李 瑪, 李 云, 鄭 雷,3, 蘇 鈦, 熊永興, 李啟青, 邱 斌,4
(1.云南農(nóng)業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院, 昆明 650031; 2.云南省藥物研究所, 昆明 650111;3.四川中醫(yī)藥高等專科學(xué)校, 四川 綿陽 621000; 4.云南中醫(yī)藥大學(xué), 昆明 650500)
隨著中醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,掠奪式采挖野生資源造成極大破壞。中藥材人工種植就成了解決中藥資源瀕危狀況、保證中藥材質(zhì)量、保護(hù)中藥資源原生環(huán)境的必由之路[1]。種子是藥材生產(chǎn)活動的源泉[2],優(yōu)良的種子是生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)中藥材的先決條件[3],開展種子檢驗規(guī)程和種子質(zhì)量分級研究,有助于在種植藥材前選用優(yōu)良的種子,從而能夠從源頭上控制中藥材的生產(chǎn)活動,保證中藥材的質(zhì)量與產(chǎn)量[4-7]。
五加科人參屬植物珠子參(PanaxjaponicasC. A. Mey. var.major(Burk.) C. Y. Wu et K. M. Feng)為中藥材珠子參的基源植物之一,其以干燥根莖入藥[8],以皂苷類、多糖等為主要藥效成分[9],具有補(bǔ)肺養(yǎng)陰,祛瘀止痛,止血的功效,用于氣陰兩虛,煩熱口渴,虛勞咳嗽,跌撲損傷,關(guān)節(jié)痹痛,咳血,吐血,衄血,崩漏,外傷出血[8]。珠子參野生資源較少,隨著藥材用量的增加,野生資源已難以滿足市場需求,目前已開展珠子參人工引種馴化種植,并取得了一定成果[10-12],形成了一定的種植規(guī)模。當(dāng)前,尚無關(guān)于珠子參種子檢驗和種子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的研究,為了更好地規(guī)范珠子參藥材的種植活動,提高珠子參藥材的品質(zhì),保證廣大藥農(nóng)的利益,本研究測定珠子參種子凈度、千粒重、真實性、含水量、生活力、發(fā)芽率等指標(biāo),系統(tǒng)研究珠子參種子檢驗方法,并在此基礎(chǔ)上制定了珠子參種子的檢驗規(guī)程,可為珠子參種子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的研究提供依據(jù)。同時,也可進(jìn)一步規(guī)范珠子參藥材的種植。
珠子參種子收集于云南省麗江市各珠子參栽培區(qū),經(jīng)中科院昆明植物研究所李恒研究員鑒定為五加科人參屬植物珠子參(PanaxjaponicasC. A. Mey. var. major(Burk.) C. Y. Wu et K. M. Feng)的種子。
按《農(nóng)作物種子檢驗規(guī)程 扦樣》的規(guī)定執(zhí)行。
按《農(nóng)作物種子檢驗規(guī)程 凈度分析》的規(guī)定執(zhí)行。
隨機(jī)數(shù)取種子100粒,測量記錄其大小、形狀、顏色,重復(fù)3次。
種子千粒重測定采用百粒法、五百粒法和千粒法3種方法進(jìn)行,百粒法、五百粒法計算變異系數(shù),千粒法計算重復(fù)間差數(shù)與平均數(shù)之比。
參照《農(nóng)作物種子檢驗規(guī)程 水分測定》,采用高恒溫(131±2)℃烘干法和低恒溫(103±2)℃烘干法對種子含水量進(jìn)行測定。
2.6.1染色時間的確定
取凈種子充分浸泡,將種子沿種臍縱切,取半粒置于培養(yǎng)皿中,配制0.1%TTC溶液進(jìn)行染色,染色溫度15 ℃,染色時間設(shè)為2 h,4 h,6 h,16 h和18 h,觀察并計數(shù)。試驗重復(fù)3次,每重復(fù)50粒種子。
2.6.2TTC濃度和染色溫度確定
采用正交試驗處理。TTC濃度為0.1%、0.3%和0.5%,染色溫度為15 ℃、20 ℃、25 ℃和30 ℃,采用2.6.1所確定的染色時間進(jìn)行染色,觀察并計數(shù)。試驗重復(fù)3次,每重復(fù)50粒種子。
珠子參種子具有后熟特性,需經(jīng)過后熟才能完成萌發(fā)[13]。珠子參種子采集后,以新鮮種子為材料,按趙新禮[14]的方法,將種子與濕沙按照體積比1∶3混合均勻,置于15 ℃下沙藏160 d,待種子完成形態(tài)后熟后進(jìn)行發(fā)芽試驗。
2.7.1發(fā)芽前處理
采用自來水(ck)、無菌水、0.1%高錳酸鉀、1%次氯酸鈉分別對珠子參種子浸種10 min,采用沙上發(fā)芽床, 在20 ℃光暗交替(光照12 h,黑暗12 h)條件下進(jìn)行發(fā)芽試驗,觀察并計數(shù),觀察種子污染率。每個處理50粒種子,3次重復(fù)。
2.7.2適宜發(fā)芽床的確定
設(shè)置紙上、沙上、蛭石3種發(fā)芽床條件,在20 ℃光暗交替(光照12 h,黑暗12 h)條件下進(jìn)行發(fā)芽試驗,觀察統(tǒng)計種子發(fā)芽情況。每個處理50粒種子,3次重復(fù)。
2.7.3適宜發(fā)芽溫度的確定
設(shè)置15、20、25 ℃分別作為發(fā)芽溫度,發(fā)芽床為沙上,光照條件設(shè)置為光暗交替(光照12 h,黑暗12 h),觀察統(tǒng)計種子發(fā)芽情況。每個處理50粒種子,3次重復(fù)。
2.7.4光照對種子發(fā)芽的影響
發(fā)芽床為沙上,發(fā)芽溫度20 ℃,光照條件設(shè)置為光暗交替(光照12 h,黑暗12 h)和24 h全黑暗處理,觀察統(tǒng)計種子發(fā)芽情況。每個處理50粒種子,3次重復(fù)。
2.7.5發(fā)芽計數(shù)時間的確定
根據(jù)種子發(fā)芽表現(xiàn),確定初次計數(shù)時間和末次計數(shù)時間。以珠子參種子胚根伸出種皮2 mm時的試驗天數(shù)作為發(fā)芽初次計數(shù)時間,種子發(fā)芽數(shù)達(dá)到最高后再無發(fā)芽種子出現(xiàn)時的發(fā)芽天數(shù)為末次計數(shù)時間。
一是涉農(nóng)專項轉(zhuǎn)移支付項目增加容易取消難。新一輪財稅體制改革以來,涉農(nóng)專項轉(zhuǎn)移支付目錄得到了較大幅度的壓減,但這種整合多數(shù)是小類歸大類,是物理整合而不是化學(xué)整合,原有的條塊分配模式基本沒有打破。根據(jù)審計署的報告顯示,一些專項轉(zhuǎn)移支付歸并后管理方式并沒有發(fā)生根本性改變,仍存在“碎片化、部門化、司處化”的現(xiàn)象。從地方情況看,涉農(nóng)資金的統(tǒng)籌整合任務(wù)也迫在眉睫。名目繁多的涉農(nóng)資金,大部分以獨立、具體的項目形式“戴帽”下達(dá)。
2.7.6結(jié)果統(tǒng)計
試驗結(jié)果以發(fā)芽率表示。
發(fā)芽率(%) =(試驗結(jié)束時發(fā)芽的種子數(shù)/供試種子總數(shù))×100%。
珠子參凈度分析試樣的最小重量為40 g,送驗樣品須為凈度分析的10倍以上,珠子參種子凈度分析需要種子400 g。
本次試驗所用的珠子參種子采集自各產(chǎn)區(qū),并未摻入其他植物的種子,采集后在實驗室充分洗去果皮并陰干表面水分,無雜質(zhì),故本次試驗中的珠子參種子凈度為100%。
珠子參果實為核果狀漿果,成熟后為鮮紅色帶黑色,果實呈腎形或球狀腎形,含種子1~3粒,偶4?;?粒,種子白色或灰黑色,側(cè)扁或三角狀卵形,表面粗糙,種子平直的一面有種脊,靠基部有一圓形吸水孔,種子胚乳豐富,白色,胚細(xì)小,位于胚乳基部,歪斜。種子長3.40~8.95 mm,寬3.23~7.85 mm,厚3.11~8.57 mm。
珠子參種子重量測定結(jié)果(表1)顯示,百粒法及五百粒法條件下測定千粒重,變異系數(shù)(CV)均大于4.0%,測定值無效,所以不能采用百粒法及五百粒法測定珠子參種子千粒重;采用千粒法測定時,重復(fù)間差數(shù)與平均數(shù)之比小于5.0%,測定值有效。因此,珠子參種子重量的測定方法確定為千粒法。
表1 珠子參種子重量測定
圖1 高恒溫烘干法測定珠子參種子含水量
圖2 高恒溫烘干法和低恒溫烘干法種子含水量測定比較
3.6.1珠子參種子生活力測定染色時間確定
不同染色時間測定的珠子參種子生活力結(jié)果見表2。珠子參種子染色16 h后測定的種子生活力基本穩(wěn)定,種子生活力達(dá)到97%以上,因此珠子參種子生活力測定的適宜染色時間為16 h。
表2 珠子參種子染色時間分析
3.6.2珠子參種子生活力測定染色TTC濃度和染色溫度確定
TTC濃度和染色溫度影響珠子參種子生活力測定。由表3可看出,同一TTC濃度下隨著溫度的升高,珠子參種子生活力測定值降低,同一溫度下隨著TTC濃度的升高珠子參種子生活力測定值呈降低趨勢。通過TTC濃度和染色溫度的正交試驗處理可得出,試驗處理1、試驗處理2、試驗處理3和試驗處理7測定的珠子參種子生活力值無顯著差異,均大于等于96.0%。因此珠子參種子生活力測定的適宜TTC濃度和染色溫度為:TTC濃度0.1%,染色溫度15~25 ℃或TTC濃度0.3%,染色溫度25 ℃。由于TTC具有毒性,綜合成本及染色效果考慮,建議珠子參種子生活力測定的TTC濃度為0.1%,染色溫度為15~25 ℃。
表3 珠子參種子生活力測定
3.7.1珠子參種子發(fā)芽前處理
由表4可見,在珠子參種子發(fā)芽過程中,種子容易受到污染,未經(jīng)消毒殺菌處理的種子污染嚴(yán)重,經(jīng)過高錳酸鉀及次氯酸鈉溶液處理的種子,發(fā)芽率明顯高于自來水和無菌水處理的種子,采用高錳酸鉀和次氯酸鈉溶液處理的種子間發(fā)芽率差異不明顯。根據(jù)實驗結(jié)果,在進(jìn)行珠子參種子發(fā)芽試驗前,可采用0.1%高錳酸鉀溶液或1%次氯酸鈉溶液對珠子參種子進(jìn)行浸泡,時間為10 min,已達(dá)到種子消毒的目的。
表4 發(fā)芽前不同處理對珠子參種子發(fā)芽率的影響
3.7.2適宜發(fā)芽床的確定
由表5可見,紙上、沙上兩種處理間種子發(fā)芽率差異不明顯,紙上和沙上兩種發(fā)芽床的發(fā)芽率明顯高于蛭石發(fā)芽床。因此,沙上和紙上均可作為珠子參種子發(fā)芽床,從結(jié)果看,采用沙上作為發(fā)芽床的種子發(fā)芽率高于紙上發(fā)芽床,并且本試驗沙上發(fā)芽床更利于水分的保存,因此珠子參種子發(fā)芽率測定最適發(fā)芽床為沙上。
表5 不同發(fā)芽床對株子參種子發(fā)芽率的影響
3.7.3適宜發(fā)芽溫度的確定
由表6可見,珠子參種子在20 ℃條件下發(fā)芽率最高,15 ℃次之,25 ℃條件下發(fā)芽率最差。因此珠子參種子最適發(fā)芽溫度為20 ℃。
表6 溫度對珠子參種子發(fā)芽率的影響
3.7.4光照條件的確定
由表7可見,光暗交替條件和全黑暗條件下珠子參種子均可正常發(fā)芽,但是種子發(fā)芽以后,在無光條件下長勢較弱,因此,珠子參種子發(fā)芽時選擇光暗交替(光照12 h,黑暗12 h)條件對其進(jìn)行培養(yǎng)。
表7 光照對珠子參種子發(fā)芽率的影響
3.7.5發(fā)芽計數(shù)時間的確定
種子置發(fā)芽床后第11天胚根突破種皮約2 mm,以后種子發(fā)芽數(shù)增多,第76天后無種子發(fā)芽,發(fā)芽基本結(jié)束,珠子參種子沙藏后發(fā)芽周期為80 d左右。因此珠子參種子發(fā)芽初次計數(shù)時間為11 d,末次計數(shù)時間為80 d。
中藥材種子是中藥材種植業(yè)賴以發(fā)展和藥農(nóng)賴以生存的最基本的生產(chǎn)資料,種子檢驗則是保證中藥材種子質(zhì)量的重要措施和手段[3]。開展中藥材種子質(zhì)量評價技術(shù)和標(biāo)準(zhǔn)的研究是我國中藥材規(guī)范化生產(chǎn)中的重要內(nèi)容[15]。近年來,珠子參藥材用量呈增加趨勢,引種栽培面積亦隨之?dāng)U大,因此,開展珠子參種子檢驗規(guī)程研究,對于保護(hù)珠子參資源,規(guī)范珠子參藥材生產(chǎn)過程,從源頭上保證藥材質(zhì)量具有重要的意義。
種子凈度是衡量種子品質(zhì)的一項重要指標(biāo)。用于本次研究的珠子參種子為自行到產(chǎn)區(qū)收集珠子參果實洗凈所得,凈度為100%,因此,未將凈度作為制定珠子參種子檢驗規(guī)程指標(biāo)。
種子發(fā)芽率可直接反映田間出苗率,是確定播種和用種量的主要依據(jù)[16]。珠子參種子具有后熟特性,在進(jìn)行種子發(fā)芽率檢測時,直接用剛采收的新鮮種子進(jìn)行發(fā)芽試驗,在整個試驗期內(nèi),種子很難發(fā)芽,并且隨著發(fā)芽時間的延長,種子大多受污染而霉?fàn)€,不能對種子發(fā)芽率進(jìn)行有效的檢測。采用經(jīng)過后熟處理的種子進(jìn)行發(fā)芽率測定,能夠獲得有效的發(fā)芽率測定數(shù)據(jù)。因此,在進(jìn)行珠子參種子發(fā)芽率測定前,需對種子進(jìn)行后熟處理。
在統(tǒng)計珠子參種子發(fā)芽計數(shù)天數(shù)時發(fā)現(xiàn),在15 ℃下進(jìn)行發(fā)芽率檢測的種子,置床8 d后即發(fā)現(xiàn)發(fā)芽的種子,但是其最終發(fā)芽率不如20 ℃下的種子,因此,計數(shù)時間采用20 ℃下的11~80 d。
本試驗以云南產(chǎn)新鮮珠子參種子為材料,系統(tǒng)的研究了珠子參種子扦樣、凈度分析、真實性鑒定、含水量、千粒重測定、發(fā)芽率測定的方法,制定了適宜珠子參種子的檢驗規(guī)程(表8),能夠為珠子參藥材的規(guī)范化生產(chǎn)提供有力的支撐。
表8 珠子參種子檢驗規(guī)程