Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)效應物的結構特征及其在基因編輯領域的應用

張鈺雯，俞晨霖，戴心忱，肖易倍，陸美玲*

（1中國藥科大學生命科學與技術學院，南京211198；2中國藥科大學藥學院，南京211198）

CRISPR-Cas （clustered regularly interspaced short palindromic repeats and CRISPR associated）系統(tǒng)是一種在細菌和古細菌基因組中發(fā)現(xiàn)的適應性免疫系統(tǒng)，由RNA 介導來抵擋外源核酸的入侵。1987年，日本大阪大學在研究大腸埃希菌的堿性磷酸酶同工酶時發(fā)現(xiàn)其基因組中存在一些串聯(lián)間隔重復序列［1］，后續(xù)研究表明這段序列在細菌和古細菌的基因組中廣泛存在，2002年被正式命名為CRISPR［2］。本文介紹了1 類中的Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)近幾年的研究成果和應用，主要是其基因簇組成和Cas蛋白的異同點，以及從結構的角度詳細闡述Ⅰ型系統(tǒng)中效應復合物的組裝模式以及特異性識別底物并招募Cas3 蛋白的R-loop 機制，分子作用方式與目前應用最廣泛的CRISPR-Cas9 系統(tǒng)相比有很大不同。另外，對Ⅰ型CRISPR-Cas 系統(tǒng)在基因編輯領域的應用進行了總結。相比Cas9蛋白，Cas3 的長片段DNA 降解功能更有利于進行大范圍的基因組功能研究，效應復合物的靶向性可用于融合調控蛋白來調節(jié)基因的表達，同時CRISPR 陣列的特性便于多基因同時編輯，具有填補當前基因編輯領域空白的潛力。

1 CRISPR-Cas系統(tǒng)及其分類命名

1.1 CRISPR-Cas系統(tǒng)免疫過程

CRISPR-Cas 基因簇包含儲存外源核酸序列信息的CRISPR 基因座以及編碼不同功能蛋白的cas基因。CRISPR 基因座是一段由前導序列、重復序列和間隔序列組成的簇狀規(guī)則間隔的短回文重復片段。前導序列是CRISPR 基因座的啟動子，轉錄重復序列和間隔序列，但不翻譯為蛋白；長度相近的間隔序列則是來源于噬菌體、質粒、轉座酶基因或內源性的有害核酸片段等；重復序列區(qū)將不同的間隔序列隔開，轉錄后在內部通過堿基互補作用形成發(fā)卡結構。cas基因位于CRISPR 基因座附近，根據(jù)在系統(tǒng)中執(zhí)行的功能不同來命名區(qū)分，可編碼幾十種結構和性質不同的Cas蛋白（表1）。

Table 1 Type and function of Cas proteins in type I CRISPR-Cas system

CRISPR-Cas 系統(tǒng)的適應性免疫過程分為3步：（1）第1 步是適應過程。外源核酸片段被Cas蛋白特異性識別，整合特定長度的序列到CRISPR基因座中［3］，形成新的間隔序列；（2）第2 步為crRNA（CRISPR RNA）成熟階段。在前導序列控制下，儲存外源核酸信息的CRISPR 基因座轉錄成包含重復序列和間隔序列的長RNA 前體，并被相關Cas 蛋白加工成為一系列含有部分重復序列和完整間隔序列的成熟crRNA［4］，crRNA 與效應Cas 蛋白結合形成效應復合物；（3）第3 步是干擾階段。效應復合物靶向識別與crRNA 互補的核酸序列；此外，效應復合物接觸底物時，依賴于識別靶標序列附近2 ～7 個堿基長度的PAM（protospacer adjacent motif）序列［5］；滿足兩個結合條件之后，Cas 蛋白在特定位點進行切割或降解，破壞靶標序列。

1.2 CRISPR-Cas系統(tǒng)分類

根據(jù)效應復合物的組成形式不同，CRISPRCas 系統(tǒng)分成1 類和2 類兩大部分：1 類又分為3 個類型（Ⅰ型、Ⅳ型和Ⅲ型）和16個亞型，該類別的共同特征是利用多Cas 蛋白效應物復合物實現(xiàn)干擾靶標核酸；2 類包括有Ⅱ型、Ⅴ型和Ⅵ型3 個類型，該系統(tǒng)只利用單一效應蛋白如Cas9 和Cas12 發(fā)揮活性。2020年，科學家對已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的Cas蛋白進行了系統(tǒng)整理［6］，主要從適應階段、成熟階段、效應階段以及信號轉導4 個功能模塊進行分類，其中1 類特征蛋白為Cas3 和Cas10，2 類的特征蛋白是Cas9和Cas12。Ⅰ型系統(tǒng)靶向的核酸類型為雙鏈DNA，該系統(tǒng)包含有Cas1、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas10d 等主要蛋白（在不同的亞型中可能會有不同的命名）（表1）。Cas1、Cas2 和Cas4蛋白參與新的間隔序列整合過程［7］；Cas3包含解旋酶活性和單鏈DNA 核酸酶活性［8］，發(fā)揮切割和降解DNA 作用；其他蛋白則形成效應復合物，骨架部分一般由Cas7、Cas5 和Cas6 蛋白或其同源蛋白組成［9］。Cas7 蛋白的拷貝數(shù)為6 ～7 個，結合和支撐crRNA 并影響crRNA 與DNA 的結合形式；Cas5 相對分子質量較小，與底物核酸結合有關；Cas6 具有RNA 內切核酸酶活性，催化切割長RNA 前體為成熟的crRNA［10］，但在I-C 亞型中，該功能由Cas5 執(zhí)行；此外，復合物中的大亞基Cas10d、Cas8和Cse1，在底物DNA 結合過程中識別PAM 序列，具有直接與Cas3 蛋白相互作用的結構域，穩(wěn)定Cas3 的空間位置。

1.3 Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)亞型分類

Ⅰ型系統(tǒng)目前分為I-A 至F和I-U 7個亞型（圖1）［11］，每個類型有不同的cas基因組合特點，但均包含特征基因cas3［12］。在這些亞型之內，根據(jù)蛋白的差別又可以細分為多種子類型，例如通過Cas8b 蛋白家族的特點，細分為Hmari 亞型（Cas8b1）、Tneap 亞 型（Cas8b2）和Myxan 亞 型（Cas8b3）等［11］。相比于其他系統(tǒng)，I-C 亞型中成熟crRNA 的功能由Cas5 代替［13］；I-A 亞型的特征在于Cas8 分裂成兩個蛋白，分別編碼大亞基和小亞基，同時Cas3 蛋白分裂成解旋酶Cas3′和核酸酶Cas3″。I-E 和I-F 亞型系統(tǒng)中不存在Cas4 蛋白，并且I-F 亞型中Cas3 與Cas2 融合表達［14］，參與到前間隔序列的識別和整合過程。I-D 亞型具有幾個獨特特征，其大亞基是Ⅲ型特征蛋白Cas10的變體Cas10d，而Cas3 的核酸酶結構域和Cas10d 的氨基端融合，解旋酶結構域單獨表達。最近的研究發(fā)現(xiàn)，I-B、I-C 和I-D 等亞型的大亞基基因C 端存在一個獨立開放閱讀框，編碼的多拷貝小亞基蛋白參與形成效應復合物［15］。I-U 亞型中的U 代表無法準確定義屬性，其蛋白的結構功能和相關機制目前沒有清晰的解釋。因此，CRISPR-Cas 系統(tǒng)可根據(jù)一個或幾個特征基因的差異分成不同的亞型，且部分Cas蛋白功能在不同亞型中有所區(qū)別。

Figure 1 Representative strains and gene cluster information of type I CRISPR-Cas system subtypes.Grey rectangle represents repeat,and pink diamond means different spacers.Cas1 and Cas2 are conserved in all systems

2 效應復合物的結構與功能

Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)的效應復合物結構具有一些共同特征，目前通過冷凍電鏡或X 射線解析得到的結構有I-E、I-F、I-C 以及I-D 型，其中關于I-E 型和I-F 型系統(tǒng)的研究最為透徹。以大腸埃希菌的I-E 型為例，其效應復合物有5 種Cas 蛋白，包括11 個亞基（Cas76Cas51Cas61Cse11Cse22）和61 個堿基的成熟crRNA（圖2-A），相對分子質量約為405 kD，外觀上呈現(xiàn)出“海馬體”形狀［16］，6 個Cas7蛋白形成“海馬體”的背部結構，crRNA的間隔序列片段沿著Cas7 蛋白1 ～6 號亞基產(chǎn)生的連續(xù)正電荷凹槽定位，在第6、12 和18 等位置出現(xiàn)核苷酸紐結，扭結之間5 個核苷酸堆疊的片段為A 型螺旋，位于Cas7 外層的凹面上；而在扭結位點上的堿基改變方向，從Cas7 的2 ～6 號亞基伸出的5 個長β發(fā)夾結構穿過其中，從而阻止了crRNA 特定位點與靶DNA 的堿基配對（圖2-B）。Cas6 結合重復序列部分形成的發(fā)卡結構，切割長RNA 前體使其成熟，并在切割后仍與發(fā)夾保持穩(wěn)定結合，保護crRNA 免受進一步降解［17］，然后與其他蛋白形成復合物，固定crRNA 的3′末端；Cas5 蛋白固定crRNA 的5′末端，Cse1為大亞基，和crRNA 5′端一側作用，特異性識別和結合dsDNA 底物，并與招募的Cas3蛋白直接作用；Cse2相對分子質量比較小，參與結合和固定dsDNA底物的非靶標鏈。

2.1 效應復合物中crRNA的關鍵作用

不同系統(tǒng)中crRNA 的長度不同，在Ⅰ型系統(tǒng)中作為確定效應復合物大小的分子尺，即與一些Cas蛋白的拷貝數(shù)有關。在Zymomonas mobilis的I-F亞型系統(tǒng)中，研究者發(fā)現(xiàn)在制備體外復合物時，添加的crRNA 中間隔序列長度不同，溶液中單體ZmCsy3 會轉變?yōu)椴煌牡途蹱顟B(tài)［18］；在I-E 系統(tǒng)中，Cas7 蛋白相對間隔序列的周期為6 個堿基，Cse2 為12 個堿基，當間隔序列長度與野生型相差6 個堿基的偶數(shù)倍時，復合物穩(wěn)定且均一，但相差奇數(shù)倍時，復合物的穩(wěn)定性會大大降低［19］。這些現(xiàn)象充分說明了crRNA 的長度是影響復合物分子骨架大小以及其他亞基招募的關鍵因素。因此可以通過設計間隔序列的長度，改變骨架蛋白的拷貝數(shù)［20］，從而調節(jié)效應復合物的活性，這一特性為定制靶向特定目標DNA的效應復合物開辟了可能性。

2.2 不同亞型中效應復合物的組裝差異

在復合物的結構中，各亞型一般都包括骨架蛋白、大亞基和小亞基。由于進化或生存環(huán)境的影響，一些蛋白的結構有差異，同時效應復合物的扭曲角度也會有所不同（圖2-A、2-C、2-D）。在I-C亞型中，Cas5d 蛋白能夠識別重復序列中的發(fā)夾結構，將長RNA 前體切割為成熟crRNA，代替了其他系統(tǒng)中Cas6 的功能，同時又與crRNA 的5′端結合起到固定作用［13］。在I-Fv 亞型中，效應復合物僅由3 種蛋白（Cas7fv-Cas5fv-Cas6fv）組成（圖2-C），Cas5fv 起到識別底物DNA 中的PAM 序列的作用［21］。在I-B、I-C和I-D系統(tǒng)中，大亞基基因C端翻譯產(chǎn)生小亞基蛋白Cas11結合在骨架蛋白一側，在電鏡結構以及生化研究中發(fā)現(xiàn)能夠結合底物DNA的非靶標鏈［22］，如果沒有該亞基，效應復合物將無法 穩(wěn) 定 結 合 底 物DNA［15］。Sulfolobus islandicusLAL14/1 的I-D 亞型則同時具有Ⅰ型和Ⅲ型的特征，其Cas3 蛋白分解為解旋酶Cas3′和核酸酶Cas3″，其中核酸酶結構域在Cas10d 的氨基端端融合表達，因此Cas10d具有切割底物dsDNA的活性；此外，該系統(tǒng)的骨架蛋白Csc2 能夠催化特定長度ssDNA 為產(chǎn)物的切割反應［23］，此功能類似于Ⅲ型系統(tǒng)中骨架蛋白切割前間隔序列轉錄產(chǎn)物的特性，說明I-D系統(tǒng)是Ⅰ型和Ⅲ型的進化中間體。

2.3 Cas3靶向切割DNA的過程

效應復合物識別底物dsDNA 時，需要滿足兩個基本條件：一是識別前間隔序列附近的PAM 序列，二是DNA 序列與crRNA 產(chǎn)生特定長度的互補配對區(qū)域。PAM 序列位于前間隔序列非靶標鏈中（不與crRNA 互補的鏈），Ⅱ型系統(tǒng)一般在前間隔序列的3′端［24］，而Ⅰ型系統(tǒng)位于上游5′端。尋找靶標序列時，效應復合物中的大亞基識別PAM 序列，crRNA 接觸到DNA 底物，依靠堿基之間作用力的強弱使得DNA 發(fā)生解旋，其中靶標鏈與crRNA產(chǎn)生局部區(qū)域的互補配對［25］，通常稱之為種子序列。研究發(fā)現(xiàn)，產(chǎn)生干擾效應時該序列至少需要18 個堿基左右的長度［26］。種子序列完成匹配后，非靶標鏈向外彎曲，形成R-loop 結構，其中DNA 彎曲的程度與堿基配對解開的DNA 長度之間存在一定關系［9，27］。

實驗表明，效應復合物必須與靶標DNA 形成完整的R-loop結構，才能招募Cas3蛋白［28］，這一特性可以防止Cas3 過早地結合到DNA 上，引起非特異性切割。Cas3 順利被招募后與效應復合物中的大亞基結合（圖2-E），同時非靶標鏈的單鏈部分進入Cas3 蛋白核酸酶結構域，在Mg2+等金屬離子的催化下，Cas3 的3′→5′方向單鏈核酸酶切割活性會在PAM 下游十幾個堿基左右的位點切割非靶標鏈，形成單鏈上的缺口（圖2-F）。產(chǎn)生缺口的DNA鏈可能會穿過Cas3 的解旋酶結構域，從而啟動后續(xù)的DNA 解鏈以及降解。這一過程中，Cas3 如何對dsDNA 進行持續(xù)降解的具體結構以及分子機制尚未研究清楚。體內編輯實驗結果顯示，長片段缺失主要發(fā)生在PAM 上游5′端，與Cas3 蛋白的切割活性方向一致；同時，下游也會產(chǎn)生小片段缺失，這與細胞內同源重組的機制有關，因為編輯后的序列與設定的修復模板一致［29-30］；也有少部分研究人員認為下游缺失是由于Cas3蛋白在切割位點進行了雙向降解［31］，可能與后續(xù)單鏈DNA 的空間位置轉變有關。關于Cas3蛋白切割方向的定論仍需進一步的實驗證明。

從結構上來看，Ⅰ型CRISPR-Cas 系統(tǒng)的效應復合物由多種蛋白組成，分工明確，遵循著嚴格的分子組裝方式，每種亞型都有各自的特點；在尋找靶標DNA 并干擾時，有著嚴謹?shù)淖R別機制，與Ⅱ型系統(tǒng)如CRISPR-Cas9 的過程相比，要求更加嚴格，這可能是Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)在自然界存在更為廣泛的原因之一。

Figure 2 Cascade complex assembly of type I CRISPR-Cas system subtypes and protein-nucleic acid interactionA: CRISPR RNA-guided surveillance complex binding to dsDNA in Thermobifida fusca (PDB: 5U07); B: The base at the 6th position of spacer is blocked by the residues (sky blue) and does not bind to DNA; C: Cascade consists of only three proteins (Cas7fv-Cas5fv-Cas6fv) in the I-Fv system(PDB: 5O7H); D: Type I-F Cascade complex from Pseudomonas aeruginosa (PDB: 6NE0); E: Cas3 binds to the large subunit in Cascade,and the nuclease domain is close to the non-target DNA (PDB: 6C66); F:Detail of Cas3 and DNA in the E.Grey: Cas7 (backbone); Green: Cas6; Purple: Cse2; Dark blue: Cse1 or Cas8; Orange: Cas5; Light blue: Cas3.Red chain: crRNA; Yellow chain: target DNA; Violet purple chain: non-target DNA.Ball in F:metal ions in Cas3

3 Ⅰ型CRISPR-Cas系統(tǒng)的基因編輯應用

CRISPR-Cas9 系統(tǒng)是研究者最早發(fā)現(xiàn)并且其分子機制研究透徹的系統(tǒng)之一，已經(jīng)成為基礎和應用生物學研究中普遍選擇的基因編輯工具［32-33］，然而簡單易操作也會附帶一些問題，例如Cas9 產(chǎn)生基因敲除后，仍然存在能編碼蛋白的假信使RNA，翻譯產(chǎn)生具有一定活性的蛋白影響編輯效率［34-35］，Cas9 和Cas12 進行大片段缺失的能力也相對有限，而Ⅰ型系統(tǒng)或可以填補這一空白，開發(fā)成為效果更佳的基因編輯工具。目前的研究主要從細胞水平出發(fā)，在原核或真核細胞中觀察基因編輯的效率和靶向性。

3.1 利用Cas3的特性進行長片段降解

Cas3 切割靶向DNA 之后，核酸酶活性對DNA進行持續(xù)降解，對比Cas9的單堿基突變，這一特性為基因編輯領域提供了新思路。Thermobifida fuscaI-E 型的效應復合物可以在人類細胞中產(chǎn)生一系列大的基因組缺失，通過電轉效應復合物和Cas3蛋白，在單個CRISPR 靶向位點的上游引起長片段DNA 損傷（幾百堿基到100 kb）而引起基因沉默，效率最高可達60%，顯示了它們在大范圍基因組操作中的潛力［36］。鑒于純化蛋白復合物的過程容易限制重新編程和優(yōu)化系統(tǒng)的能力，研究人員開發(fā)了基于轉染質粒的效應復合物和Cas3蛋白在人類細胞中異源表達方式，便于靶向不同的位置，且編輯 范圍 可 達 到200 kb［37］。 此外，Pseudomonas aeruginosa的I-C 系統(tǒng)在該細菌內應用時，單靶點的編輯效率94% ～100%，可敲除7 ～424 kb長度的片段；同時，作者將Cas3的大片段敲除功能應用于基因組最小化研究中（圖3-A），通過對迭代篩選的存活細胞進行測序，成功敲除了非必需基因總長達849 kb，占整個基因組大小的13.6%［31］。從最小化基因組角度出發(fā)，刪除非必需基因有利于我們解析生命在底層上的架構，促進人工生命設計和合成的發(fā)展，同時也可用于研究非編碼DNA 的功能。這一應用也說明了在選擇靶向位點時，要考慮到大片段敲除的隨機性對細胞生長必需基因的影響，否則將影響細胞本身的存活。

3.2 利用修復機制插入或突變基因

基因敲除后，DNA 的修復方式之一是細胞內的同源重組機制，當人為給予修復模板時，該系統(tǒng)可以在基因組中的指定位點插入指定片段。一般方法是在表達CRISPR 陣列的質粒上攜帶一段非靶向的待插入片段，同時在兩側加上基因組插入位點兩側的同源序列，這段特定片段即被插入到基因組中（圖3-B）。例如，在引入靶基因的點突變或連續(xù)點突變片段后，野生型的基因被靶向降解而突變體存活，通過篩選即可以得到一系列基因組水平上的突變菌株［29］。實驗中發(fā)現(xiàn)，對某些堿基位點的編輯效率比較低，這可能是因為突變這些位點后序列仍可被有效靶向。從結構上看，DNA結合crRNA時，第6、12、18等位點的堿基出現(xiàn)翻轉而不與crRNA 相互作用，因此在這些位點的突變不會影響特異性識別，從而產(chǎn)生編輯逃逸。此外，基于CRISPR 的基因編輯策略可以對染色體基因進行原位標記，通過設計同源重組的位點和插入片段序列，在目標基因的起始密碼子ATG 后插入24 個堿基的flag 基因片段的效率接近100%［30］，便于在生理條件下進行基因表達研究。需要注意的是，對于多倍體生物而言，每個細胞的染色體數(shù)目為多個，導致自身基因組之間發(fā)生高頻率的同源重組，在一定程度上產(chǎn)生對CRISPR 系統(tǒng)的耐受，理論上可以嘗試更換蛋白表達啟動子，增強CRISPR系統(tǒng)的瞬時表達等方法來控制。

3.3 利用CRISPR陣列特點進行多基因編輯

除了對單個基因進行編輯，CRISPR 陣列的序列特點使得多基因同時編輯變得非常容易。Ⅰ型系統(tǒng)中，只需要在表達crRNA 質粒中增加幾十個堿基，設計多個間隔序列即可（圖3-C），I-B［30］、IC［31］和I-F［38］等系統(tǒng)都驗證了這一應用。此外，根據(jù)Cas3 的核酸酶活性方向，在需要刪除的片段兩端分別設計crRNA，向中間降解后或可產(chǎn)生特定范圍的敲除，降低單向降解的隨機性。目前靶向多基因的實驗大都在原核細胞中進行，可能是由于電轉質粒后再表達蛋白對真核細胞的毒性較大［36］，因此需要電轉不同的核糖核蛋白復合物來實現(xiàn)，這一手段有一定技術難度，或許將成為下一階段的研究目標。

3.4 利用效應復合物的靶向性融合表達調控蛋白

CRISPR-Cas 系統(tǒng)精準的靶向性使其可以作為體內引導工具。效應復合物在PAM 序列和crRNA的引導下，能夠將融合表達的蛋白帶到調控位點，從而激活基因（CRISPRa）或沉默基因（CRISPRi）的表達，且該融合一般不會影響效應復合物本身的組裝（圖3-D）。研究人員在HEK293T 細胞中轉染相關質粒，將菌株效應復合物的骨架蛋白Cas7 融合轉錄激活因子VPR（VP64-p65-Rta）［38］，通過效應復合物的靶向作用帶領VPR 到達指定位點，調控外源蛋白GFP 或內源蛋白HBB 的表達。同樣可將效應復合物的蛋白融合一些核酸內切酶或DNA 甲基化酶等從而發(fā)揮特定的效應［39］，例如，融合依賴二聚化的非特異性FokI 核酸酶結構域可實現(xiàn)對靶標基因的高效率特異性編輯［37］。由于骨架蛋白拷貝數(shù)與間隔序列的長度成正相關，研究發(fā)現(xiàn)按比例延長間隔序列的長度能在一定范圍增加骨架蛋白的拷貝數(shù)，由此增強對特定靶標位置上基因轉錄的沉默調控［40］，這可能與crRNA-DNA 之間互補的長度增加以及效應復合物發(fā)揮的空間位阻效應有關，提示可以調整間隔序列的長度來改變效應復合物的活性，以滿足不同的調控需求。同時，效應復合物的多亞基特性，也為融合多個調控因子發(fā)揮作用提供了極大的可能性。

4 總結與展望

CRISPR-Cas系統(tǒng)存在于約90% 的古細菌以及40% 的細菌基因組中，為了應對復雜的生存環(huán)境，很多細菌同時具有多個CRISPR-Cas 系統(tǒng)，這廣泛性揭示了CRISPR-Cas系統(tǒng)作用機制的高效和精確性。通過優(yōu)化改造Ⅰ型系統(tǒng)的效應復合物，可以實現(xiàn)精準地插入、敲除或替換目的基因。例如通過改變Cas 蛋白的某些氨基酸序列改變效應復合物的最佳活性溫度，從而更適合在人類細胞中應用；同時，效應復合物的含量在一定范圍內與編輯效率呈現(xiàn)正相關。融合表達調控基因時，延長間隔序列的長度可以增加骨架蛋白的拷貝數(shù)，從而增強調控作用，一定程度上提高編輯效率；此外由于重復序列具有同源重組效應，可能丟失中間的間隔序列而降低效率，這一問題可以通過改變引起重組反應的部分堿基來解決。選擇靶標序列時，crRNA 與前間隔序列之間的核苷酸錯配影響CRISPR復合物干擾的效率，相對于鳥嘌呤，胞嘧啶突變更容易被耐受［41］，有研究認為前間隔序列中適度的高鳥嘌呤-胞嘧啶（GC）含量會提高編輯效率，但過高的GC含量（＞62.5%）也會降低CRISPR干擾效應［42］。

Figure 3 Gene editing applications of type I CRISPR-Cas systemA: Cas3 deletes large fragments of non-essential genes and minimizes the genome; B: Insert a gene into the target fragment through homologous recombination; C: Design different spacers in one CRISPR array to target different genes and edit two genes at the same time; D: Regulatory protein is fused with Cascade,and reaches the transcriptional regulatory region through the targeting effect of Cascade,controlling gene expression or silence

對于Cas3 而言，其長基因片段缺失功能將有助于對非編碼區(qū)基因的探究，有望開發(fā)成為大規(guī)模檢測基因組功能的工具，對遺傳學研究具有深遠的意義。此外，CRISPR 激活（CRISPRa）和CRISPR 抑制（CRISPRi）的應用范圍廣泛，無論在實驗方案設計或實驗操作中，融合不同調控蛋白過程的可操控性較強，Ⅰ型CRISPR-Cas 系統(tǒng)的效應復合物在基因編輯的各個方面都具有很大的應用價值。未來應用中，在動物模型搭建、基因組功能研究、基因檢測以及基因編輯為原理的疾病治療、藥物遞送等領域，Ⅰ型CRISPR-Cas 系統(tǒng)的特點和功能為人們提供更多的方法和思路。