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    高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定茶葉中赤霉素的研究

    2021-12-24 11:59:06鄧六愛張念英禚歡歡
    農(nóng)產(chǎn)品加工 2021年22期
    關(guān)鍵詞:赤霉素甲酸乙腈

    鄧六愛,劉 峰,張念英,郭 冰,禚歡歡

    (日照市市場監(jiān)管檢驗檢測中心,山東 日照 276800)

    生長調(diào)節(jié)劑是一類能對植物生長起調(diào)節(jié)作用的活性物質(zhì)[1]。赤霉素是較常見的一種植物生長調(diào)節(jié)劑,在植物生長和發(fā)育中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用[2]。茶樹是一種以收獲幼嫩葉芽為主的多年生經(jīng)濟作物,茶樹春梢萌動越早,春茶生產(chǎn)時段越長,產(chǎn)生的經(jīng)濟效益就越大。赤霉素可以打破嫩芽冬眠,促進(jìn)新梢萌發(fā)及嫩芽生長,提高茶葉產(chǎn)量[3-4]。目前,茶園中廣泛使用赤霉素,盡管赤霉素毒性不大,但長期大量不合理使用也會在人體器官中蓄積,造成慢性中毒[5]。歐盟規(guī)定赤霉素的最高殘留限量值(MRL)為5 mg/kg。我國目前尚未制定茶葉中赤霉素的最大殘留限量[6-10]。

    目前國內(nèi)外檢測赤霉素的方法有毛細(xì)管氣相色譜法[11]、高效液相色譜法[12-13]、氣質(zhì)聯(lián)用法、酶聯(lián)免疫法[14]、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[15-17]等。有些前處理較為繁瑣,有些方法靈敏度低,存在操作復(fù)雜、環(huán)境不友好等缺點。但是,對茶葉中赤霉素檢測方法未見相關(guān)文獻(xiàn)報道。試驗建立了超高壓液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜分析茶葉中赤霉素含量的檢測方法,操作簡單快速、可靠準(zhǔn)確,為開展茶葉中赤霉素的安全性研究提供了參考。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑

    QTrap4500型高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國SCIEX公司產(chǎn)品;3-18KS型高速冷凍離心機,德國SIGMA公司產(chǎn)品;EVAP-45型水浴氮氣吹干儀,美國Organomation公司產(chǎn)品;KQ-500DE型數(shù)控超聲清洗器,昆山市超聲儀器有限公司產(chǎn)品;IKA MS3 basic型高速均質(zhì)儀,德國IKA公司產(chǎn)品;XPE205型分析天平(梅特勒感量0.01 mg);ME1002E型分析天平(梅特勒感量0.01 g)。

    標(biāo)準(zhǔn)品:赤霉素(純度97.9%),德國Dr.Ehrenstorfer公司提供;甲醇(色譜純,CNW)、乙腈(色譜純,CNW)、甲酸(色譜純,CNW)、HC-C18、PSA,GCB,其他試劑為分析純;所有試驗用水為一級水。

    1.2 液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜條件

    色譜柱:Xbridge C18柱,2.1 mm×150 mm,3.5 μm;流速0.20 mL/min,進(jìn)樣量10 μL,柱溫40℃。

    流動相:梯度洗脫;5 mmol/L乙酸銨溶液(含0.1%甲酸)(A)和乙腈(B),梯度洗脫程序:0min,A為95%,B為5%;2min,A為95%,B為5%;2.1min,A為90%,B為10%;8.0min,A為20%,B為80%;10.0min,A為20%,B為80%;10.1min,A為95%,B為5%;12min,A為95%,B為5%。

    質(zhì)譜條件:電噴霧ESI離子源,離子源溫度550℃;采用負(fù)離子(ESI-)采集模式,多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)方法測定;離子噴霧電壓4.5 kV;霧化氣、氣簾氣、碰撞氣均為高純氮氣,使用前調(diào)節(jié)各氣體流量,以使質(zhì)譜靈敏度達(dá)到檢測要求。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 樣品前處理

    準(zhǔn)確稱量赤霉素標(biāo)準(zhǔn)品25 mg于25 mL容量瓶中,用色譜純甲醇溶解,定容至25 mL,配制成1 000 μg/mL的赤霉素標(biāo)準(zhǔn)儲備液,置于-20℃的冰箱中保存。再以甲醇逐級稀釋成100.0,10.0,1.0 μg/mL的赤霉素標(biāo)準(zhǔn)中間液。取適量的赤霉素標(biāo)準(zhǔn)中間液,以0.1%甲酸乙腈(1∶1)溶液為稀釋溶劑配制成10,20,50,100,200 ng/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液。取空白樣品,經(jīng)1.3.1處理至氮吹近干后,加入1.00 mL混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,制備成基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,現(xiàn)用現(xiàn)配。

    1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

    準(zhǔn)確稱取10 g經(jīng)粉碎后備茶葉(準(zhǔn)確至0.01 g)試樣于50 mL離心管中,加入20 mL含1%甲酸的乙腈溶液,渦旋2 min,超聲提取15 min,以轉(zhuǎn)速10 000 r/min離心5 min,取上清液轉(zhuǎn)移至離心管中。再分別用10 mL含1%甲酸的乙腈溶液提取2次,合并上清液。上清液中加入4 g無水硫酸鎂和1 g無水乙酸鈉,立即渦旋混合1 min,以轉(zhuǎn)速10 000 r/min離心5 min。

    精密量取上層乙腈溶液8 mL置于15 mL離心管中(含400 mg無水硫酸鎂和120 mg HC-C18),渦旋2 min,以轉(zhuǎn)速10 000 r/min離心5 min。取上清液于15 mL試管中,于45℃水浴中氮吹至近干,以1.00 mL甲酸-乙腈(1∶1)定容。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 樣品前處理方法優(yōu)化

    2.1.1 提取溶劑的選擇

    由于赤霉素難溶于水,參考文獻(xiàn)表明采用甲醇和乙腈作為提取溶劑時,甲醇提取效果及回收率不理想,乙腈提取效果明顯提高。因此,優(yōu)先考慮使用乙腈作為提取溶劑。根據(jù)赤霉素的分子結(jié)構(gòu)和化學(xué)性質(zhì),酸化乙腈更有利于赤霉素的提取。試驗分別考查了純乙腈、1.0%甲酸乙腈、1.0%乙酸乙腈3種提取溶劑對赤霉素的提取效果。

    結(jié)果表明,采用純乙腈提取回收率低,難以滿足檢測要求。赤霉素中含有羧基,受pH值影響較大,酸性條件能抑制羧基在溶液中電離成離子形態(tài),保持分子狀態(tài)更有利于提取。采用1.0%的酸化乙腈,鮮葉和干茶中赤霉素的提取效果均有所改善,1.0%的甲酸乙腈效果好于1.0%乙酸乙腈。試驗同時考查乙腈中加入0.1%,0.5%,1.0%甲酸對赤霉素的提取影響。當(dāng)在乙腈中加入1.0%的甲酸,回收率大于90%,明顯優(yōu)于其他2種提取溶劑。因此,試驗最終選用1.0%的甲酸乙腈溶液進(jìn)行鮮葉和干茶中赤霉素的提取。

    不同提取溶劑茶葉中赤霉素回收率見表1。

    表1 不同提取溶劑茶葉中赤霉素回收率

    2.1.2 提取溶劑用量和提取條件的選擇

    茶葉基質(zhì)復(fù)雜,提取條件需要使基質(zhì)干擾最小并且能有效提取目標(biāo)物。結(jié)果表明,采用30 mL 1.0%甲酸乙腈溶液提取時,提取溶劑用量不夠,回收率偏低。采用1.0%甲酸乙腈50 mL與1.0%甲酸乙腈溶液40 mL提取,回收率相差不大。乙腈具有一定的毒性,本著有機溶劑用量少、保護(hù)環(huán)境的原則選用1.0%甲酸乙腈溶液40 mL進(jìn)行提取。超聲提取次數(shù)的不同,可能會直接影響目標(biāo)物提取效率。研究表明,1次提取不完全,回收率偏低;2次提取,回收率約至80%以上,基本達(dá)到試驗?zāi)康?。但目?biāo)物添加含量高(100 μg/kg)時回收率降至60%左右,存在提取不完全現(xiàn)象。綜合考慮,采用3次提取,鮮葉和干茶回收率均可提高至95%以上。

    不同提取條件茶葉中赤霉素回收率見圖1。

    圖1 不同提取條件茶葉中赤霉素回收率

    2.1.3 吸附劑的選擇

    液液萃取法、QuEChERS法、固相萃取小柱法等是常用凈化的手段[17]。QuEChERS法簡單快速,一般先在提取液中加入一定量的無水硫酸鎂、無水乙酸鈉等去除水分和水溶性雜質(zhì),促進(jìn)待測物向乙腈溶液中轉(zhuǎn)移。然后加入一定量的分散固相萃取劑,如十八烷基硅烷C18粉、N-丙基乙二胺PSA粉、石墨化碳黑GCB粉,以達(dá)到除雜凈化的作用。

    不同吸附凈化劑的作用機理不同,試驗分別考查離子交換劑(PSA)、惰性吸附劑(石墨化炭黑GCB)、廣譜型凈化材料C18這3種常用吸附劑對樣品的凈化效果及回收率的影響。PSA主要作用力是極性相互作用及弱陰離子交換作用,對于脂肪酸、有機酸、有機碳水化合物等極性化合物有較好的吸附作用,因此對帶有羧基結(jié)構(gòu)的赤霉素有很大程度的吸附,明顯影響目標(biāo)物的回收效果。GCB粉作為吸附凈化劑可用于去除色素等干擾物,但同時對待測物也有明顯的吸附作用,回收率進(jìn)一步降低。C18具有強非極性作用,對極性較弱的烯烴類、色素等干擾物有較好的吸附效果。試驗采用C18作為吸附劑回收率及凈化效果明顯較好,試驗還同時比較了C18凈化粉的用量,隨著用量的增加,凈化效果顯著提高。在C18粉用量120 mg時,回收率可達(dá)90%以上,增加至250 mg時,回收率基本變化不大。因此,選擇C18粉120 mg作為試驗的吸附凈化劑。

    不同吸附劑茶葉赤霉素回收率見圖2,C18吸附劑用量對赤霉素回收率的影響見圖3。

    圖2 不同吸附劑茶葉赤霉素回收率

    圖3 C18吸附劑用量對赤霉素回收率的影響

    2.1.4 定容溶劑的優(yōu)化

    為了提高赤霉素高效液相色譜-質(zhì)譜檢測過程中的靈敏度和色譜峰形,考查了0.1%甲酸乙腈(1∶1)溶液、乙腈、0.1%甲酸水溶液作為定溶溶劑時赤霉素的分離提取效果。結(jié)果表明,0.1%甲酸水溶液不能充分復(fù)溶目標(biāo)物導(dǎo)致回收率偏低;采用乙腈作為定容溶劑時,色譜峰分離效果差;采用0.1%甲酸乙腈(1∶1)溶液定容赤霉素色譜峰能夠有效分離,得到滿意的峰型且回收率較高。因此,試驗選用0.1%甲酸乙腈(1∶1)溶液作為定容溶劑。

    2.2 流動相優(yōu)化

    流動相對目標(biāo)物的峰形、靈敏度及分離度有較大的影響。試驗初期,采用甲醇和純水作為流動相,響應(yīng)偏低、靈敏度不高、重復(fù)性差,可能是由于赤霉素在水溶液中不穩(wěn)定容易分解有關(guān)。目前,植物生長調(diào)節(jié)劑殘留檢測大多應(yīng)用有機溶劑配合酸類或鹽類物質(zhì)配比作為流動相。把流動相中的純水換成0.1%甲酸水(V/V),響應(yīng)和穩(wěn)定性提高。這是因為赤霉素在酸性條件下穩(wěn)定,流動相中的酸能促進(jìn)增強負(fù)離子模式下的赤霉素分子離子化的結(jié)果。而采用5 mmol/L乙酸銨水溶液(含0.1%甲酸)和乙腈作為流動相時,流動相的離子強度進(jìn)一步增加,目標(biāo)物質(zhì)響應(yīng)值達(dá)到理想,響應(yīng)值及峰形有明顯改善。

    2.3 質(zhì)譜條件優(yōu)化

    赤霉素中含有羧基,采用ESI負(fù)離子掃描模式,有利于獲得更好的離子化效率。采0.10 μg/mL的赤霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液經(jīng)真泵注射進(jìn)樣,得到赤霉素準(zhǔn)分子離子峰m/z345.1。以m/z345.1為母離子,通過子離子掃描得到赤霉素子離子主要是m/z239.0和m/z143.0,子離子m/z239.0豐度最大。因此,可以確定質(zhì)譜分析赤霉素時,定量離子對為m/z345.1>239.0,定性離子對為m/z345.1>239.0,m/z345.1>143.0。然后再對錐孔電壓和毛細(xì)管電壓等參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,使分子離子和特征碎片離子強度達(dá)到最大,確定最佳質(zhì)譜參數(shù)。按照試驗確定的條件得到赤霉素標(biāo)準(zhǔn)圖譜。

    赤霉素標(biāo)品色譜圖(100 ng/mL)見附圖4。

    圖4 赤霉素標(biāo)品色譜圖(100 ng/mL)

    2.4 工作曲線、線性范圍及檢出限的確認(rèn)

    空白基質(zhì)樣品前處理后,配制成質(zhì)量濃度為10.0~800 ng/mL標(biāo)準(zhǔn)基質(zhì)工作系列,在此范圍內(nèi)呈線性關(guān)系。實際方法驗證過程以10.0~200 ng/mL范圍的標(biāo)準(zhǔn)基質(zhì)工作溶液為標(biāo)準(zhǔn)系列,以工作液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)、色譜峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到赤霉素的線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限、定量限。結(jié)果表明,鮮葉赤霉素在10.0~200 ng/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)為0.999 8;干茶赤霉素在10.0~200 ng/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)為0.999 8。采用空白基質(zhì)中添加目標(biāo)組分,前處理后上機,信噪比法確定方法檢出限(LOD)和定量限(LOQ)。鮮葉中赤霉素的LOD和LOQ為0.99,3.31 μg/kg;干茶中赤霉素的LOD和LOQ為0.26,0.88 μg/kg。

    赤霉素的線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限(LOD)、定量限(LOQ)見表2。

    表2 赤霉素的線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限(LOD)、定量限(LOQ)

    2.5 準(zhǔn)確度和重復(fù)性

    選用鮮葉與干茶作為空白基質(zhì),進(jìn)行加標(biāo)回收和精密度試驗。樣品添加量為10,20,100 μg/kg 3個質(zhì)量濃度標(biāo)準(zhǔn),每種質(zhì)量濃度平行測定6次,鮮葉赤霉素加標(biāo)回收率為80.5%~98.5%,干茶赤霉素加標(biāo)回收率在85.0%~106.0%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于5%,方法的回收率和精密度滿足檢測要求。因此,該方法適用于茶葉中赤霉素的測定。

    茶葉中赤霉素的加標(biāo)回收率及精密度(n=6)見表3。

    表3 茶葉中赤霉素的加標(biāo)回收率及精密度(n=6)

    3 結(jié)論

    根據(jù)赤霉素化學(xué)性質(zhì),建立了高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜檢測茶葉中赤霉素的方法。該方法通過對前處理過程和色譜質(zhì)譜條件優(yōu)化,較好地控制了基質(zhì)干擾,靈敏度高,方法的線性關(guān)系、回收率良好,精密度和準(zhǔn)確度較高。采用該方法對從市場上隨機購買的春季綠茶樣品進(jìn)行檢測,含量為0.94~371 μg/kg。適用于茶葉中赤霉素殘留的檢測,具有較高的實際應(yīng)用價值。

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