育和漿果成熟等過程[18-20]。研究發(fā)現(xiàn),4 個(gè)Md14-3-3 蛋白與花整合因子MdTFL1 和MdFT相互作用參與植物開花調(diào)控[21],而過表達(dá)毛竹PvGF14b、PvGF14c 和PvGF14e 能夠延緩擬南芥的開花時(shí)間[22]。在番茄根系中,14-3-3 蛋白通過調(diào)控脫落酸(abscisic acid,ABA)信號(hào)通路來維持植物細(xì)胞滲透平衡和氣孔開度,進(jìn)而響應(yīng)干旱或鹽堿逆境脅迫[9]。前人研究發(fā)現(xiàn),小麥TaGF14b 在煙草中過表達(dá)增強(qiáng)了植物對(duì)非生物脅迫的耐受性[23]。此外,Xia 等[15]通過qPCR 發(fā)現(xiàn)杧果植株在干旱處理12 h 后Mi14-3-3-A1 的表達(dá)呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。水稻OsCPK21 與OsGF14e 磷酸化作用來調(diào)控ABA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和耐鹽性,而擬南芥14-3-3 蛋白質(zhì)充當(dāng)鹽過度敏感(SOS)信號(hào)通路分子開關(guān),響應(yīng)鹽脅迫[24- 25]。棉花葉片中的5 個(gè)基因(Gh-GRF3、GhGRF4、GhGRF5、GhGRF7 和GhGRF16)在鹽脅迫下下調(diào)表達(dá)[26]。同時(shí),過表達(dá)MdGRF11 可提高轉(zhuǎn)基因蘋果愈傷組織和擬南芥對(duì)干旱和鹽脅迫的耐受性[27]。以上研究表明14-3-3 家族蛋白在植物生長(zhǎng)、發(fā)育和脅迫反應(yīng)中具有重要作用。

      蘋果(Malus×domestica Borkh.)是中國(guó)廣泛種植的經(jīng)濟(jì)水果之一,而干旱和鹽堿等非生物脅迫仍是限制我國(guó)蘋果產(chǎn)業(yè)發(fā)展的重要因素。筆者在本研究中利用擬南芥和水稻蛋白序列在蘋果基因組中進(jìn)行同源比對(duì),鑒定出36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族成員,對(duì)其理化性質(zhì)、系統(tǒng)進(jìn)化關(guān)系及保守基序進(jìn)行分析,并探究該家族基因在植物組織和逆境脅迫下的表達(dá)情況,以及分析過表達(dá)MdGRF13 愈傷組織在PEG和NaCl 脅迫下的影響,為該家族基因響應(yīng)逆境功能研究提供理論依據(jù)。

      1 材料和方法

      1.1 材料與處理

      試驗(yàn)于2021 年在甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院果樹生理與生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。選擇繼代培養(yǎng)30 d生長(zhǎng)良好且一致的蘋果品種嘎拉實(shí)生苗外植體擴(kuò)繁的試管苗,轉(zhuǎn)接到含有15% PEG、100 μmol · L- 1ABA和200 mmol·L-1 NaCl [28]的MS液體培養(yǎng)基(降低濃度誤差)進(jìn)行處理,以等體積MS 培養(yǎng)基處理為對(duì)照,對(duì)照與各處理同步時(shí)長(zhǎng)均為2、12 和24 h,pH 值為5.8~6.0,采用紙橋法進(jìn)行固定。每組處理設(shè)置3 個(gè)生物學(xué)重復(fù),每個(gè)重復(fù)5 株試管苗。使用qRT-PCR 對(duì)10 年生嘎拉實(shí)生苗(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)日光溫室)進(jìn)行組織特異性數(shù)據(jù)分析。另外,使用本實(shí)驗(yàn)保存的蘋果王林愈傷組織進(jìn)行MdGRF13 的過表達(dá)分析。

      1.2 蘋果14-3-3 家族基因的鑒定

      用擬南芥(https://www.arabidopsis.org/)和水稻(http://rice.plantbiology.msu.edu/index.sh-tml)14-3-3家族的蛋白序列在蘋果數(shù)據(jù)庫(kù)GDR(https://www.rosaceae.org/)中利用Blast 工具進(jìn)行比對(duì),然后用SMART(http://smart.emblheidelberg.de/) 和Pfam(http://pfam.sanger.ac.uk/search)在線網(wǎng)站進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域的檢索,去除不含保守結(jié)構(gòu)域的蘋果序列,根據(jù)蘋果14-3-3 家族基因在染色上的位置進(jìn)行命名。

      1.3 蘋果14-3-3 家族蛋白理化性質(zhì)及二級(jí)結(jié)構(gòu)分析

      對(duì)蘋果14-3-3 家族蛋白的理論等電點(diǎn)(pI)、分子質(zhì)量和不穩(wěn)定性指數(shù)等基本信息使用ExPASy(https://web.expasy.org/protparam/)工具進(jìn)行分析。

      根據(jù)二級(jí)結(jié)構(gòu)在線工具SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi- bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html)對(duì)蘋果14-3-3 家族蛋白進(jìn)行α 螺旋、β 轉(zhuǎn)角、延伸鏈和無(wú)規(guī)則卷曲比例的預(yù)測(cè)。

      1.4 蘋果14-3-3 家族蛋白系統(tǒng)進(jìn)化分析

      下載大豆、番茄和二穗短炳草(NCBI)14-3-3 家族蛋白序列,與擬南芥、水稻以及蘋果蛋白序列用MEGA 7.0 軟件比對(duì)并構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,校驗(yàn)參數(shù)默認(rèn)值為1000。

      1.5 蘋果14-3-3 家族蛋白結(jié)構(gòu)和保守基序分析

      采用GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/)對(duì)蘋果14-3-3 家族基因成員進(jìn)行基因結(jié)構(gòu)分析;利用在線網(wǎng)站MEME(http://meme-suite.org/)對(duì)其蛋白保守基序預(yù)測(cè)。

      1.6 蘋果14-3-3 家族基因共線性和蛋白互作網(wǎng)絡(luò)分析

      利用軟件TBtools 1.6 對(duì)蘋果14-3-3 家族基因進(jìn)行共線性分析,繪制關(guān)系圖。通過Phytozome v12.1:Home (https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html)下載擬南芥和水稻的CDS序列及基因注釋文件,在GDR(https://www.rosaceae.org/)中下載蘋果的基因組數(shù)據(jù),使用TBtools 1.6 軟件繪制蘋果、水稻和擬南芥之間的關(guān)聯(lián)性圖。對(duì)36 個(gè)蘋果14-3-3 家族蛋白通過String 蛋白互作數(shù)據(jù)庫(kù)(http://string-db.org/)進(jìn)行蛋白互作網(wǎng)絡(luò)分析和參數(shù)默認(rèn)。

      1.7 實(shí)時(shí)熒光定量qRT-PCR分析

      36 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因qRT-PCR 引物(表1),由生工生物工程(上海)股份有限公司在線設(shè)計(jì),提取RNA,用反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Prime Script RT reagentKit,Perfect Real Time,TaKaRa)合成cDNA;用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 儀(LightCycler? 96 Real- TimePCR System,Roche,瑞士)和試劑盒(SYBR GreenⅠ,TaKaRa)進(jìn)行該家族基因在不同組織、PEG、ABA及NaCl 處理下表達(dá)量的分析。反應(yīng)體系為20 μL,分別加入6 μL ddH2O、2 μL cDNA、上下游引物各1 μL和10 μL SYBR。用SPSS 22.0 和Excel 2010 進(jìn)行數(shù)據(jù)處理及作圖。

      1.8 MdGRF13 基因的克隆及亞細(xì)胞定位分析

      RNA 來自嘎拉蘋果試管苗葉片。蘋果MdGRF13 基因克隆引物為F:5- GAGCTCGGTACCCGGGGATCCATGGCGGCAACCACCCCC-3,R:5-GGTGTCGACTCTAGAGGATCCGGTCTCGATCTTGGATTGGTAGTC-3。按照反應(yīng)程序95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,58 ℃退火42 s,72 ℃延伸1 min,40 個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min 進(jìn)行PCR擴(kuò)增,使用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè)并回收目標(biāo)條帶。連接pCAMBIA1300 載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α(天根生物科技有限公司),進(jìn)行菌液PCR鑒定后,送生工生物工程(西安)股份有限公司測(cè)序。

      將pCAMBIA1300-MdGRF13-GFP 表達(dá)載體質(zhì)粒和pCAMBIA1300-GFP 空載體質(zhì)粒,分別轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌GV3101(北京博邁徳基因技術(shù)有限公司)。參照劉勇等[29]農(nóng)桿菌介導(dǎo)煙草葉片的侵染方法,將重懸菌液注射到本氏煙草葉片背面,培養(yǎng)箱培養(yǎng)2 d后,采用激光共聚焦顯微鏡觀察。

      1.9 MdGRF13 愈傷組織轉(zhuǎn)化、表型觀察及生理指標(biāo)測(cè)定

      愈傷組織侵染參照張婷婷等[30]的方法。選取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的蘋果王林愈傷組織進(jìn)行農(nóng)桿菌侵染,并在誘導(dǎo)培養(yǎng)基(含有潮霉素50 mg·L-1和頭孢霉素300 mg · L-1)上篩選。使用超光速mix(MF848)試劑盒(北京聚合美生物科技有限公司)鑒定轉(zhuǎn)基因愈傷組織,鑒定所用抗性基因Hyg 引物為,F(xiàn):5-ATGAAAAAGCCTGAACTCACCG-3,R:5-CTATTTCTTTGCCCTCGGACGA-3;繼代培養(yǎng)。

      取野生型和MdGRF13 過表達(dá)系OE-4、OE-2 及OE-3 愈傷組織0.05 g,放在分別含有2% PEG、4%PEG、0.06 mol · L-1 NaCl 和0.08 mol · L-1 NaCl 的MS固體培養(yǎng)基[27,31]上處理15 d,拍照并進(jìn)行鮮質(zhì)量統(tǒng)計(jì)。蘋果愈傷組織中丙二醛(MDA)含量及SOD、POD和CAT活性分別采用硫代巴比妥酸法[32]、氮藍(lán)四唑(NBT)法、愈創(chuàng)木酚法和紫外吸收法[33]測(cè)定。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 蘋果14-3-3 家族基因成員的鑒定

      從蘋果基因組中共鑒定得到36 個(gè)14-3-3 家族基因(表2)。蘋果14-3-3 家族基因相對(duì)分子質(zhì)量為11 221.52~113 854.16 Da;氨基酸長(zhǎng)度介于98~1006 aa 之間;等電點(diǎn)(pI)為4.68~10.55;不穩(wěn)定系數(shù)MdGRF17 最小,為36.92,MdGRF8 最大,為98.48;大多數(shù)蘋果14-3-3家族蛋白的pI值小于7,其可能是酸性蛋白。對(duì)蘋果14-3-3家族36個(gè)基因編碼蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè),發(fā)現(xiàn)其主要在細(xì)胞質(zhì)中進(jìn)行相關(guān)表達(dá),其次是細(xì)胞核,其中MdGRF2、MdGRF7、MdGRF8、MdGRF12、MdGRF16、MdGRF28 和MdGRF31 完全定位在細(xì)胞核中,預(yù)測(cè)這7 個(gè)蛋白僅在細(xì)胞核中發(fā)揮相關(guān)作用。MdGRF4 和MdGRF11 在葉綠體中有一定量的表達(dá),預(yù)測(cè)這2 個(gè)蛋白可能與植物光合作用相關(guān)。

      2.2 蘋果14-3-3 家族蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)分析

      對(duì)蘋果36 個(gè)14-3-3 家族蛋白進(jìn)行二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)結(jié)果表明(圖1)。其蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)以α 螺旋和無(wú)規(guī)則卷曲為主,分別占23.08%(MdGRF8)~78.57%(MdGRF13)、15.47%(MdGRF18)~64.10%(MdGRF8)。而β 轉(zhuǎn)角占0%(MdGRF13)~7.93%(MdGRF16),延伸鏈占2.04%(MdGRF13)~22.65%(MdGRF33),二者所占比例較小。

      2.3 蘋果14-3-3 家族基因進(jìn)化分析

      將蘋果、擬南芥、水稻、大豆、二穗短柄草以及番茄的14-3-3 家族蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖2)。

      結(jié)果表明,該基因家族可分為ε 類和非ε 類,又分為5個(gè)亞族。其中,Ⅰ亞族有6 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因,Ⅱ亞族有10 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因,Ⅲ亞族有3 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因,Ⅳ亞族有10 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因,Ⅴ亞族有7 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因。蘋果跟擬南芥14-3-3 家族基因有較高的同源性,進(jìn)化關(guān)系較近。

      2.4 蘋果14-3-3 家族基因結(jié)構(gòu)和motif分析

      對(duì)36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族構(gòu)建進(jìn)化樹以及基因結(jié)構(gòu)分析(圖3-A~B),該基因家族可分為ε 類和非ε 類。MdGRF11、MdGRF14、MdGRF23 和MdGRF27 僅有一個(gè)內(nèi)含子,MdGRF16 和MdGRF26有2 個(gè)內(nèi)含子,MdGRF7 和MdGRF24 有14 個(gè)內(nèi)含子。MdGRF24 和MdGRF33 明顯長(zhǎng)于其他基因,序列長(zhǎng)度超過8 kb。MdGRF2、MdGRF8、MdGRF13 和MdGRF28 屬于內(nèi)含子缺失類,整條序列均為外顯子,不同亞族序列外顯子分布位置和長(zhǎng)度差異較大,推測(cè)不同亞族有較大功能差異。對(duì)蘋果14-3-3 家族成員的motif 分析顯示(圖3-C),共鑒定出10 個(gè)motif,且都含有motif 3。MdGRF8、MdGRF12 和MdGRF14 蛋白只有一個(gè)保守基序,分別為motif 3、motif 2 和motif 1。同一亞族成員結(jié)構(gòu)相似,具有較高的保守性,其在蘋果生長(zhǎng)中可能發(fā)揮相似的功能;不同亞族間的motif 存在差異,表明其可能具有不同的生物學(xué)功能。

      2.5 蘋果14-3-3 家族基因的共線性和蛋白互作網(wǎng)絡(luò)分析

      對(duì)36 個(gè)蘋果14-3-3 家族蛋白互作網(wǎng)絡(luò)分析表明( 圖4-A)。15 個(gè)成員(MdGRF3、MdGRF4、MdGRF6 、MdGRF10 、MdGRF11 、MdGRF13 、MdGRF15 、MdGRF18 、MdGRF22 、MdGRF25 、MdGRF26 、MdGRF31 、MdGRF32 、MdGRF34 和MdGRF36)在網(wǎng)絡(luò)中與FT2、MdFT1 和XP—008366662.1 蛋白互作,推測(cè)蘋果14-3-3 家族蛋白與植物營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)、生殖生長(zhǎng)和開花調(diào)控相關(guān)。

      染色體定位顯示,33 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因分布在11 條蘋果染色體上,3 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因分布在chrUr 染色體上,而染色體Chr 05 上分布最多,有5 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因(圖4-B)。對(duì)蘋果的36 個(gè)14-3-3 家族基因進(jìn)行共線性分析,結(jié)果如圖4-B 所示:10 對(duì)基因存在共線性,分別為MdGRF1/MdGRF34、MdGRF2/MdGRF32、MdGRF4/MdGRF20、MdGRF4/MdGRF29、MdGRF7/MdGRF18、MdGRF9/MdGRF21、MdGRF17/MdGRF30、MdGRF20/MdGRF29、MdGRF22/MdGRF35 和MdGRF24/MdGRF36,原因可能與大片段復(fù)制有關(guān)。存在MdGRF2/MdGRF3、MdGRF6/MdGRF7、MdGRF9/MdGRF10、MdGRF24/MdGRF25、MdGRF30/MdGRF31 和MdGRF32/MdGRF33 6 對(duì)串聯(lián)重復(fù)基因,片段重復(fù)在蘋果14-3-3 基因家族擴(kuò)展中占主要作用,該家族基因具有較高的同源性。

      為了探討不同物種14-3-3 家族基因的進(jìn)化關(guān)系,分析了蘋果、單子葉植物水稻以及模式植物擬南芥之間的同源基因,結(jié)果表明(圖5),蘋果與擬南芥之間的關(guān)聯(lián)性較強(qiáng),存在20 對(duì)共線性基因?qū)ΓO果與水稻之間的關(guān)聯(lián)性相對(duì)較弱,存在3 對(duì)基因?qū)?。表明蘋果與擬南芥的14-3-3 家族基因親緣關(guān)系較近。

      2.6 蘋果14-3-3 家族基因的組織特異性表達(dá)分析

      對(duì)蘋果14-3-3 家族基因在根、莖和葉中的表達(dá)差異分析顯示(圖6),36 個(gè)基因在根、莖和葉中都有表達(dá)。4 個(gè)基因(MdGRF2、MdGRF17、MdGRF25 和MdGRF28)在根中有較高表達(dá),16 和12 個(gè)基因分別在莖和葉中表達(dá)量較高。綜上所述,蘋果14-3-3 家族基因在不同組織中存在表達(dá)差異,且在莖中表達(dá)量高于葉和根。

      2.7 蘋果14-3-3 家族基因?qū)Ψ巧锩{迫的表達(dá)分析

      通過qRT-PCR 分析了36 個(gè)蘋果14-3-3 家族基因在PEG、ABA 和NaCl 處理下的相對(duì)表達(dá)量(圖7)。結(jié)果表明,ABA 處理2 h 后,MdGRF18 和MdGRF26 較對(duì)照顯著上調(diào)表達(dá),MdGRF4 和MdGRF16 也有上調(diào)表達(dá),MdGRF24 在ABA 處理24 h 后上調(diào)表達(dá),其余基因均下調(diào)表達(dá)。MdGRF5、MdGRF14、MdGRF24 和MdGRF26 在PEG 處理2 h下與對(duì)照相比呈顯著上調(diào)表達(dá),MdGRF2、MdGRF13和MdGRF26 在12 h 有較高表達(dá),且MdGRF13 在24 h 表達(dá)量最高,為對(duì)照的1.8 倍,而其余基因表達(dá)量較低。NaCl處理下,MdGRF4、MdGRF5、MdGRF12、MdGRF14、MdGRF16、MdGRF19 和MdGRF24 在2 h較對(duì)照上調(diào)表達(dá),MdGRF1、MdGRF9、MdGRF10、MdGRF13、MdGRF15 和MdGRF24 在12 h 顯著上調(diào);MdGRF2 始終處于上調(diào)表達(dá),且在2 h 表達(dá)量最高,為對(duì)照的18.6 倍,其可能在鹽脅迫中起正調(diào)控作用。MdGRF4、MdGRF5、MdGRF14 和MdGRF16 在NaCl 處理2 h 后表達(dá)量分別為對(duì)照的7.6、7.5、6.5 和15.6 倍,而MdGRF13 在NaCl 處理12 h 及24 h 后顯著上調(diào)表達(dá),為對(duì)照的2.1 倍,推測(cè)蘋果14-3-3 家族基因可能響應(yīng)鹽脅迫。

      2.8 蘋果MdGRF13基因克隆和亞細(xì)胞定位分析

      由qRT-PCR 分析(圖7)表明MdGRF13 基因在15% PEG 以及200 mmol·L-1 NaCl 處理12 h 和24 h后較對(duì)照顯著上調(diào)表達(dá),說明其在抵御非生物脅迫的過程中發(fā)揮重要的作用。因此,選擇MdGRF13基因克隆并進(jìn)行功能驗(yàn)證。

      以嘎拉蘋果cDNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到與預(yù)期目標(biāo)一致的條帶(圖8-A),將擴(kuò)增產(chǎn)物回收純化后連接大腸桿菌DH5α 并通過PCR 陽(yáng)性檢測(cè),所得結(jié)果與原序列(297 bp)相吻合(圖8-B)。最后轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌,PCR檢測(cè)條帶合適(圖8-C)。

      以pCAMBIA1300-GFP 空載體為陽(yáng)性對(duì)照,將MdGRF13 重組質(zhì)粒在煙草葉片中瞬時(shí)表達(dá)。結(jié)果表明(圖9),pCAMBIA1300-MdGRF13-GFP 表達(dá)載體的熒光定位在細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞膜上。

      2.9 MdGRF13 過表達(dá)在蘋果愈傷組織的功能鑒定

      將過表達(dá)載體pCAMBIA1300-MdGRF13-GFP轉(zhuǎn)化王林蘋果愈傷組織(圖10-A)。對(duì)所得轉(zhuǎn)基因愈傷組織通過PCR檢測(cè),獲得了與陽(yáng)性對(duì)照片段大小一致的條帶(圖10-B),證明MdGRF13 在蘋果愈傷組織中轉(zhuǎn)化成功。選取過表達(dá)型OE-4、OE-2 和OE-3 進(jìn)行處理。

      對(duì)野生型與過表達(dá)型愈傷組織經(jīng)不同濃度PEG處理下表型觀察發(fā)現(xiàn)(圖10-C),過表達(dá)型(OE)愈傷組織長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于野生型(WT),且差異顯著,而2%PEG 處理下愈傷組織整體長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于4% PEG。

      0.06 mol·L-1 NaCl 處理下,過表達(dá)型(OE)愈傷組織長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于野生型(WT),而在0.08 mol·L-1 NaCl 處理下,過表達(dá)型(OE)愈傷組織長(zhǎng)勢(shì)與野生型(WT)無(wú)顯著差異。

      對(duì)WT和OE 愈傷組織進(jìn)行鮮質(zhì)量統(tǒng)計(jì),并對(duì)MDA(丙二醛)含量以及CAT、POD 和SOD 酶活性進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果表明(圖10-D),0.08 mol·L-1 NaCl處理下,OE愈傷組織鮮質(zhì)量、MDA含量以及CAT、POD和SOD酶活性較WT無(wú)顯著差異,而其他處理下,OE愈傷組織鮮質(zhì)量以及CAT、POD和SOD酶活性高于WT,而OE 的MDA含量低于WT。表明過表達(dá)MdGRF13 能夠增強(qiáng)蘋果愈傷組織對(duì)干旱和鹽脅迫的抗性。

      3 討論

      14-3-3 蛋白是一類調(diào)控植物激酶與轉(zhuǎn)錄因子信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的基礎(chǔ)性蛋白,參與調(diào)節(jié)植物多種生理和發(fā)育過程[34-35]。筆者在本研究中通過對(duì)蘋果基因組數(shù)據(jù)分析鑒定得到36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族成員,與研究鑒定得到的擬南芥[16]、番茄[9]、苜蓿[11]、大豆[12]和茶樹[36]14-3-3 家族成員(分別為15、12、18、11 和23個(gè))相比,蘋果14-3-3 基因家族成員數(shù)量大,表明14-3-3 基因家族成員在不同物種間有較大差異,而本研究較Ren 等[27]和Zuo 等[21]已發(fā)表文章鑒定出更多的蘋果14-3-3 家族成員,其中7 個(gè)基因(MdGRF8、12、13、16、23、26 和27)未被鑒定,且都存在于進(jìn)化關(guān)系的非ε 類,MdGRF12/MdGRF13、MdGRF16/MdGRF26 及MdGRF23/MdGRF27 相鄰(圖2),進(jìn)化關(guān)系較近。筆者在本文中通過qPCR 分析發(fā)現(xiàn)MdGRF19(MD10G1280300)在莖中表達(dá)量最高,而在葉中表達(dá)量最低,與Ren 等[27]的研究結(jié)果相反,與Zuo 等[21] 的研究結(jié)果相同。MdGRF11(MD10G1280300)[27]在ABA 和PEG 處理下表達(dá)趨勢(shì)與本文MdGRF19(MD10G1280300)研究結(jié)果基本一致。Zuo 等[21] 亞細(xì)胞定位發(fā)現(xiàn)MdGF14j(MD10G1280300)蛋白定位在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中,與Ren 等[27]的研究結(jié)果相同。推測(cè)其原因可能是不同版本的數(shù)據(jù)庫(kù)有差異,以蘋果不同品種間的數(shù)據(jù)比對(duì)篩選出更多被識(shí)別的基因。

      理化性質(zhì)分析表明,蘋果14-3-3 蛋白pI 值小于7,這與李菲等[11]14-3-3 蛋白是酸性氨基酸的研究結(jié)果一致。系統(tǒng)進(jìn)化分析顯示蘋果14-3-3 基因家族分為ε 類和非ε 類,且非ε 類雙子葉植物蘋果(52.8%)、擬南芥(57.1%)和番茄(58.3%)比例高于單子葉植物二穗短柄草(85.7%)和番茄(85.7%),在ε 類的結(jié)果相同[17]。Zuo 等[21]的研究表明,蘋果MdGF14a、MdGF14d、MdGF14i 和MdGF14j 蛋白與關(guān)鍵的花整合因子MdTFL1 和MdFT相互作用,參與開花調(diào)控,在本研究中,MdGRF6 在系統(tǒng)發(fā)育樹與MdGF14i 和MdGF14j 相鄰,推測(cè)其具有相似的作用。研究發(fā)現(xiàn),14-3-3 蛋白以N-端和C-端不同的motif 為核心結(jié)構(gòu)發(fā)揮不同功能[37],本研究中蘋果14-3-3 家族蛋白ε和非ε 類的N-端與C-端有不同的motif,該家族蛋白可能與靶蛋白相結(jié)合發(fā)揮重要功能。蘋果14-3-3 家族基因有10 對(duì)片段重復(fù)和6 對(duì)串聯(lián)重復(fù)基因,表明片段重復(fù)在其基因家族的進(jìn)化過程中起著重要的作用,并且串聯(lián)和片段重復(fù)事件有利于植物進(jìn)化過程中基因家族成員的擴(kuò)展[38-39]。煙草葉片瞬時(shí)表達(dá)亞細(xì)胞定位實(shí)驗(yàn)表明,MdGRF13 蛋白定位在細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞膜中,與Ren等[27]和Zuo等[21]所得結(jié)果相似,說明14-3-3 家族蛋白在不同植物中有保守功能,其可能在細(xì)胞核中調(diào)控部分基因的轉(zhuǎn)錄。

      組織特異性表達(dá)有助于了解植物中的基因功能[40-41]。通過qRT-PCR發(fā)現(xiàn)蘋果14-3-3 家族基因在根、莖和葉組織中都有表達(dá),而在莖中表達(dá)量較高,與木薯14-3-3 蛋白在塊根不同發(fā)育時(shí)期有不同組織的表達(dá)研究結(jié)果相似[42],說明14-3-3 家族基因在蘋果中有一定的組織特異性表達(dá)。研究發(fā)現(xiàn),水稻OsGF14b 的突變對(duì)干旱和滲透脅迫耐受性的提高可能與ABA 信號(hào)通路有關(guān)[43]。qPCR 結(jié)果顯示,MdGRF4、MdGRF16、MdGRF18 和MdGRF26 在ABA處理下上調(diào)表達(dá),本文結(jié)果與以上研究相似,推測(cè)該家族基因功能與ABA相關(guān),表明蘋果14-3-3蛋白可能與ABA介導(dǎo)的保衛(wèi)細(xì)胞相結(jié)合,進(jìn)而影響其在激活A(yù)BA應(yīng)答基因中的轉(zhuǎn)錄[5]。干旱脅迫會(huì)降低植物的光合和碳水化合物的合成,進(jìn)而減緩植物的生長(zhǎng)發(fā)育[44]。14-3-3 蛋白作為重要的干旱調(diào)控因子在脅迫反應(yīng)中有不同程度的表達(dá),MdGRF26 在PEG處理下高表達(dá),同時(shí),6 個(gè)基因有一定量的上調(diào)表達(dá)。本研究在蘋果愈傷組織過表達(dá)MdGRF13,在不同濃度PEG處理下,轉(zhuǎn)基因愈傷組織長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于野生型,且以2% PEG 處理下長(zhǎng)勢(shì)最好,與棉花CGF14-4[45]和油菜GF14omeg 基因[46]在干旱脅迫下上調(diào)表達(dá)研究結(jié)果相似,表明過表達(dá)MdGRF13 增強(qiáng)了蘋果愈傷組織的抗旱性。實(shí)時(shí)熒光定量PCR發(fā)現(xiàn),MdGRF2、MdGRF4、MdGRF5、MdGRF13、MdGRF14 和MdGRF16 在NaCl 處理下表達(dá)量分別為對(duì)照的18.6、7.6、7.5、2.1、6.5 和15.6 倍,且本研究在0.06 mol·L-1 NaCl 處理下,轉(zhuǎn)基因愈傷組織長(zhǎng)勢(shì)優(yōu)于野生型,與小麥[23]、番茄[9]、水稻[47]及短柄草[48]TaGF14b 在煙草中異位表達(dá)時(shí)增強(qiáng)鹽脅迫耐受性的研究結(jié)果相似,表明過表達(dá)MdGRF13 增強(qiáng)了蘋果愈傷組織對(duì)鹽脅迫的抗性。而在0.08 mol·L-1 NaCl 處理下,轉(zhuǎn)基因愈傷組織較野生型表型未發(fā)生較大變化,可能是較高濃度NaCl 處理抑制了愈傷組織的生長(zhǎng)。同時(shí),本文研究結(jié)果與Ren 等[27]MdGRF11(MD10G1280300)在愈傷組織中過表達(dá)可增強(qiáng)抗旱性和耐鹽性研究結(jié)果一致。說明蘋果14-3-3 家族基因在抵御非生物脅迫的過程中發(fā)揮了重要的作用。

      4 結(jié)論

      本研究通過生物信息學(xué)分析鑒定出36 個(gè)蘋果14-3-3 基因家族成員,系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn)其與擬南芥同源性較高,且各亞族成員結(jié)構(gòu)保守。亞細(xì)胞定位顯示,MdGRF13 蛋白定位在細(xì)胞核、細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞膜中。過表達(dá)MdGRF13 增強(qiáng)了蘋果愈傷組織的抗旱性和耐鹽性。對(duì)進(jìn)一步研究蘋果14-3-3 家族成員的功能具有重要意義。

      參考文獻(xiàn)References:

      [1] ANDERAS M,LUCA C. The effect of stress on genome regulation

      and structure[J]. Annals of Botany,2004,94(4):481-495.

      [2] BOYKO A,KOVALCHUK I. Epigenetic control of plant stress

      response[J]. Environmental and Molecular Mutagenesis,2008,

      49(1):61-72.

      [3] SHESHADRI S A,NISHANTH M J,BINDU S. Stress-mediated

      cis- element transcription factor interactions interconnecting

      primary and specialized metabolism in planta[J]. Frontiers in

      Plant Science,2016,7:1725-1748.

      [4] YAMAGUCHI-SGINOZAKI K,SHINOZAKI K. Organization

      of cis-acting regulatory elements in osmotic and cold-stress-responsive

      promoters[J]. Trends in Plant Science,2005,10(2):88-

      94.

      [5] ROBERTS M R,SALINAS J,COLLINGE D B. 14-3-3 proteins

      and the response to abiotic and biotic stress[J]. Plant Molecular

      Biology,2002,50(6):1031-1039.

      [6] OLSSON A,SVENNELID F,SOMMARIN M,LARSSON C. A

      phosphothreonine residue at the C- terminal end of the plasma

      membrane H+-ATPase is protected by fusicoccin-induced 14-3-3

      binding[J]. Plant Physiology,1998,118(2):551-555.

      [7] PAUL A L,DENISON F C,SCHULTZ E R,ZUPANSKA A K,

      FERL R J. 14-3-3 phosphoprotein interaction networks-dose isoform

      diversity present functional interaction specification?[J].

      Frontiers in Plant Science,2012,3:190-204.

      [8] ROSENQUIST M,ALSTERFJORD M,LARSSON C,SOMMARIN

      M. Data mining the Arabidopsis genome reveals fifteen

      14- 3- 3 genes. Expression is demonstrated for two out of

      five novel genes[J]. Plant Physiology,2001,127(1):142-149.

      [9] XUWF,SHIWM. Expression profiling of the 14-3-3 gene family

      in response to salt stress and potassium and iron deficiencies

      in young tomato (Solanum lycopersicum) roots:Analysis by realtime

      RT-PCR[J]. Annals of Botany,2006,98(5):965-974.

      [10] 馬勇,劉嘉榮,巴德仁貴,哈斯阿古拉. 甜瓜14-3-3 基因家族

      全基因組鑒定與進(jìn)化分析[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,40(24):

      104-111.

      MA Yong,LIU Jiarong,Bade Rengui,Hasi Agula. Genomewide

      identification and phylogenetic analysis of 14- 3- 3 gene

      family in melon[J]. Guangdong Agricultural Sciences,2013,40

      (24):104-111.

      [11] 李菲,何小紅,張習(xí)敏,龔記熠,乙引. 苜蓿14-3-3 基因家族的

      鑒定與進(jìn)化和特征分析[J]. 基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué),2017,36

      (12):5238-5243.

      LI Fei,HE Xiaohong,ZHANG Ximin,GONG Jiyi,YI Yin. Identification,

      evolution and characteristic analysis of 14- 3- 3 gene

      family in medicago[J]. Genomics and Applied Biology,2017,36

      (12):5238-5243.

      [12] 李昕文,沙愛華,黃家權(quán). 大豆14-3-3 家族基因?qū)Φ土酌{迫響

      應(yīng)及其與磷轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白PHT6 的互作[J]. 中國(guó)油料作物學(xué)報(bào),

      2017,39(3):308-314.

      LI Xinwen,SHA Aihua,HUANG Jiaquan. Response of 14-3-3

      family genes to phosphorus starvation in soybean and their interaction

      with phosphorus transporter PHT6[J]. Chinese Journal of

      Oil Crop Sciences,2017,39(3):308-314.

      [13] 姜煥煥,王通,禹山林,陳明娜,王冕,陳娜,潘麗娟,祁佩時(shí),遲

      曉元. 花生14-3-3 基因家族的生物信息學(xué)分析[J]. 中國(guó)油料

      作物學(xué)報(bào),2018,40(4):501-507.

      JIANG Huanhuan,WANG Tong,YU Shanlin,CHEN Mingna,

      WANG Mian,CHEN Na,PAN Lijuan,QI Peishi,CHI Xiaoyuan.

      Bioinformatic analysis of 14- 3- 3 gene family in peanut[J].

      Chinese Journal of Oil Crops,2018,40(4):501-507.

      [14] 張書芹. 陸地棉14-3-3 基因家族的鑒定及逆境脅迫應(yīng)答[J].

      分子植物育種,2019,17(11):3468-3476.

      ZHANG Shuqin. Identification and stress response of 14- 3- 3

      gene family in upland cotton (Gossypium hirsutum)[J]. Molecular

      Plant Breeding,2019,17(11):3468-3476.

      [15] XIA L M,HE X H,HUANG X,YU H X,LU T T,XIE X J,

      ZENG X M,ZHU J W,LUO C. Genome-wide identification

      and expression analysis of the 14-3-3 gene family in mango

      (Mangifera indica L.) [J]. International Journal of Molecular

      Sciences,2022,23(23):1593-1610.

      [16] DELILLE J M,SEHNKE P C,F(xiàn)ERL R J. The Arabidopsis 14-

      3-3 family of signaling regulators[J]. Plant Physiology,2001,

      126(1):35-38.

      [17] TIAN F X,WANG T,XIE Y L,ZHANG J,HU J J. Genomewide

      identification,classification,and expression analysis of

      14-3-3 gene family in Populus[J]. PLoS One,2015,10(4):1-

      22.

      [18] GUO J,DAI S,LI H S,LIU A F,LIU C,CHENG D G,CAO X

      Y,CHU X S,ZHAI S N,LIU J J,ZHAO Z D,SONG J M. Identification

      and expression analysis of wheat TaGF14 Genes[J].

      Frontiers in Genetics,2018,9:12-22.

      [19] CHENG C,WANG Y,CHAI F M,LI S H,XIN H P,LIANG

      Z C. Genome-wide identification and characterization of the

      14- 3- 3 family in Vitis vinifera L. during berry development

      and cold-and heat-stress response[J]. BMC Genomics,2018,

      19(1):579-593.

      [20] LI M Y,REN L C,XU B Y,YANG X L,XIA Q Y,HE P P,

      XIAO S S,GUO A P,HU W,JIN Z Q. Genome-wide identifcation,

      phylogeny,and expression analyses of the 14-3-3 family

      reveal their involvement in the development,ripening,and

      abiotic stress response in banana[J]. Frontiers in Plant Science,

      2016,7:1442-1456.

      [21] ZUO X Y,WANG S X,XIANG W,YANG H R,TAHIR M

      M,ZHENG S G,AN N,HAN M Y,ZHAO C P,ZHANG D.

      Genome-wide identification of the 14-3-3 gene family and its

      participation in floral transition by interacting with TFL1/FT

      in apple[J]. BMC Genomics,2021,22(1):1-17.

      [22] XIAO B J,LUO G H,WANG K S,MAO Z Y,LIN B Z. Overexpression

      of PvGF14c from phyllostachys violascens delays

      flowering time in transgenic Arabidopsis[J]. Frontiers in Plant

      Science,2018,9:105-127.

      [23] ZHANG Y,ZHAO H Y,ZHOU S Y,HE Y,LUO Q,ZHANG

      F,QIU D,F(xiàn)ENG J,WEI Q,CHRN L. Expression of

      TaGF14b,a 14-3-3 adaptor protein gene from wheat,enhances

      drought and salt tolerance in transgenic tobacco[J]. Planta,

      2018,248(1):117-137.

      [24] 李芳,滕建曬,陳宣欽. 14-3-3 蛋白參與植物應(yīng)答非生物脅

      迫的研究進(jìn)展[J]. 植物科學(xué)學(xué)報(bào),2018,36(3):459-469.

      LI Fang,TENG Jianshai,CHEN Xuanqin. Research progress

      on the 14- 3- 3 protein involved in plant responses to abiotic

      stress[J]. Plant Science Journal,2018,36(3):459-469.

      [25] YANG Z J,WANG C W,XUE Y,LIU X,CHEN S,SONG C

      P,YANG Y Q,GUO Y. Calcium-activated 14-3-3 proteins as

      a molecular switch in salt stress tolerance[J]. Nature Communications,

      2019,10(1):1199-1211.

      [26] CAO J F,HUANG J Q,LIU X,HUANG C C,ZHENG Z S,

      ZHANG X F,SHANG G,WANG L J,ZHANG Y G,WENDEL J

      F,GROVER C E,CHEN Z W. Genome-wide characterization of

      the GRF family and their roles in response to salt stress in Gossypium[

      J]. BMC Genomics,2020,21(1):1-16.

      [27] REN Y R,YANG Y Y,ZHANG R,YOU C X,ZHAO Q.

      MdGRF11,an apple 14-3-3 protein,acts as a positive regulator of

      drought and salt tolerance[J]. Plant Science,2019,288:110219-

      110231.

      [28] 馬維峰,李艷梅,馬宗桓,陳佰鴻,毛娟. 蘋果POD 家族基因的

      鑒定與MdPOD15 的功能分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2022,49(6):1181-

      1199.

      MA Weifeng,LI Yanmei,MA Zonghuan,CHEN Baihong,MAO

      Juan. Identification of apple POD gene family and functional analysis

      of MdPOD15 gene[J]. Acta Horticulturae Sinica,2022,49(6):

      1181-1199.

      [29] 劉勇,王澤瓊,龔林忠,王富榮,王會(huì)良,艾小艷,何華平. 桃乙烯

      應(yīng)答因子PpERF1a 的克隆與功能分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2020,47

      (6):1165-1171.

      LIU Yong,WANG Zeqiong,GONG Linzhong,WANG Furong,

      WANG Huiliang,AI Xiaoyan,HE Huaping. Cloning and functional

      analysis of ERF transcription factor gene PpERF1a in peach[J].

      Acta Horticulturae Sinica,2020,47(6):1165-1171.

      [30] 張婷婷,康慧,付璐璐,由春香,王小非,郝玉金. 蘋果MdCYP707A

      家族基因表達(dá)分析和MdCYP707A1 的功能鑒定[J]. 園

      藝學(xué)報(bào),2019,46(8):1429-1444.

      ZHANG Tingting,KANG Hui,F(xiàn)U Lulu,YOU Chunxiang,

      WANG Xiaofei,HAO Yujin. Expression analysis of apple MdCYP707A

      family genes and functional characterization of MdCYP707A1[

      J]. Acta Horticulturae Sinica,2019,46(8):1429-1444.

      [31] 楊蕾蕾. 蘋果質(zhì)膜內(nèi)在蛋白基因MdPIP1;1 和MdPIP1;2 在干旱

      和鹽脅迫中的功能分析[D]. 楊凌:西北農(nóng)林科技大學(xué),2020.

      YANG Leilei. Functional analysis of apple plasma membrane intrinsic

      protein genes MdPIP1;1 and MdPIP1;2 under drought and

      salt stress[D]. Yangling:North West Agriculture and Forestry University,

      2020.

      [32] 趙世杰,許長(zhǎng)成,鄒琦,孟慶偉. 植物組織中丙二醛測(cè)定方法的

      改進(jìn)[J]. 植物生理學(xué)通訊,1994,30(3):207-210.

      ZHAO Shijie,XU Changcheng,ZOU Qi,MENG Qingwei. Improvements

      of method for measurement of malondialdehyde in

      plant tissues[J]. Plant Physiology Communications,1994,30(3):

      207-210.

      [33] 張志良. 植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M]. 北京:高等教育出版社,2008.

      ZHANG Zhiliang. Guide to plant physiology experiment[M]. Beijing:

      Higher Education Press,2008.

      [34] CAMPO S,PERIS- PERIS C,MONTESINOS L,PENAS G,

      MESSEGUER J,SAN S B. Expression of the maize ZmGF14- 6

      gene in rice confers tolerance to drought stress while enhancing

      susceptibility to pathogen infection[J]. Journal of Experimental

      Botany,2012,63(2):983-999.

      [35] LEE J H,LU H. 14-3-3γ inhibition of MDMX-mediated p21 turn-

      over independent of p53[J]. Journal of Biological Chemistry,

      2011,286(7):5136-5142.

      [36] 安海麗,張寶會(huì),姚新轉(zhuǎn),呂立堂. 茶樹14-3-3 基因家族的鑒定和

      表達(dá)模式分析[J/OL]. 分子植物育種,2021:1-20. [2022-07-07].

      http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.S.20210909.1626.024.html.

      AN Haili,ZHANG Baohui,YAO Xinzhuan,L? Litang. Identification

      and expression pattern analysis of 14-3-3 gene family in

      (Camellia sinensis L.)[J/OL]. Molecular Plant Breeding,2021:

      1- 20. [2022- 07- 07]. http://kns.cnki.net/kcms/detail/46.1068.

      S.20210909.1626.024.html.

      [37] 周穎,李冰櫻,李學(xué)寶. 14-3-3 蛋白對(duì)植物發(fā)育的調(diào)控作用[J].

      植物學(xué)報(bào),2012,47(1):55-64.

      ZHOU Ying,LI Bingying,LI Xuebao. Roles of 14-3-3 proteins

      in regulating plant development[J]. Chinese Bulletin of Botany,

      2012,47(1):55-64.

      [38] CANNON S B,MITRA A,BAUMGARTEN A,YOUNG N D,

      MAY G. The roles of segmental and tandem gene duplication in

      the evolution of large gene families in Arabidopsis thaliana[J].

      BMC Plant Biology,2004,4(1):10-30.

      [39] SUN H H,WU S,ZHANG G Y,JIAO C,GUO S G. Karyotype

      stability and unbiased fractionation in the paleo- allotetraploid

      Cucurbita genomes[J]. Molecular Plant,2017,10(10):1293-

      1306.

      [40] GENGMT,YAO Y,WANG Y L. Structure,expression,and functional

      analysis of the hexokinase gene family in cassava[J]. International

      Journal of Molecular Sciences,2017,18(5),1041-1059.

      [41] MA B Q,LIAO L,F(xiàn)ANG T,QIAN P,COLLINS O,HUI Z,MA

      F W,HAN Y P. A Ma10 gene encoding P- type ATPase is involved

      in fruit organic acid accumulation in apple[J]. Plant Biotechnology

      Journal,2019,17(3):674-686.

      [42] WANG X C,CHANG L L,TONG Z,WANG D Y,QI Y,WANG

      D,JIN X,YANG Q,WANG LM,SUN Y,HUANG Q X,GUO A

      P,PENG M. Proteomics profiling reveals carbohydrate metabolic

      enzymes and 14-3-3 proteins play important roles for starch

      accumulation during cassava root tuberization[J]. Scientific Reports,

      2016,6(1):1-15.

      [43] LIU J P,SUN X J,LIAO W C,ZHANG J H,LIANG J S,XU W

      F. Involvement of OsGF14b adaptation in the drought resistance

      of rice plants[J]. Rice,2019,12(1):1-7.

      [44] 呂慧,吉雪花,張中榮,朱冉冉,王世寧,謝雪果,袁雷. 制干辣

      椒果實(shí)辣椒素對(duì)干旱、鹽及其雙重脅迫的響應(yīng)[J]. 中國(guó)瓜菜,

      2022,35(2):78-84.

      L? Hui,JI Xuehua,ZHANG Zhongrong,ZHU Ranran,WANG

      Shining,XIE Xueguo,YUAN Lei. Capsaicin of dry pepper fruit

      grown under drought,salt and combined stress condition[J]. China

      Cucurbits and Vegetables,2022,35(2):78-84.

      [45] SUN G L,XIE F L,ZHANG B H. Transcriptome-wide identification

      and stress properties of the 14-3-3 gene family in cotton

      (Gossypium hirsutum L.) [J]. Functional & Integrative Genomics,

      2011,11(4):627-636.

      [46] LUO J L,TANG S H,PENG X J,YAN X H,ZENG X H,LI J,

      LI X F,WU G. Elucidation of cross-talk and specificity of early

      response mechanisms to salt and PEG-simulated drought stresses

      in Brassica napus using comparative proteomic analysis[J].

      PLoS One,2015,10(10):e0138974.

      [47] CHEN Y X,ZHOU X J,CHANG S,CHU Z L,WANG H M.

      Calcium-dependent protein kinase 21 phosphorylates 14-3-3 proteins

      in response to ABA signaling and salt stress in rice[J]. Biochemical

      and Biophysical Research Communications,2017,493

      (4):1450-1456.

      [48] HE Y,ZHANG Y,CHEN L H,WU C L,LUO Q C,ZHANG F,

      WEI Q H,LI K X,CHANG J L,YANG G X,HE G Y. A member

      of the 14- 3- 3 gene family in Brachypodium distachyon,

      BdGF14d,confers salt tolerance in transgenic tobacco plants[J].

      Frontiers in Plant Science,2017,8:340-353.

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