張金媛,顧銀銀,葛玲玲,李立文
(1.張家港第一人民醫(yī)院針灸康復科,江蘇 張家港 215600;2.張家港第一人民醫(yī)院中醫(yī)科,江蘇 張家港 215600;3.張家港市中醫(yī)醫(yī)院針灸科,江蘇 張家港 215600)
失眠是指入睡困難、睡眠中途易醒、睡眠時間減少或睡眠質量低下,對日常工作和生活會造成不同程度的影響[1]。目前,臨床常用鎮(zhèn)定類藥物進行治療,短期內有效,但長期治療效果尚未得到證明,鎮(zhèn)定類藥物會對記憶、反應能力帶來一定的影響,同時患者會對鎮(zhèn)定類藥物產生一定的依賴性[2]。研究[3-4]表明,針灸在治療失眠的過程中既有良好的療效,且不良反應方面具有獨特的優(yōu)勢,但其作用機制尚不明確。失眠與機體免疫能力下降有關,且TLR/NF-κB通路是介導免疫功能的重要通路,因此推測電針對失眠癥的調控作用與TLR/NF-κB通路有關。內關作為八脈交會穴,能寧心安神、寬胸理氣,具有主治療失眠等相關病癥的功效[5]。本研究建立失眠癥大鼠模型,對雙側內關進行電針,探究電針通過調控TLR/NF-κB通路對失眠癥大鼠的作用。
SPF級、SD雄性大鼠,6周齡,體質量175~230 g,平均(200±15) g,購于南京醫(yī)科大學,許可證為[生產許可SCXK(蘇)2021-0001]。
氯苯丙氨酸(PCPA)購于上海易恩化學技術有限公司;NaOH和HCL溶液購入西格瑪奧德里奇(上海)貿易有限公司;安定注射液(地西泮)(國藥準字H62020554,甘肅蘭藥藥業(yè)集團有限責任公司);TNF-α、sTNF-RⅡ酶聯(lián)免疫試劑盒購于上海酶聯(lián)生物科技有限公司;FITC標記F4/80單抗,PE標記TLR3、TLR4單抗均購于北京百奧萊博科技有限公司;總RNA提取試劑盒購于愛必信(上海)生物科技有限公司;TRIzol試劑盒、逆轉錄試劑盒及熒光定量PCR試劑盒均購于上海恪敏生物科技有限公司;兔抗大鼠MyD88、TAB2、NF-kB一抗、山羊抗兔二抗均購于北京百奧萊博科技有限公司。
華佗牌SDZ-Ⅱ電子針療儀及一次性無菌針灸針(規(guī)格:0.25 mm×25 mm)均購于蘇州醫(yī)療用品廠有限公司;酶聯(lián)免疫以檢測儀(型號:BIOBASE1001,濟南來寶醫(yī)療器械有限公司);流式細胞儀[型號:CytoFLEX,貝克曼庫爾特國際貿易(上海)有限公司];美國伯樂高壓電泳儀(型號:Powerpac HV,上海奧陸生物科技有限公司)。
1.3.1 大鼠模型建立及分組 根據(jù)失眠動物造模法[6]進行模型建立,即氯苯丙氨酸(PCPA)造模法,用NaOH和HCL水溶液,將42 mL生理鹽水調至pH為7.8左右的弱堿性溶液,取1.25 g PCPA,用配置好的弱堿性溶液配制為混懸液(300 mg·kg-1),每日1次,連續(xù)腹腔注射2 d。當?shù)?次注射28~30 h后,大鼠晝夜節(jié)律消失,而對照組大鼠晝夜節(jié)律正常,即大鼠失眠模型建立成功。
選用40只雄性大鼠,隨機選取10只為對照組,不作處理,其余大鼠均成功建立失眠模型,并隨機分為模型組,安定組及電針組,每組10只。
1.3.2 藥物處理 建模成功后,根據(jù)人與大鼠的體質量及給藥劑量換算公式[7],安定組腹腔注射安定注射液(地西泮)0.92 mg· kg-1·d-1;電針對雙側內關進行針刺,設置電針儀參數(shù)為電流強度2 mA,頻率2/15 Hz,留針20 min,隔日1次,均連續(xù)治療15 d共8次;對照組與模型組腹腔注射等量的生理鹽水。
1.3.3 酶聯(lián)免疫法檢測大鼠血清腫瘤壞死因子α(TNF-α)、可溶性人腫瘤壞死因子受體Ⅱ(sTNF-RⅡ)水平 治療后,對大鼠進行麻醉處理,腹腔注射40 mg· kg-1,2%戊巴比妥鈉,采集5 mL腹主動脈血,室溫靜置2 h,4 000 rpm低溫(4℃)離心10 min,取上清液。根據(jù)酶聯(lián)免疫試劑盒說明書,將標準品配制不同的濃度,并加入上清液50 μL,混勻后依次加入酶標記物,顯色劑進行顯色,最終加入終止液,使反應終止,采用酶聯(lián)免疫檢測儀檢測TNF-α、sTNF-RⅡ測光密度值,根據(jù)標準曲線計算待測樣濃度。
1.3.4 流式細胞術檢測大鼠脾臟CD4+、CD5+調節(jié)性T細胞(Treg) 采集血液后處死,取出脾臟,每組5只大鼠脾臟研磨后制成脾細胞混液。取部分脾臟細胞懸液,離心(1 500 rpm,5 min)后棄上清液,加入200 μL溶血劑混勻,溫水?。?0℃)15 min,離心后棄去上清液,沖洗2遍,加入PBS緩沖液,制備1×108·mL-1細胞懸液。吸取10 μL樣本加入流式管,分別加入FITC標記CD4單抗與PE標記CD25單抗各5 μL;冰浴30 min,沖洗后用流式細胞儀進行檢測。
1.3.5 流式細胞術檢測大鼠脾臟單核細胞表面TLR3、TLR4 取制備好的1×108·mL-1脾臟細胞懸液10 μL,分別加入FITC標記F4/80單抗,PE標記TLR3、TLR4單抗各5 μL,冰浴30 min后沖洗;分別加入TLR3、TLR4單抗,冰浴30 min后沖洗。采用流式細胞儀對脾臟單核細胞表面TLR3、TLR4進行檢測。
1.3.6 Western Blot檢測大鼠脾臟MyD88、TAB2、NF-kB蛋白相對表達水平 另5只大鼠脾臟迅速置于液氮中保存,取50~100 mg冷凍保存的脾臟組織,研磨成勻漿,用裂解液對脾臟組織進行裂解,測定脾臟組織的蛋白濃度。采用電泳儀進行電泳,分離目的蛋白質,轉膜后進行1 h封閉,根據(jù)一抗說明書進行稀釋,分別加入MyD88、TAB2、NF-kB及內參一抗、二抗,進行孵育,最后經顯影得到結果。(蛋白相對表達量=目的蛋白灰度值÷β-Actin 灰度值)[8]。
1.3.7 RT-PCR檢測大鼠脾臟TLR3、TLR4、MyD88、TAB2、NF-kB mRNA表達情況 取50~100 mg冷凍保存的脾臟組織,根據(jù)TRIzol試劑盒說明書提取脾臟總RNA,并檢測總RNA的純度及濃度,以總RNA為模板,逆轉錄得到cRNA。取2μLcDNA,與20μL反應體系中進行擴增(2 μL SYBR,上、下游引物各1 μL,純水加至20 μL);PCR擴增條件:預變性95 ℃,10 min,變性95 ℃,10 s,退火延伸,60 ℃,34 s,擴增40個循環(huán)[9]。以β-actin為內參,引物序列見表1。
表1 各基因PCR引物序列
用SPSS 22.0軟件分析數(shù)據(jù),符合正態(tài)分布的計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,多樣本計量資料比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
見表2。
表2 各組血清TNF-α、sTNF-RⅡ水平比較(±s,n= 70)
表2 各組血清TNF-α、sTNF-RⅡ水平比較(±s,n= 70)
注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與安定組比較,▲P<0.05
組別 TNF-α/(pg·mL-1 ) sTNF-RⅡ/(ng·mL-1 )對照組 81.67±9.28 1.21±0.31模型組 102.68±12.82# 2.23±0.59#安定組 90.42±9.47#△ 1.75±0.42#△電針組 82.35±10.13△▲ 1.23±0.34△▲
見表3。
表3 各組脾臟CD4+、CD4+CD5+ Treg比較(±s,n = 10) %
表3 各組脾臟CD4+、CD4+CD5+ Treg比較(±s,n = 10) %
注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與安定組比較,▲P<0.05
組別 CD4+ Treg CD4+CD25+ Treg對照組 4.58±0.93 1.31±0.11模型組 2.46±0.41# 4.03±0.01#安定組 3.64±0.56#△ 2.33±0.05#△電針組 4.97±0.87△▲ 1.40±0.07△▲
見表4。
表4 各組脾臟單核細胞表面TLR3、TLR4表達情況比較(±s,n= 10)
表4 各組脾臟單核細胞表面TLR3、TLR4表達情況比較(±s,n= 10)
注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與安定組比較,▲P<0.05
組別 TLR3 TLR4對照組 386.18±25.34 316.57±22.11模型組 524.46±35.71# 468.43±31.61#安定組 425.64±31.56#△ 367.13±26.65#△電針組 395.97±26.63△▲ 323.41±23.21△▲
見表5、圖1。
表5 各組脾臟MyD88、TAB2、NF-kB蛋白表達情況比較(±s,n= 10)
表5 各組脾臟MyD88、TAB2、NF-kB蛋白表達情況比較(±s,n= 10)
注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與安定組比較,▲P<0.05
組別 MyD88 TAB2 NF-kB對照組 1.43±0.24 1.88±0.27 0.87±0.07模型組 3.21±0.35# 3.61±0.34 3.67±0.21#安定組 2.37±0.24#△ 2.11±0.30 2.59±0.14#△電針組 1.51±0.28△▲ 1.64±0.24 0.80±0.08△▲
圖1 各組脾臟MyD88、TAB2、NF-kB蛋白免疫印跡
見表6。
表6 各組脾臟TLR3、TLR4、MyD88、TAB2、NF-kB mRNA表達情況比較(±s,n= 10)
表6 各組脾臟TLR3、TLR4、MyD88、TAB2、NF-kB mRNA表達情況比較(±s,n= 10)
注:與對照組比較,# P<0.05;與模型組比較,△P<0.05;與安定組比較,▲P<0.05
組別 TLR3 mRNA TLR4 mRNA MyD88 mRNA TAB2 mRNA NF-kB mRNA對照組 0.97±0.07 0.98±0.05 0.95±0.06 1.03±0.05 1.04±0.07模型組 2.07±0.66# 2.25±0.52# 1.45±0.27# 2.24±0.31# 3.01±0.74#安定組 1.27±0.21#△ 1.19±0.19#△ 1.21±0.23#△ 1.07±0.25#△ 1.56±0.34#△電針組 0.90±0.18△▲ 0.87±0.21△▲ 1.06±0.22△▲ 0.81±0.31△▲ 1.17±0.29△▲
失眠的作用機制復雜,研究證實,針灸對于神經遞質具有一定的調節(jié)作用,通過調節(jié)中樞神經,從而改善睡眠[10]。炎癥細胞水平受到心情、疼痛等精神狀態(tài)的影響,有研究[11]顯示在抑郁癥患者的炎癥因子水平異常,IL-6、TNFα水平明顯升高。另外失眠還會影響機體的免疫功能,但其作用機制尚不明確。NGF/TrkA通路是介導炎癥反應與免疫作用的重要通路,因此推測電針對于失眠癥的調節(jié)可能與NGF/TrkA通路有關[12]。目前對于NGF/TrkA通路在失眠癥中的研究較少,本研究通過建立失眠癥大鼠模型,探究電針對該通路的調節(jié)作用[13]。
TNF的表達受到晝夜節(jié)律的影響,參與睡眠的調節(jié),相關研究[12]表明,向家兔腦或靜脈注射TNF,能夠延長其睡眠時間。TNF-α與其他因子共同激活免疫反應,sTNF-R為TNF-α受體,能夠反應TNF-α的活性[13]。本研究中模型組TNF-α、sTNF-RⅡ水平升高,即失眠癥會促進機體炎癥反應的發(fā)生,而安定注射液及電針會使機體TNF-α、sTNF-RⅡ水平,降低機體炎癥反應。其中電針的效果更明顯,使炎癥因子恢復至正常機體水平。CD4+CD25+Treg能夠直接反應機體的免疫情況,正常狀態(tài)下,CD4+CD25+Treg能夠維持機體的免疫耐受,防止機體過免疫,而非正常狀態(tài)下,CD4+CD25+Treg或導致機體出現(xiàn)免疫抑制,降低T細胞的增殖能力,導致機體免疫能力下降,相反CD4+Treg在炎癥存在的情況下,則具有抑制炎癥的作用[14]。本研究中模型組CD4+Treg占比降低,而CD4+CD25+Treg占比升高,說明在失眠的狀態(tài)下,機體處于炎癥狀態(tài),免疫力降低,而經過西藥治療或電針治療后,CD4+Treg占比升高,而CD4+CD25+Treg占比降低,表明機體炎癥減少,免疫能力提高,提示藥物治療與電針治療均有一定作用,其中電針效果更明顯。
當機體受到外界細菌或病毒入侵時,機體會激活免疫系統(tǒng)抵抗病原體的入侵,也可通過炎癥反應,激活細胞因子殺死病原體[15]。有研究[16]證實,受到外界感染時,會引起發(fā)熱和促進睡眠,睡眠能夠對免疫細胞與細胞因子的活性造成一定影響,睡眠與機體的免疫功能與炎癥反應存在某種聯(lián)系。MyD88依賴型是TLR/NF-κB通路的經典途徑,該途徑中NF-κB被激活,并與TNF-α與IL-1β的啟動子結合,激活機體的免疫系統(tǒng),調節(jié)炎癥反應[17]。研究結果顯示,模型組TLR3、TLR4、MyD88、TAB2、NF-kB mRNA及MyD88、TAB2、NF-kB蛋白表達均上調,表明失眠或激活TLR/NF-κB通路,引起炎癥反應TNF-α、sTNF-RⅡ等分泌升高,同時導致CD4+Treg占比降低,而CD4+CD25+Treg占比升高,機體免疫能力下降。本研究大鼠經過電針治療后,TLR3、TLR4、MyD88、TAB2、NF-kB mRNA 及 MyD88、TAB2、NF-kB蛋白表達下調,TLR/NF-κB通路受到抑制,提示電針雙側內關穴能夠抑制TLR/NF-κB信號通路,降低炎癥反應,提高機體免疫能力,從而緩解失眠的癥狀,改善睡眠。