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    TLR4基因敲除對(duì)哮喘小鼠氣道炎癥的影響①

    2022-01-04 05:46:20上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬市中醫(yī)醫(yī)院上海200071
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2021年24期
    關(guān)鍵詞:氣道哮喘小鼠

    楊 艷 薛 征(上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬市中醫(yī)醫(yī)院,上海 200071)

    哮喘是以氣道炎癥與可變氣流阻塞、氣道高反應(yīng)性和氣道壁重塑為特征的一種慢性炎癥性疾病。盡管隨著GINA方案的推廣,糖皮質(zhì)激素、β2受體激動(dòng)劑、抗膽堿能藥物、白三烯調(diào)節(jié)劑等被廣泛用于臨床,大多數(shù)哮喘患者病情能得到控制,但仍影響著全球4.3%的人口,依舊是全球性的公共衛(wèi)生問(wèn)題[1]。研究者們對(duì)于哮喘的病理機(jī)制尚未完全掌握,是部分哮喘患者病情未受控制、發(fā)生率逐年上升的主要原因。近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),Th1/Th2失衡并不能完全解釋哮喘的病因,另兩個(gè)功能相對(duì)獨(dú)立的細(xì)胞亞群Th17細(xì)胞和調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Treg)在哮喘發(fā)病中也具有重要意義。Toll樣受體4(TLR4)作為模式識(shí)別受體家族成員之一,可及時(shí)識(shí)別病原體相關(guān)的分子模式,進(jìn)一步調(diào)節(jié)宿主免疫反應(yīng),參與過(guò)敏性疾?。?]。胸腺基質(zhì)淋巴生成素(TSLP)是調(diào)控過(guò)敏性炎癥反應(yīng)的總開(kāi)關(guān)之一,在哮喘、過(guò)敏性鼻炎、特異性皮炎中起重要作用。最新文獻(xiàn)報(bào)道,人類(lèi)和鼠類(lèi)在TSLP基因序列上均存在核因子-κB(NF-κB)的結(jié)合位點(diǎn),在致敏原的刺激下,呼吸道上皮細(xì)胞TLR2、TLR4、TLR9等激活,可誘導(dǎo)產(chǎn)生TSLP[3-4]。LI等[5]證實(shí),過(guò)敏性角膜炎的病理過(guò)程可能由TLR4通過(guò)TSLP/OX40L信號(hào)通路觸發(fā),但在哮喘模型中,鮮有報(bào)道。因此本研究擬利用TLR4-/-小鼠,建立哮喘模型,觀(guān)察TLR4敲除對(duì)哮喘氣道炎癥的影響,并探討其影響是否引起TSLP、OX40L表達(dá)改變,從而影響Th1/Th2、Treg/Th17平衡。

    1 材料與方法

    1.1 材 料4~6周 齡SPF雄 性BALB/c WT和TLR4-/-小鼠,體重18~22 g;OVA、鋁佐劑(Sigma);霧化器、電子天平、蘇木精、伊紅、DEPC處理水、緩沖液、RIPA組織細(xì)胞快速裂解液等(上?;鶢栴D公司);Trizol(Invitrogen);IL-4、IFN-γ、IL-6、IL-10、IL-17、TGF-β、TSLP ELISA試劑盒(Bioswap);T-bet、GATA-3、RORγt、Foxp3、OX40L抗體(Abcam);電泳儀(BIORAD);電轉(zhuǎn)儀(大連競(jìng)邁);酶標(biāo)儀(芬蘭雷勃);成像系統(tǒng)(Tanon);Real-time PCR檢測(cè)儀(ABI)等。

    1.2 方法

    1.2.1 小鼠哮喘模型建立WT和TLR4-/-小鼠各10只,分別隨機(jī)分為對(duì)照組、哮喘組,即為野生小鼠對(duì)照組(WT-NS),野生小鼠哮喘組(WT-OVA),基因敲除小鼠對(duì)照組(TLR4-/--NS),基因敲除小鼠哮喘組(TLR4-/--OVA),每組5只。哮喘組小鼠于第1天和第14天腹腔注射1 ml致敏液(0.1 g OVA+0.01 g鋁佐劑+1 ml NS)。第21~27天,用5%OVA NS溶液霧化激化,每次40 min,1次/d,連續(xù)7 d。對(duì)照組腹腔注射致敏液和霧化激發(fā)以等量NS溶液替代。末次激發(fā)后24 h采集標(biāo)本。

    1.2.2 HE染色觀(guān)察肺組織病理學(xué)改變 取各組小鼠右肺上葉置于10%甲醛固定48 h后,依次進(jìn)行清洗、脫水、透明處理、浸蠟、石蠟包埋,最后常規(guī)切片及HE染色后,通過(guò)顯微鏡拍照,觀(guān)察肺組織病理變化。

    1.2.3 ELISA法檢測(cè)支氣管肺泡灌洗液(BALF)中細(xì)胞因子濃度 結(jié)扎右側(cè)支氣管,予1.5 ml預(yù)冷N(xiāo)S灌洗左側(cè)主支氣管肺葉,收集BALF,離心后取上清液,按ELISA試劑說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作,測(cè)定標(biāo)本中IL-4、IFN-γ、IL-6、IL-10、IL-17、TGF-β、TSLP濃度。

    1.2.4 Western blot檢測(cè)肺組織中相關(guān)蛋白表達(dá)水平 取各組小鼠右側(cè)支氣管、右肺下葉,剪碎并磨制成勻漿,并測(cè)蛋白濃度。隨后依次上樣,電泳,轉(zhuǎn)膜,進(jìn)行膜上蛋白檢測(cè),接著將一抗加入封閉液中稀釋?zhuān)?∶1 000進(jìn)行稀釋?zhuān)?℃孵育過(guò)夜后,孵育一抗的膜用TBST洗滌3次,隨后根據(jù)用量,用封閉液稀釋二抗,與膜37℃孵育1 min,用TBST洗滌3次,最后使用ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒顯示蛋白條帶。X線(xiàn)片在圖像分析系統(tǒng)上分析,比較GATA-3、T-bet、RORγt、Foxp3、OX40L與GAPDH的相對(duì)吸光度值。

    1.2.5 Real-time PCR檢測(cè)肺組織中mRNA水平使用Trizol試劑提取肺組織及支氣管中的總RNA后,進(jìn)行Real-time PCR反應(yīng)。反應(yīng)體積為25μl,反應(yīng)體系含SYBRGreen Mix 12.5μl,上下游引物各0.5μl,cDNA模板2μl,ddH2O 9.5μl。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)加熱10 min,95℃變形15 s,60℃退火45 s,40個(gè)循環(huán)后,在60℃保持1 min,使產(chǎn)物延伸完整。數(shù)據(jù)采用儀器自帶軟件ABI Prism 7300 SDS Software分析各樣本的Ct值,得出GATA-3、T-bet、RORγt、Foxp3 mRNA水平。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 用SPSS24.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。計(jì)量資料統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)采用±s表示。各組計(jì)量資料采用單因素方差分析,并用LSD-t法進(jìn)行兩兩比較。

    2 結(jié)果

    2.1 各組小鼠一般行為特征WT-OVA組小鼠霧化后毛發(fā)豎立、煩躁掻鼻、呼吸加深、急促、腹肌痙攣,嚴(yán)重者甚至出現(xiàn)大小便失禁、體重減輕等情況。TLR4-/--OVA組小鼠一般行為特征較WT-OVA組明顯減輕。WT-NS組和TLR4-/--NS組無(wú)上述表現(xiàn)。

    2.2 各組小鼠肺組織病理學(xué)改變WT-OVA組小鼠肺組織及氣管周?chē)梢?jiàn)嗜酸性粒細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等大量炎癥因子浸潤(rùn),上層基底膜增厚;TLR4-/--OVA組小鼠較WT-OVA組肺組織炎癥程度明顯減輕,少見(jiàn)炎癥因子浸潤(rùn);WT-NS組及TLR4-/--NS組小鼠氣道管腔及周?chē)M織平滑,未見(jiàn)炎癥因子浸潤(rùn)。見(jiàn)圖1。

    圖1 各組小鼠肺組織HE染色(×200)Fig.1 HE staining of lung tissue of mice in each group(×200)

    2.3 各組小鼠BALF中IL-4、IFN-γ濃度 與WTNS相比,WT-OVA組小鼠IL-4顯著升高,IFN-γ顯著降低(P<0.01),與WT-OVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠IL-4顯著降低,IFN-γ顯著升高(P<0.01),IL-4促進(jìn)Th0向Th2細(xì)胞分化,IFN-γ促進(jìn)Th0向Th1細(xì)胞分化,說(shuō)明敲除TLR4基因可抑制Th2炎癥因子而促進(jìn)Th1炎癥因子釋放。見(jiàn)表1。

    表1 各組小鼠BALF中IL-4、IFN-γ濃度(±s,ng/ml)Tab.1 Concentration of IL-4 and IFN-γin BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    表1 各組小鼠BALF中IL-4、IFN-γ濃度(±s,ng/ml)Tab.1 Concentration of IL-4 and IFN-γin BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA IL-4 132.74±8.16 79.49±5.19 336.13±36.761)179.11±26.982)IFN-γ 2 951.14±187.45 3 199.65±42.86 1 040.14±381.181)2 376.58±171.602)

    2.4 各組小鼠BALF中IL-6、IL-10、IL-17、TGF-β濃度 與WT-NS相比,WT-OVA組小鼠IL-6、IL-17、TGF-β顯著升高,IL-10顯著降低(P<0.01),與WTOVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠IL-6、IL-17、TGF-β顯著降低,IL-10顯著升高(P<0.01)。Th17能分泌IL-6、IL-17、TGF-β等炎癥因子,IL-10為T(mén)reg的代表炎癥因子,敲除TLR4基因可調(diào)整Th17/Treg細(xì)胞平衡。見(jiàn)表2。

    表2 各組小鼠BALF中IL-6、IL-10、IL-17、TGF-β濃度(±s,ng/ml)Tab.2 Concentrations of IL-6,IL-10,IL-10 and TGF-βin BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    表2 各組小鼠BALF中IL-6、IL-10、IL-17、TGF-β濃度(±s,ng/ml)Tab.2 Concentrations of IL-6,IL-10,IL-10 and TGF-βin BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA IL-6 68.82±7.22 47.08±9.19 194.69±17.981)111.96±1.292)IL-10 1 314.83±134.10 961.64±50.28 399.03±98.121)710.14±58.602)IL-17 161.94±11.71 125.27±16.98 491.79±32.521)268.80±26.262)TGF-β 113.95±17.79 98.94±11.45 303.26±59.611)169.95±19.932)

    2.5 各組小鼠BALF中TSLP濃度 與WT-NS相比,WT-OVA組小鼠TSLP顯著升高(P<0.01),與WT-OVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠TSLP顯著降低(P<0.01)。見(jiàn)表3。

    表3 各組小鼠BALF中TSLP濃度(±s,ng/ml)Tab.3 Concentration of TSLP in BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    表3 各組小鼠BALF中TSLP濃度(±s,ng/ml)Tab.3 Concentration of TSLP in BALF of mice in each group(±s,ng/ml)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA TSLP 172.46±45.81 128.92±3.09 561.86±67.491)253.88±14.872)

    2.6 各組小鼠肺組織中GATA-3、T-bet蛋白表達(dá)及mRNA水 平 與WT-NS相 比,WT-OVA組 小 鼠GATA-3表達(dá)水平及mRNA水平顯著升高(P<0.01),T-bet蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著降低(P<0.01),與WT-OVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠GATA-3蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著降低(P<0.01),T-bet蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著升高(P<0.01,P<0.05)。GATA-3可以促進(jìn)Th2的分化而限制Th1因子分泌,T-bet決定Th1的分化并可將Th2逆轉(zhuǎn)為T(mén)h1,敲除TLR4基因可在蛋白及基因水平上調(diào)整Th1/Th2失衡。見(jiàn)表4。

    表4 各組小鼠肺組織中GATA、T-bet蛋白表達(dá)及mRNA水平(±s)Tab.4 Protein expression and mRNA levels of GATA and T-bet in lung tissues of mice in each group(±s)

    表4 各組小鼠肺組織中GATA、T-bet蛋白表達(dá)及mRNA水平(±s)Tab.4 Protein expression and mRNA levels of GATA and T-bet in lung tissues of mice in each group(±s)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.05,3)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA GATA-3 Proteins 0.342±0.085 0.270±0.002 0.795±0.0191)0.397±0.0083)mRNA 0.012±0.003 0.008±0.002 0.023±0.0031)0.015±0.0023)0.396±0.088 0.630±0.045 0.054±0.0081)0.429±0.0553)T-bet Proteins mRNA 0.015±0.005 0.018±0.004 0.006±0.0011)0.012±0.0042)

    2.7 各組小鼠肺組織中RORγt、Foxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平與WT-NS相比,WT-OVA組小鼠RORγt蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著升高(P<0.01),F(xiàn)oxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著降低(P<0.01),與WT-OVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠RORγt蛋白表達(dá)及mRNA平顯著降低(P<0.01),F(xiàn)oxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平顯著升高(P<0.01,P<0.05)。Foxp3和RORγt分別為T(mén)reg、Th17的正向調(diào)節(jié)蛋白,敲除TLR4基因能通過(guò)調(diào)節(jié)RORγt、Foxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平來(lái)改變Treg/Th17炎癥因子分泌。見(jiàn)表5。

    表5 各組小鼠肺組織中RORγt、Foxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平(±s)Tab.5 Protein expression and mRNA levels of RORγt and Foxp3 in lung tissues of mice in each group(±s)

    表5 各組小鼠肺組織中RORγt、Foxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平(±s)Tab.5 Protein expression and mRNA levels of RORγt and Foxp3 in lung tissues of mice in each group(±s)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.05,3)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA RORγt Proteins 0.246±0.079 0.328±0.019 0.603±0.0511)0.448±0.0133)mRNA 0.015±0.003 0.009±0.001 0.032±0.0051)0.021±0.0033)0.466±0.145 0.667±0.053 0.134±0.0811)0.450±0.0133)Foxp3 Proteins mRNA 0.012±0.003 0.016±0.004 0.005±0.002 0.010±0.0022)

    2.8 各組小鼠肺組織中OX40L蛋白表達(dá)水平與WT-NS相比,WT-OVA組小鼠OX40L蛋白表達(dá)水平顯著升高(P<0.01),與WT-OVA相比,TLR4-/--OVA組小鼠OX40L蛋白表達(dá)水平顯著降低(P<0.01)。見(jiàn)表6。

    表6 各組小鼠肺組織中OX40L蛋白表達(dá)水平(±s)Tab.6 Protein expression of OX40L in lung tissues of mice in each group(±s)

    表6 各組小鼠肺組織中OX40L蛋白表達(dá)水平(±s)Tab.6 Protein expression of OX40L in lung tissues of mice in each group(±s)

    Note:Compared with WT-NS,1)P<0.01;compared with WT-OVA,2)P<0.01.

    Groups WT-NS TLR4-/--NS WT-OVA TLR4-/--OVA OX40L 0.273±0.112 0.274±0.024 1.055±0.1331)0.719±0.0582)

    3 討論

    TLR4是一種跨膜蛋白,屬于模式識(shí)別受體家族。機(jī)體受到外界微生物或環(huán)境中不利因子侵襲后,TLRs可將識(shí)別到的微生物或內(nèi)源性分子相關(guān)信號(hào)傳遞給下游蛋白激酶,誘導(dǎo)轉(zhuǎn)錄因子激活,觸發(fā)體內(nèi)T細(xì)胞介導(dǎo)的免疫反應(yīng),釋放炎癥因子及介質(zhì)[6-7]。目前發(fā)現(xiàn)哺乳動(dòng)物中存在11種TLRs,只有TLR2和TLR4才能觸發(fā)轉(zhuǎn)錄因子易位,激活免疫相關(guān)基因,誘導(dǎo)炎癥反應(yīng),表明TLR2和TLR4可能與哮喘最相關(guān)[8-9]。最新一項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn),用OVA聯(lián)合脂多糖(LPS)對(duì)TLR2-/-及TLR4-/-小鼠建立哮喘模型,TLR2-/-小鼠氣道上皮中杯狀細(xì)胞增殖,氣道黏膜下層炎癥細(xì)胞膨脹,然而,TLR4-/-小鼠肺組織未見(jiàn)明顯病理改變[10];用OVA、LPS聯(lián)合亞洲沙塵(ASD)同樣對(duì)兩組小鼠造模發(fā)現(xiàn),TLR2-/-小鼠肺部杯狀細(xì)胞增殖率和炎癥細(xì)胞炎癥率顯著升高,IL-5、IL-6、IL-13、TNF-α等炎癥因子蛋白表達(dá)水平明顯上調(diào),與TLR2-/-小鼠相比,TLR4-/-肺部病理改變及炎癥因子表達(dá)方面均較輕,考慮TLR2-/-小鼠能表達(dá)TLR4蛋白,LPS可以通過(guò)TLR4信號(hào)途徑激活小鼠的Th2反應(yīng),TLR4與TLR2相比,識(shí)別的微生物信號(hào)可能更廣泛。先前的研究報(bào)道,OVA誘導(dǎo)的哮喘小鼠血液?jiǎn)魏思?xì)胞中TLR4 mRNA表達(dá)水平增加,小劑量的LPS刺激OVA致敏后的小鼠,可通過(guò)TLR4信號(hào)誘導(dǎo)Th2炎癥反應(yīng),促進(jìn)IL-4、IL-5的釋放[11-12]。TANG等[13]研究表明使用TLR4拮抗劑治療過(guò)敏性鼻炎哮喘綜合征小鼠,可通過(guò)降低BALF中IL-4、IL-5、IL-13濃度及減少單核細(xì)胞浸潤(rùn),調(diào)節(jié)嗜酸性粒細(xì)胞的積聚明顯改善下氣道癥狀。越來(lái)越多的證據(jù)表明,靶向TLR4信號(hào)通路作為新的哮喘治療靶點(diǎn)具有巨大的潛力。本研究結(jié)果顯示,TLR4-/-哮喘小鼠比野生哮喘小鼠肺部炎癥反應(yīng)輕,嗜酸性粒細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)不明顯,IL-4濃度、GATA-3蛋白水平顯著降低,IFN-γ濃度、T-bet蛋白水平顯著上升,提示TLR4基因敲除可調(diào)整Th1/Th2失衡,扭轉(zhuǎn)Th2優(yōu)勢(shì)化,使肺組織處于低炎癥狀態(tài)。Treg/Th17的穩(wěn)態(tài)在維持肺免疫方面具有重要意義,Th17/Treg失衡與哮喘、過(guò)敏性鼻炎等炎癥性和自身免疫性疾病的發(fā)病機(jī)制有關(guān)[14]。IL-6是控制Th17/Treg平衡的關(guān)鍵細(xì)胞因子。結(jié)果發(fā)現(xiàn),敲除TLR4基因除了可調(diào)整Th1/Th2失衡外,還能通過(guò)降低IL-6、IL-17、TGF-β濃度,RORγt蛋白表達(dá)及mRNA水平,提高IL-10濃度,F(xiàn)oxp3蛋白表達(dá)及mRNA水平恢復(fù)Treg/Th17平衡。

    TSLP是一種與IL-7密切相關(guān)的新型的Ⅰ型細(xì)胞因子,主要由皮膚、腸道和肺等屏障表面的上皮細(xì)胞表達(dá),誘導(dǎo)Th0分化為T(mén)h2,啟動(dòng)炎癥反應(yīng)。哮喘患兒外周血中TSLP水平明顯高于正常查體患兒,且與肺功能水平呈負(fù)相關(guān),提示TSLP在哮喘的發(fā)病機(jī)制中起著至關(guān)重要的作用[15]。目前,過(guò)敏性角膜炎模型中TSLP主要由角膜上皮細(xì)胞里的TLRs誘導(dǎo)的觀(guān)點(diǎn)已被公認(rèn)[16]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,TLR4-/-基因敲除小鼠TSLP濃度相比于野生模型組小鼠顯著降低,提示在哮喘中TSLP可能由TLR4觸發(fā)。此外,大量研究表明,TSLP很大程度上發(fā)揮作用是通過(guò)樹(shù)突狀細(xì)胞(DC)上的OX40配體(OX40L)來(lái)實(shí)現(xiàn)的[17-18]。這與本研究發(fā)現(xiàn)一致,野生模型組小鼠TSLP濃度及OX40L蛋白表達(dá)水平較空白組顯著升高,TLR4-/-基因敲除小鼠TSLP濃度隨著OX40L水平降低。OX40是TNFR家族成員,主要表達(dá)于活化的T淋巴細(xì)胞,OX40L為OX40的配體,在活化抗原提呈細(xì)胞、內(nèi)皮和活化T細(xì)胞上存在。OX40與OX40L的結(jié)合向新激活的效應(yīng)T細(xì)胞傳遞了強(qiáng)烈的共刺激信號(hào),增強(qiáng)Th2的反應(yīng),IL-6與OX40L協(xié)同作用,誘導(dǎo)Th2分化的同時(shí)也可阻斷Treg細(xì)胞的作用[19-20]。

    綜上所述,發(fā)現(xiàn)在哮喘模型中,TLR4-/-基因敲除可以顯著減輕肺部炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),可能與TSLP/OX40L水平減低,從而調(diào)節(jié)Th1/Th2、Treg/T17失衡有關(guān),為后續(xù)深入研究TLR4在哮喘中的作用、臨床治療靶點(diǎn)及策略提供前期基礎(chǔ)證據(jù),然而確切的分子機(jī)制有待下一步研究。

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