張 雯, 王明鈺, 尤靜觀, 倪 莉
(福州大學(xué) 食品科學(xué)技術(shù)研究所 福州350108)
冠突散囊菌(Eurotiumcristatum)是發(fā)菌科散囊菌屬的一種益生真菌,俗稱“金花”菌,是茯磚茶“發(fā)花”過(guò)程中的優(yōu)勢(shì)菌。 目前報(bào)道的散囊菌屬真菌在生長(zhǎng)代謝過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生多種次級(jí)代謝產(chǎn)物,被認(rèn)為有抑菌活性[1-5]。 冠突散囊菌在茯磚茶中生長(zhǎng),該過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生具有抑菌活性的代謝產(chǎn)物,抑制其它微生物的生長(zhǎng), 并大量的繁殖成為優(yōu)勢(shì)菌[6]。從黑茶中分離得到的冠突散囊菌發(fā)酵液的乙酸乙酯提取物, 對(duì)枯草芽孢桿菌和白色鏈球菌具有抑菌性, 且有良好的熱穩(wěn)定性和酸堿穩(wěn)定性[7]。Du 等[8]從冠突散囊菌EN-220 中分離得到多種芳香族糖苷,對(duì)大腸桿菌具有抑制活性。
本課題組在前期研究中分離得到1 株冠突散囊菌FS-10, 其發(fā)酵濾液對(duì)魚(yú)源腐敗菌具有明顯的抑制作用。為此,本研究采用響應(yīng)面法優(yōu)化冠突散囊菌FS-10 產(chǎn)抑菌活性物質(zhì)的液體發(fā)酵培養(yǎng)基;采用高效液相色譜(HPLC)、基質(zhì)輔助激光解吸電離/飛行時(shí)間質(zhì)譜(MALDI-TOF-MS)和傅里葉紅外光譜(FT-IR)對(duì)冠突散囊菌FS-10 發(fā)酵液中的抑菌活性物質(zhì)進(jìn)行分離純化和鑒定。
1.1.1 供試菌株 冠突散囊菌(E. cristatum)FS-10,保藏于福州大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)研究所;食源性腐敗菌,包括嗜冷菌(Psychrophile)DHY-1,希瓦氏菌(Shewanella spp.)JC-20、HC-44、R3-2,假單胞菌(Pseudomonas spp.)LP-3、LP-6,分離自大黃魚(yú)魚(yú)肉與魚(yú)腸, 保藏于福州大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)研究所。
1.1.2 菌體培養(yǎng) 抑菌活性測(cè)定用菌液體培養(yǎng)。用無(wú)菌接種環(huán)取1 環(huán)供測(cè)菌, 接入牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基(牛肉膏0.5 g,氯化鈉0.5 g,蛋白胨1 g,蒸餾水定容100 mL,pH 7.0~7.2,121 ℃、高壓滅菌30 min), 于恒溫振蕩培養(yǎng)箱中30 ℃,200 r/min培養(yǎng)24 h,將菌液稀釋至1 000 倍,得到濃度約為1×105CFU/mL 的供測(cè)菌菌懸液,備用。
冠突散囊菌菌株FS-10 發(fā)酵無(wú)菌上清液的制備方法:采用菌塊接種法制備發(fā)酵上清液[9]。 將菌株FS-10 在馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基 (PDA)(馬鈴薯200 g,無(wú)水葡萄糖20 g,瓊脂20 g,蒸餾水1 000 mL,pH 自然)平板上培養(yǎng)7 d,取1 個(gè)直徑為8 mm 的菌塊接入馬鈴薯葡萄糖液體 (PDL)培養(yǎng)基中, 在恒溫振蕩培養(yǎng)箱中以28 ℃,200 r/min條件培養(yǎng)7 d。 培養(yǎng)結(jié)束后,13 000 r/min 離心15 min,上清液用0.22 μm 濾膜過(guò)濾,得到無(wú)菌發(fā)酵濾液,于4 ℃保存,備用。
采用濁度法測(cè)定抑菌活性[10-11]。 取1 mL 牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基注入微孔板中, 加入10 μL 1.1.2 節(jié)得到的指示菌菌懸液, 在試驗(yàn)組中加入100 μL 無(wú)菌發(fā)酵濾液或待測(cè)組分,在對(duì)照組中加入100 μL PDL 培養(yǎng)基, 將試驗(yàn)組和對(duì)照組同時(shí)置于30 ℃,200 r/min 的培養(yǎng)箱中振蕩培養(yǎng)24 h。
培養(yǎng)結(jié)束后,測(cè)定并記錄各組在波長(zhǎng)600 nm處的吸光值,抑菌率計(jì)算公式如下:
式(1) 中,A600nm’——對(duì)照組樣品的吸光值;A600nm——試驗(yàn)組樣品的吸光值。
1.3.1 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì) 以無(wú)菌發(fā)酵濾液的抑菌率為響應(yīng)值 (以嗜冷菌DHY-1 為供測(cè)菌), 以葡萄糖為碳源、 硝酸鈉作為氮源, 采用Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)研究碳源、 氮源以及微量元素(氯化鈉、氯化鉀、硫酸鋅、硫酸錳)對(duì)抑菌活性的影響。采用Minitab 軟件對(duì)所選水平進(jìn)行試驗(yàn)設(shè)計(jì)、數(shù)據(jù)處理及模型的建立,設(shè)計(jì)六因素二水平試驗(yàn)優(yōu)化抑菌效果,試驗(yàn)因素與水平見(jiàn)表1。
表1 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素及編碼水平Table 1 The factor and code level of Plackett-Burman experimental design
1.3.2 最陡爬坡試驗(yàn) 以Plackett-Burman 試驗(yàn)得出的回歸方程的系數(shù)(正、負(fù))確定各因素的爬坡方向,以各因素效應(yīng)值的大小確定變化步長(zhǎng),從而快速逼近最大值響應(yīng)值。 最陡爬坡試驗(yàn)除去影響顯著因子,其它各因素均保持不變。
1.3.3 Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì) 從Plackett-Burman 試驗(yàn)結(jié)果確定培養(yǎng)基中對(duì)冠突散囊菌的抑菌物質(zhì)具有顯著影響的因子, 結(jié)合最陡爬坡試驗(yàn)結(jié)果和實(shí)際情況, 選擇下一步試驗(yàn)水平的中心點(diǎn)和各水平的步長(zhǎng)。 設(shè)計(jì)三因素三水平試驗(yàn)優(yōu)化抑菌效果,試驗(yàn)因素與水平見(jiàn)表2。
表2 Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素及編碼水平Table 2 The factor and code level of Box-Behnken experimental design
1.3.4 驗(yàn)證試驗(yàn) 用優(yōu)化得到的培養(yǎng)基成分、質(zhì)量分?jǐn)?shù)條件做3 次平行驗(yàn)證試驗(yàn)。 若所得試驗(yàn)值與預(yù)測(cè)值較接近, 則說(shuō)明該響應(yīng)面模型有參考價(jià)值。
1.4.1 超濾和透析 各組分抑菌活性比較采用截留分子質(zhì)量為10 ku 的超濾膜和7 ku 的透析袋分步收集。 首先采用截留分子質(zhì)量為10 ku 的超濾膜分離菌株FS-10 無(wú)菌發(fā)酵濾液, 得到分子質(zhì)量范圍大于10 u 的濃縮液和分子質(zhì)量小于10 ku 的濾液。凍干后復(fù)溶為質(zhì)量濃度為4 mg/mL 的溶液,分析2 個(gè)組分的抑菌活性。 將活性高的濾液采用截留分子質(zhì)量為7 ku 的透析袋, 將其置于10 倍于樣品溶液體積的去離子水中透析4 h,得到2 個(gè)組分(截留液、透過(guò)液),冷凍干燥后,將凍干粉末復(fù)溶為4 mg/mL 溶液,做抑菌試驗(yàn)。
1.4.2 凝膠色譜柱層析 以葡聚糖凝膠G-75 為填料,選用30 cm×Φ2.6 cm 的層析柱,將1.4.1 節(jié)所得抑菌活性組分的凍干粉加少許緩沖液稀釋?zhuān)?.22 μm 濾膜過(guò)濾后上樣, 用去離子水以0.3 mL/min 的流速洗脫, 在波長(zhǎng)280 nm 處檢測(cè)吸光度,收集各洗脫峰,冷凍干燥備用。 將凍干粉末復(fù)溶為4 mg/mL 的溶液,做抑菌試驗(yàn),選出具有抑菌活性的洗脫峰。
1.4.3 反相高效液相色譜 將1.4.2 節(jié)所得具有抑菌活性的洗脫峰凍干粉加少許緩沖液稀釋?zhuān)?.22 μm 濾膜過(guò)濾后上樣, 采用C18 柱進(jìn)行液相色譜分離。 檢測(cè)波長(zhǎng)分別為280 nm 和220 nm;流動(dòng)相A 為0.01%三氟乙酸水溶液, 流動(dòng)性B 為0.01%三氟乙酸乙腈溶液;進(jìn)樣量10 μL,流速0.3 mL/min。 梯度洗脫條件:0~10 min,80% A、20% B;10~40 min,A 變化為80%~20%,B 為20%~80%;40 ~50 min,20% A、80% B;50 ~60 min,A變化為20%~80%,B 為80%~20%。 富集各組分后,減壓濃縮除去有機(jī)溶劑,取沉淀物質(zhì)用去離子水復(fù)溶為0.4 mg/mL 的樣品溶液,做抑菌試驗(yàn)。
1.4.4 結(jié)構(gòu)鑒定 活性組分委托福建中醫(yī)藥大學(xué)采用基質(zhì)輔助激光誘導(dǎo)解析飛行時(shí)間質(zhì)譜進(jìn)行分子質(zhì)量鑒定。 質(zhì)譜分析采用Autoflex speed MALDI-TOF 質(zhì)譜儀,電噴霧(ESI)正離子模式。采用Nicolet iS50 傅里葉紅外光譜儀對(duì)純化的抑菌組分進(jìn)行結(jié)構(gòu)鑒定。 利用溴化鉀壓片法,在400~4 000 cm-1波段對(duì)樣品進(jìn)行掃描分析。
1.5.1 抑菌譜測(cè)定 按1.1.2 節(jié)所述制備嗜冷菌DHY-1、希瓦氏菌(JC-20、HC-44、R3-2)、假單胞菌(LP-3、LP-6)等6 株細(xì)菌的菌懸液,用1.4.3 節(jié)抑菌活性組分測(cè)定抑菌率。
1.5.2 抑菌濃度測(cè)定 采用兩倍連續(xù)稀釋方法將1.4.3 節(jié)純化得到的抑菌活性組分配成質(zhì)量濃度分 別 為2 000,1 000,500,250,25,62.5,31.25 μg/mL 的樣品溶液, 以0.25 μg/mL 氯霉素為陽(yáng)性對(duì)照,水為空白對(duì)照,PDL 培養(yǎng)基為陰性對(duì)照,以嗜冷菌DHY-1 為指示菌,采用瓊脂擴(kuò)散法[10]做抑菌試驗(yàn),試驗(yàn)重復(fù)3 次。
1.5.3 熱穩(wěn)定性的測(cè)定 取等量 (0.4 mg/mL)將1.4.3 節(jié)純化得到的抑菌活性組分分別置于-20,4,25,100,121 ℃環(huán)境中30 min, 在室溫放置10 min 后,以嗜冷菌DHY-1 為指示菌,做抑菌試驗(yàn),試驗(yàn)重復(fù)3 次。
1.5.4 酸堿穩(wěn)定性的測(cè)定 取等量 (0.4 mg/mL)1.4.3 節(jié)純化得到的抑菌活性組分, 調(diào)節(jié)pH 值分別為2.0,5.0,7.0,9.0,13.0, 室溫放置30 min 后,采用3 mol/L HCl 溶液和NaOH 溶液將樣品調(diào)回原始pH 5.0,加去離子水定容1.5 mL。 以嗜冷菌DHY-1 為指示菌,做抑菌試驗(yàn),試驗(yàn)重復(fù)3 次。
2.1.1 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與分析 采用Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì),以抑菌率為響應(yīng)值,對(duì)葡萄糖、硝酸鈉、氯化鈉、氯化鉀、硫酸鋅、硫酸錳6 個(gè)成分進(jìn)行考察。 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見(jiàn)表3,各因子效應(yīng)分析見(jiàn)表4。
表3 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 3 Design and results of Plackett-Burman experiments
經(jīng)回歸分析得回歸方程:Y (抑菌率)=0.36434+0.03191A+0.06667B+0.01972C+0.00416D-0.00214E+0.00556F。由表4 可知,系數(shù)項(xiàng)A(葡萄糖)、B(硝酸鈉)、C(氯化鉀)3 項(xiàng)因子是培養(yǎng)基中影響菌株FS-10 發(fā)酵液抑菌效果的關(guān)鍵因子(P<0.05)。
表4 Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)回歸各因子效應(yīng)分析Table 4 Regression factor analyses of Plackett-Burman experimental design
2.1.2 最陡爬坡試驗(yàn) 通過(guò)Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)篩選出關(guān)鍵因子,即葡萄糖、硝酸鈉、氯化鉀。最陡爬坡試驗(yàn)以這3 者為考察對(duì)象,固定其它條件不變。 試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表5。
表5 最陡爬坡試驗(yàn)梯度設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 5 Design and results of steepest ascent experiments
由表5 可得,最陡爬坡試驗(yàn)5 組試驗(yàn)的抑菌率整體呈先上升后下降的趨勢(shì)。 在質(zhì)量分?jǐn)?shù)為6.50%無(wú)水葡萄糖、0.65%硝酸鈉、4.00%氯化鉀時(shí),所對(duì)應(yīng)的發(fā)酵液抑菌率最高,為三因素的最大響應(yīng)值區(qū)域。 選擇第4 組作為響應(yīng)面的中心點(diǎn)。
2.1.3 響應(yīng)曲面與驗(yàn)證模型的建立 結(jié)合Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)和最陡爬坡試驗(yàn)所得結(jié)果,利用Minitab 軟件進(jìn)行Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)和數(shù)據(jù)分析,其試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表6。
表6 Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 6 Design and results of Box-Behnken experiments
由表7 可得,G(葡萄糖)和I(氯化鉀)顯著性較高,對(duì)于抑菌率的影響較大(P<0.05)。 二次項(xiàng)中H2、G2、I2的P 值依次增大,H2的顯著性較高。交互項(xiàng)中3 項(xiàng)的P 均大于0.05, 因此GH、GI、HI 之間的交互作用不是很明顯。
表7 Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)回歸系數(shù)和顯著性驗(yàn)證Table 7 Significance test and coefficient of Box-Behnken experimental design
根據(jù)試驗(yàn)設(shè)計(jì)和數(shù)據(jù)分析, 得出冠突散囊菌FS-10 發(fā)酵液抑菌率對(duì)葡萄糖(碳源)、硝酸鈉(氮源)、氯化鉀的二次多項(xiàng)回歸方程為:Y(抑菌率)=0.4904+0.03689G+0.01613H+0.02521I-0.0265G2-0.0319H2+0.0201I2+0.0193GH +0.0085GI -0.0114 HI。
由表8 可以看出該模型的P=0.022,在一定程度上可看出該二次多項(xiàng)模型具有顯著性(P<0.05),方差分析該模型的R2=92.79%,說(shuō)明模型與試驗(yàn)數(shù)據(jù)的吻合性較好。 R2Adj=79.82%, 大于70%,存在相關(guān)性,而與R2值之間差距仍較大。
表8 Box-Behnken 試驗(yàn)設(shè)計(jì)回歸模型分析Table 8 Variance analysis of Box-Behnken experimental design
根據(jù)上述回歸方程運(yùn)用Minitab 軟件繪制響應(yīng)曲面圖與等值線圖,見(jiàn)圖1。
由圖1a、1b 可知, 當(dāng)硝酸鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)保持不變時(shí),隨著葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加,抑菌率提高;當(dāng)葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)在7.0%~7.5%, 硝酸鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)在0.65%~0.75%范圍時(shí),抑菌率較高。該響應(yīng)曲面圖初具模型, 若將葡萄糖和硝酸鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)增大,則出現(xiàn)響應(yīng)曲面完整的高位點(diǎn)。
由圖1c、1d 可知,當(dāng)葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)較低時(shí),抑菌率隨氯化鉀質(zhì)量分?jǐn)?shù)變化不大; 當(dāng)葡萄糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)大于6.5%時(shí),抑菌率增大。 抑菌率響應(yīng)面高點(diǎn)出現(xiàn)在高質(zhì)量分?jǐn)?shù)葡萄糖和高質(zhì)量分?jǐn)?shù)氯化鉀區(qū)域。
由圖1e、1f 可知,當(dāng)氯化鉀質(zhì)量分?jǐn)?shù)不變時(shí),抑菌率隨著硝酸鈉質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增加呈先升后降的趨勢(shì), 抑菌率響應(yīng)面高點(diǎn)出現(xiàn)在硝酸鈉中質(zhì)量分?jǐn)?shù)區(qū)域。
圖1 各因子交互作用的響應(yīng)曲面和等高線圖Fig.1 Surface maps and contour maps for each factor interaction
2.1.4 回歸模型驗(yàn)證試驗(yàn) 利用響應(yīng)優(yōu)化器證實(shí)預(yù)測(cè)值與真實(shí)值之間的擬合程度, 得出培養(yǎng)基最優(yōu)條件為7.5%葡萄糖、0.65%硝酸鈉、4.5%氯化鉀,預(yù)測(cè)抑菌率為54.44%。 以此條件做驗(yàn)證試驗(yàn),其抑菌率為(51.0±4.4)%,說(shuō)明利用響應(yīng)面法優(yōu)化得到的培養(yǎng)基配方條件有參考價(jià)值。
將發(fā)酵液經(jīng)10 ku 超濾膜過(guò)濾后, 活性較高的過(guò)濾液進(jìn)一步采用7 ku 的透析膜透析,各組分進(jìn)行活性測(cè)定,如表9 所示。該透過(guò)液凍干后經(jīng)凝膠色譜分離,得到1 個(gè)高純度的單峰,見(jiàn)圖2,經(jīng)抑菌活性測(cè)定,該峰(4 mg/mL)抑菌率為74.5%。進(jìn)一步利用反相高效液相色譜分離得到6 個(gè)組分(FS-I、FS-II、FS-III、FS-IV、FS-V、FS-VI),如圖3所示。 收集各組分峰,檢測(cè)各組分的抑菌活性,結(jié)果組分FS-IV 和FS-VI 具有明顯的抑菌效果,對(duì)嗜冷菌DHY-1 的半抑制質(zhì)量濃度(IC50)分別為0.4 mg/mL 和0.3 mg/mL。 其余4 個(gè)組分均無(wú)明顯的抑菌作用。具有抑菌活性FS-IV 和FS-VI,采用基質(zhì)輔助激光解吸電離/飛行時(shí)間質(zhì)譜 (MALDITOF-MS)分析,結(jié)果見(jiàn)圖4,兩個(gè)目標(biāo)抑菌活性組分的分子質(zhì)量分別為1 630.8 u 和840.5 u。
表9 超濾和透析后各組分的抑菌活性Table 9 Antibacterial activity of each component after ultrafiltration and dialysis
圖2 凝膠過(guò)濾柱層析洗脫曲線Fig.2 Elution curve of gel filtration column chromatography
圖3 反相高效液相色譜圖Fig.3 RP-HPLC absorption of active compounds
圖4 組分FS-IV 和FS-VI 的MALDI-TOF-MS 圖Fig.4 MALDI-TOF-MS of components FS-IV and FS-VI
利用傅里葉紅外光譜分別掃描經(jīng)由高效液相色譜分離得到的兩個(gè)抑菌組分FS-IV 和FS-VI(圖5)。 組分FS-IV 和組分FS-VI 在3 550~3 200 cm-1范圍出現(xiàn)寬而散的吸收峰,存在締合型羥基;在1 600 cm-1附近顯示C=C 振動(dòng);在1 300 cm-1附近顯示C-N 振動(dòng)。
如圖5a 所示, 標(biāo)志組分FS-IV 在2 934.163 cm-1處的弱吸收峰為C-H 的不對(duì)稱伸縮振動(dòng);1 150~1 060 cm-1范圍為醚或其它化合物中C-OC 的不對(duì)稱伸縮振動(dòng);900 cm-1附近為C-C 振動(dòng);<500 cm-1為C-C-C 振動(dòng)。 綜上,推測(cè)組分FS-Ⅳ是雜多糖衍生化合物。
如圖5b 所示, 標(biāo)志組分FS-Ⅵ在1 092.477 cm-1處的吸收峰和在905.4153,854.3109 m-1和781.9933 cm-1處的吸收峰為酯類(lèi)化合物中C-O鍵的兩個(gè)吸收峰; 在1 000~700 cm-1范圍明顯的吸收峰為烯烴C=C-H 振動(dòng);614.2167 cm-1處為炔烴C≡C-H 的變形振動(dòng)。 綜上,推測(cè)組分FS-Ⅵ是酰胺類(lèi)衍生化合物。
圖5 組分FS-IV 和FS-VI 的傅里葉紅外吸收光譜Fig.5 FT-IR absorption of components FS-IV and FS-VI
多位學(xué)者從冠突散囊菌發(fā)酵液中分離得到多種吲哚生物堿[12-14],對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌等致病菌有不同的抑制作用。 吲哚生物堿是一類(lèi)含氮的化合物, 由色氨酸衍生而來(lái), 多為環(huán)狀結(jié)構(gòu)。 彭曉赟等[15]從冠突散囊菌中分離到多種苯甲醛類(lèi)化合物, 認(rèn)為冠突散囊菌中的主要代謝產(chǎn)物是苯甲醛類(lèi)化合物, 試驗(yàn)分離得到的灰綠曲霉黃色素、2-(2′, 3-環(huán)氧基-1′, 3′-庚二烯基)-6-羥基-5-(3-甲基-2-丁烯基) 苯甲醛、2-(2′, 3-環(huán)氧基-1′, 3′ 5′-庚三烯基)-6-羥基-5-(3-甲基-2-丁烯基) 苯甲醛、酪醇、對(duì)羥基苯甲酸、苔黑酚等對(duì)多種腸道致病菌有抑制作用。 李瑩[16]從冠突散囊菌中分離純化得到大黃素等多種蒽醌類(lèi)活性化合物,蒽醌是一類(lèi)具有環(huán)狀結(jié)構(gòu)的化合物,顏色多為橙色和黃色,具有抑菌活性。前期研究分離自冠突散囊菌發(fā)酵液的抑菌活性物質(zhì)分子質(zhì)量均小于500 u[14-15,17-21],而本研究首次得到分子質(zhì)量大于800 u 的兩種抑菌活性組分,推測(cè)得活性物質(zhì)中含有雜多糖的衍生化合物、 帶有酰胺類(lèi)衍生化合物等多種物質(zhì)。
2.3.1 抑菌廣譜性和抑菌濃度 兩個(gè)活性組分(FS-IV、FS-VI)對(duì)嗜冷菌DHY-1、希瓦氏菌(JC-20、HC-44、R3-2)、假單胞菌(LP-3、LP-6)的抑制活性見(jiàn)圖6。 活性組分對(duì)這6 株細(xì)菌均有抑制作用,其中對(duì)嗜冷菌DHY-1 和希瓦氏菌R3-2 的抑菌率超過(guò)50%, 且組分FS-VI 抑菌活性略高于組分FS-IV。 圖7 所示,兩個(gè)抑菌活性組分(FS-IV、FS-VI)對(duì)嗜冷菌的抑制作用都隨活性組分質(zhì)量濃度的增加而增強(qiáng),0.25 μg/mL 氯霉素對(duì)嗜冷菌的抑制活性與250~500 μg/mL 的FS-IV、FS-VI 相當(dāng)(抑菌圈17.3~18.8 mm)。
圖6 組分FS-IV(a)和FS-VI(b)對(duì)食源腐敗細(xì)菌的抑制Fig.6 Inhibition of components FS-IV (a) and FS-VI (b) on foodborne spoilage bacteria
圖7 組分FS-IV(a)和FS-VI(b)拮抗嗜冷菌DHY-1Fig.7 Inhibition effect of components FS-IV (a) and FS-VI (b) against Psychrophile DHY-1
乳酸鏈球菌素Nisin 是目前少數(shù)允許用作食品添加劑的生物保鮮劑,其對(duì)金黃色葡萄球菌、肉毒梭狀芽孢桿菌、溶血鏈球菌、李斯特菌等一些革蘭氏陽(yáng)性菌有較為明顯的抑制作用, 而對(duì)革蘭氏陰性菌抑制效果不明顯, 且存在單一保鮮劑效果有限,易受環(huán)境因素影響,抗菌時(shí)效短等不足[22]。有研究表明,冠突散囊菌PDA 發(fā)酵液對(duì)枯草芽孢桿菌、 金黃色葡萄球菌等革蘭氏陽(yáng)性菌和大腸桿菌有抑制作用[6]。有研究人員從冠突散囊菌中分離出次級(jí)代謝產(chǎn)物,對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌和普通變形桿菌有不同程度的抑制作用[14-15]。本研究從發(fā)酵液中分離得到新的活性組分, 對(duì)多種食源性革蘭氏陰性菌有較強(qiáng)的抑制活性。綜上,冠突散囊菌在生物保鮮劑領(lǐng)域的開(kāi)發(fā)和應(yīng)用前景廣闊。
2.3.2 穩(wěn)定性 兩個(gè)活性組分 (FS-IV、FS-VI)在-20~100 ℃范圍穩(wěn)定,甚至在121 ℃高溫處理后抑菌活性幾乎未損失(圖8a)。 處理溫度-20~121℃對(duì)組分的抑菌活性穩(wěn)定性無(wú)顯著影響, 表明兩個(gè)抑菌活性組分的熱穩(wěn)定性較好。
兩個(gè)活性組分(FS-IV、FS-VI)在pH 2~13 對(duì)嗜冷菌DHY-1 有較好的抑制作用 (圖8b)。 在pH 5 時(shí)抑菌能力最佳,這可能與冠突散囊菌的自然生長(zhǎng)環(huán)境呈弱酸性相關(guān), 此條件下其代謝產(chǎn)物的活性也較高。 在pH 2 的過(guò)酸條件或pH 13 的過(guò)堿條件下抑菌率稍有下降,不顯著,兩個(gè)抑菌活性組分具有較好的酸、堿穩(wěn)定性。
圖8 組分FS-IV 和FS-VI 的穩(wěn)定性Fig.8 The stability of components FS-IV and FS-VI
碳源對(duì)活性物質(zhì)的產(chǎn)生影響最為顯著。 通過(guò)Plackett-Burman 試驗(yàn)設(shè)計(jì)與響應(yīng)面法相結(jié)合優(yōu)化, 經(jīng)回歸模型驗(yàn)證得到的冠突散囊菌FS-10 產(chǎn)抑菌活性物質(zhì)發(fā)酵培養(yǎng)基最佳配方為無(wú)水葡萄糖(碳源)7.5%、硝酸鈉(氮源)0.65%、氯化鉀4.5%,發(fā)酵液對(duì)濃度為1×105CFU/mL 嗜冷菌菌懸液抑菌率達(dá)54.4%。
冠突散囊菌FS-10 發(fā)酵液經(jīng)超濾、透析、凝膠過(guò)濾層析、高效液相色譜等一系列分離純化,得到兩個(gè)尚未報(bào)道的抑菌活性組分(FS-IV、FS-VI)。采用MALDI-TOF-MS 和傅里葉紅外光譜對(duì)其進(jìn)行鑒定, 組分FS-IV 和FS-VI 的分子質(zhì)量分別為1 630.8 u 和840.5 u,推測(cè)組分FS-IV 是雜多糖的衍生化合物,組分FS-VI 是酰胺類(lèi)衍生化合物。兩個(gè)抑菌活性組分對(duì)嗜冷菌、希瓦氏菌、假單胞菌等革蘭氏陰性食源性腐敗細(xì)菌有不同的抑制作用,且均有良好的熱穩(wěn)定性和酸、堿穩(wěn)定性。冠突散囊菌及其發(fā)酵液中存在多種抑菌活性物質(zhì), 它們之間可能存在協(xié)同作用。