維藥神香草的質量控制研究

韓雪 李莉 刁娟娟

【摘 要】 目的：建立神香草質量控制的方法。方法： 以迷迭香酸和蒙花苷作為指標成分，建立神香草鑒別和含量測定的方法，進行方法學考察。結果：高效薄層掃描法采用聚酰胺薄膜，以二氯甲烷-乙酸乙酯-甲酸（2∶[KG-*3/5]5∶[KG-*3/5]1）展開劑，藥材與各對照品在相同位置顯相同顏色的斑點。二者線性關系（高效薄層掃描法： r1=0.9958、r2=0.99328，高效液相色譜法： r1=0.9999、r2=0.9997）;精密度、穩(wěn)定性、重復性（RSD<5%）良好;通過生態(tài)量表分析高效薄層掃描法的數(shù)據(jù)極好的，高效液相色譜法是可接受的。說明高效液相色譜法和高效薄層掃描法均可作為神香草質量控制的檢測方法。結論： 本研究建立的神香草質量控制方法穩(wěn)定、重復性好，為神香草的質量控制提供實驗依據(jù)。

【關鍵詞】 高效液相色譜;高效薄層掃描;迷迭香酸;蒙花苷

【中圖分類號】R284?? 【文獻標志碼】 A【文章編號】1007-8517（2021）20-0016-06

Study on Quality Control of Hyssopus Officinalis

HAN Xue LI Li* DIAO Juanjuan

School of Pharmacy， Xinjiang Medical University， Urumqi 830011， China

Abstract：Objective To establish a method for quality control of Hyssopus officinalis.Methods With rosmarinic acid and mongoside as indicator components， a method for identification and content determination of Hyssopus officinalis was established， and the methodology was investigated.Results High performance thin layer chromatography scanning （HPTLCS） used polyamide film and dichloromethane-ethyl acetate-formic acid （2∶[KG-*3/5]5∶[KG-*3/5]1） as a developing agent. The medicinal material and each reference substance showed spots of the same color at the same position.The linear relationship between the two （HPTLCS： r1=0.9958， r2=0.99328， High performance liquid chromatography （HPLC）： r1=0.9999， r2=0.9997）; the precision， stability， and repeatability （RSD<5%） are good; the HPTLCS data analyzed by Ecological Scale Analysis（ESA） is excellent， HPLC is acceptable.It shows that both HPLC and HPTLCS can be used as detection methods for Hyssopus officinalis quality control.Conclusion The quality control method of Hyssopus officinalis established in this study is stable and reproducible， which provides experimental basis for the quality control of Hyssopus officinalis.

Key words：HPLC; HPTLCS; Rosmarinic Acid; Buddleoside

神香草為唇形科（Labiatae）神香草屬（Hyssopus）硬尖神香Hyssopus cuspidatus Boriss.的地上干燥部分，主要分布在新疆阿勒泰等地，是新疆地區(qū)習用草藥?！毒S吾爾藥志》記載其“性二級熱，味苦、辛，氣芳香，具有溫肺平喘、祛寒止咳、燥濕祛痰、發(fā)汗解毒、消炎退腫的功效，用于濕寒性和黏液質性呼吸病[1]”。研究[2-4]報道，神香草中富含揮發(fā)油、三萜、黃酮、酚酸、多糖等成分，被廣泛應用于維藥、中成藥中。臨床上，神香草多為感冒、咳嗽藥方中的主藥或輔藥，還被制成祛痰劑、發(fā)汗劑等 [5]。

1999年《中華人民共和國衛(wèi)生部藥品標準·維吾爾藥分冊》[6]收錄神香草，其中包括了藥材的外觀性狀、性味和功能主治等。該藥材藥用價值較高，但近年來藥材購買市場較混亂，因為其極易與大苞荊芥混淆，所以建立質量控制的方法至關重要。前期已有學者對神香草和混淆品大苞荊芥進行了初步的質量標準研究[7]，選用三萜類代表成分齊墩果酸與熊果酸作為指標成分。

神香草為本課題組所研究的中成藥羅歐咳祖帕的主藥，主要應用其抗炎、抗氧化、抗哮喘的功效，前期藥效研究[8-16]表明酚酸類與黃酮類成分是抗炎、抗氧化的主要活性部位。根據(jù)相關文獻[17]報道，酚酸類化合物迷迭香酸具有抗炎、抗菌、抗哮喘的功能，可通過改善內源性抗炎機制，抑制炎癥細胞的釋放，從而改善哮喘癥狀。黃酮類化合物蒙花苷具有抗菌消炎功能，而大苞荊芥未見文獻報道黃酮類化合物蒙花苷的存在。因此本課題組選擇酚酸類化合物迷迭香酸和黃酮類化合物蒙花苷為指標成分，對不同產(chǎn)地的神香草藥材進行定性定量分析。目前，大多采用高效液相色譜法測定其含量，鮮有報道高效薄層掃描法對神香草中有效成分進行定量分析。高效薄層掃描法具有定性定量、操作快速、簡單、成本低廉的優(yōu)點[18-19]。本實驗在對神香草進行質量控制的同時，并采用生態(tài)量表（ESA）對實驗過程中環(huán)境友好程度進行對比分析[20-22]，以期為神香草中迷迭香酸和蒙花苷的質量控制和含量測定提供依據(jù)。

1 材料

1.1 藥材與試劑 神香草采購自新疆和田地區(qū)，由新疆醫(yī)科大學藥學院帕麗達教授鑒定為硬尖神香草。共有五批樣品：S1（20110719）， S2（1911044）， S3（1909026）， S4 （1910039）。生藥學圖片如圖1所示。迷迭香酸（批號：111871-201706，中國食品藥品研究院）;蒙花苷（批號：20210606，北京索萊寶科技有限公司）;乙腈（色譜純，西格瑪奧德里奇上海貿(mào)易有限公司）;甲醇，磷酸，二氯甲烷，乙酸乙酯，甲酸（分析純）;聚酰胺薄膜（20 cm×10 cm，浙江臺州路橋四甲基生化塑料廠）。

1.2 儀器 高效液相色譜儀（日本島津，LC-20AT）;TLC掃描儀3、Reprostar 3薄層色譜、Linomat5半自動點樣儀均來自CAMAG（瑞士）;數(shù)控超聲波清洗器（KQ500DE，昆山市超聲儀器有限公司）;電子天平（AL104，梅特勒-托利多儀器上海有限公司）;分析天平（AB135-S，d=0.01/0.1mg，梅特勒-托利多儀器上海有限公司）

1.3 高效液相色譜法

1.3.1 對照品溶液配制 精密稱取迷迭香酸10 mg置于10 mL量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，得到迷迭香酸對照品儲備液;精密稱取蒙花苷5 mg置于25 mL量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，得到蒙花苷對照品儲備液。

1.3.2 供試品溶液配制 精密稱定神香草粉末0.5 g（過篩），置于具塞錐形瓶中，加入25 mL80%甲醇，稱定其質量，超聲（500 W、40 KHz）提取30 min，放冷后再稱定質量用溶劑補足重量，合并濾液，搖勻，用0.22 μm微孔濾膜過濾，取續(xù)濾液作為供試品溶液。

1.3.3 高效液相色譜條件 色譜柱：Sepax HP-C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）;等度洗脫：乙腈-0.1%磷酸（25∶[KG-*3/5]75）;檢測波長：330 nm;流速：1 mL/min;柱溫：30 ℃;進樣量：10 μL。如圖2所示。

1.4 高效薄層掃描法

1.4.1 對照品溶液配制 精密吸取“1.3.1”項下對照品儲備液經(jīng)稀釋分別得到迷迭香酸和蒙花苷對照品溶液。

1.4.2 供試品溶液制備 精密稱定神香草粉末1.0 g（過篩），置于具塞錐形瓶中，加入15 mL甲醇，稱定其質量，超聲（500 W、40 KHz）提取30 min，放冷后再稱定質量用溶劑補足重量，合并濾液，搖勻，用0.22 μm微孔濾膜過濾，取續(xù)濾液作為供試品溶液。

1.4.3 薄層層析及薄層掃描條件 聚酰胺板（20 cm×10 cm），條狀點樣，點樣量為3 μL，試驗前置110 ℃電熱恒溫鼓風干燥箱中活化20 min后，在干燥環(huán)境中放冷，以二氯甲烷∶[KG-*3/5]乙酸乙酯∶[KG-*3/5]甲酸=2∶[KG-*3/5]5∶[KG-*3/5]1為展開劑，雙槽展開缸中飽和15 min，展開，取出，晾干，以2%三氯化鋁溶液顯色，105 ℃加熱5 min，置于366 nm紫外燈下檢視。在200～700 nm全波長下進行直線掃描檢測，狹縫寬度為6 mm×0.3 mm，掃描速度為20 mm/min。使用了氘燈。測量供試品吸光度積分值和對照品吸光度積分值并計算。如圖3～4所示。

2 方法與結果

2.1 線性范圍 使用半自動點樣儀分別吸取迷迭香酸和蒙花苷對照品溶液，以點樣量0.5、1、1.5、2、2.5、3 μL分別點于聚酰胺板上，按照“1.4.3”項下的色譜條件展開、掃描。對照品儲備液經(jīng)倍半稀釋法得到系列溶液。根據(jù)“1.3.3”項下的色譜條件下測定峰面積，以質量（X）為橫坐標，峰面積積分值（Y）為縱坐標，繪制標準曲線，得出回歸方程。見表1。

2.2 精密度試驗 將迷迭香酸和蒙花苷對照品溶液分別點在同一聚酰胺板上（2 μL， n=6），按照“1.4.3”項下的色譜條件連續(xù)測定3 d。在3 d內，根據(jù)“1.3.3”項下的色譜條件，每天重復測定6次標準溶液。用相對標準偏差（RSD）計算了兩種方法的日間和日間精度。見表2。

2.3 穩(wěn)定性試驗 供試品溶液（1911044）點于在同一聚酰胺板上（3 μL， n= 6），按照“1.4.3”項下的色譜條件展開。根據(jù)“1.3.3”項下的色譜條件，考察樣品S2在0、2、4、6、8、12、24 h內的穩(wěn)定性。兩種方法的相對標準偏差（RSD）值計算。見表3。

2.4 重復性 精確稱量同批次（1911044）樣品6份，分別按照“1.3.2”和“1.4.2”項下的方法制備樣品溶液，在“1.4.3”項下的色譜條件下，將樣品溶液點在同一聚酰胺板上。根據(jù)“1.3.3”項下的色譜條件對供試品溶液進行檢測。兩種方法的相對標準偏差（RSD）小于3.00%，表明本方法重復性良好。

2.5 加樣回收率 首先，分別按照“1.3.2”和“1.4.2”項下的方法平行制備供試溶液，測定迷迭香酸和蒙花苷的含量。將待測溶液按比例1∶[KG-*3/5]1加入對照品溶液，按“1.4.3”項下色譜程序進行點樣、顯色、掃描。同樣的供試品溶液按對照品0.5∶[KG-*3/5]1∶[KG-*3/5]1.5的比例加入，在“1.3.3”項下的色譜條件下用高效液相色譜法檢測。計算兩種方法的樣品回收率和相對標準偏差（RSD）。見表4、5。

2.6 含量測定 在相應的色譜條件下，分別采用HPTLCS和HPLC法測定4批神香草中迷迭香酸和蒙花苷的含量，并計算不同方法測定的含量。對比兩種方法測定神香草中迷迭香酸和蒙花苷的含量。見表6、7。

2.7 生態(tài)量表（ESA）分析 計算了兩種方法分析的時間和試劑消耗?？梢钥闯觯捎肏PTLCS檢測神香草中迷迭香酸和蒙花苷的含量的時間和試劑消耗較少。見表7。根據(jù)PPs算法規(guī)則，對計算結果進行尺度排序，得分大于75代表綠色分析優(yōu)秀，從75到50代表綠色分析可接受，小于50代表綠色分析不合格。結果表明，HPTLCS在分析生態(tài)尺度中得分較高。得分越高，說明該方法越環(huán)保、綠色。結果見表8。因此，可以看出HPTLCS是一種更經(jīng)濟、環(huán)保的分析技術。

3 討論

3.1 指標物選擇 通過藥效追蹤確定抗炎的有效部位為酚酸類和黃酮類，結合相關研究暫定以酚酸類化合物迷迭香酸和黃酮類化合物蒙花苷為指標成分，指標成分的選擇與藥效息息相關，采用不同類指標成分和不同檢測方法對神香草進行更全面的質量評價和質量控制研究。

3.2 薄層板選擇 本研究在薄層鑒別時最初選用高效硅膠板，考察了多個展開劑發(fā)現(xiàn)蒙花苷始終無法顯色，由于蒙花苷是黃酮類成分，所以將硅膠板換為聚酰胺薄膜。在紫外366 nm下顯黃色斑點。

3.3 混淆品鑒別 由于市場中藥材較混亂，神香草購買過程中多次出現(xiàn)混淆品大苞荊芥，所以本研究在建立神香草質量標準的同時，以相同的色譜條件和相同的指標成分對混淆品大苞荊芥進行鑒別、分析，結果顯示，與神香草相比，大苞荊芥中迷迭香酸含量較低，無黃酮類化合物蒙花苷，因此可以采用該方法區(qū)分神香草與混淆品大苞荊芥，為保證藥材正確性提供參考價值。

3.4 不同方法比較 高效液相色譜法與高效薄層掃描法相比，前者靈敏度高、結果更準確、穩(wěn)定，但樣品制備較復雜，費用高;后者具有操作簡單、迅速的特點，雖然靈敏度稍低，但高效薄層掃描法可作為一個簡單、快速的質量控制方法。通過二者實驗對比，期望對建立神香草質量標準提供后期實驗依據(jù)。

綜上，本研究所建立的神香草定性、定量方法具有簡便、可行、重復性好的特點，可為快速鑒別神香草提供科學依據(jù)，為完善、建立質量標準奠定基礎。

參考文獻

[1]尹龍萍，鄧毅，姚雷，等.維藥祖發(fā)奇尼的抗菌和解痙作用實驗研究[J].時珍國醫(yī)國藥， 2007，18（2）：409-411.

[2]朱焱.維吾爾藥神香草化學成分及平喘作用的研究[D].烏魯木齊：新疆醫(yī)科大學.2008.

[3]趙軍，徐芳，賀金華，等.硬尖神香草化學成分研究[J].中藥材，2013，36（1）：54.

[4]賈佳，許璟龍.迷迭香酸的研究現(xiàn)狀[J].黑龍江醫(yī)藥，2014，27（2）：258.

[5]LETIZIA M， ELLEN H T，SILVIA D. Host Location of Hyssopus pallidus a Larval Parasitoid of the Codling Moth， Cydia Pomonella[J]. Biological Control，1999（15）：241-51.

[6]國家藥典委員會.中華人民共和國衛(wèi)生部藥品標準·維吾爾藥分冊[M].烏魯木齊：新疆科技衛(wèi)生出版社， 1999：78.

[7]阿提坎木·瓦合甫.維藥神香草和其混淆品大苞荊芥進行了初步的質量標準研究[D].烏魯木齊：新疆醫(yī)科大學.2014.

[8]YUAN F， LIU R， HU M， et al. JAX2， an ethanol extract of Hyssopus cuspidatus Boriss， can prevent bronchial asthma by inhibiting MAPK/NF-κB inflammatory signaling. [J]. Phytomedicine： international journal of phytotherapy and phytopharmacology， 2019（ 57）： 305-314.

[9]BARNESARNES P J. New anti-inlammatory targets for chronic obstructive pulmonary disease[J]. Nat Rev Drug Discov， 2013， 12（7）： 543-559.

[10]CLAUDIA K， MARIELLA L， ANNA M S， et al. Romarinic acid content in basil plant grown in vitro and in hydroponics [J]. Cent Eur J Biol， 2011.

[11]正敏，廖曉光，文雪梅，等.迷迭香酸對哮喘小鼠氧化性肺損傷的保護作用[J].中國畜牧獸醫(yī)，20170， 12（44）：3650-3655.

[12]ZHOU M W， JIANG R H， KIM K D， et al. Rosmarinic acid inhibits poly induced inflammatory reaction of epidermal ker-atinocytes [J]. Life Sci， 2016（155）：189-194.

[13]VENKATACHALAM K， GUNASEKARAN S， JESUDOSS V A， et al. The effect of rosmarinic acid on 1，2-dimethylhydrazine induced colon carcinogenesis [J]. Exp Toxicol Pathol， 2013，65（4）：409-418.

[14]SIVAGAMI G， VINOTHKUMAR R， et al. Modualtory efficacy of rosmarinic acid on premaligant lesions and antioxidant status in 1，2-dimethylhydrazine induced rat colon carcinogenesis [J]. Environ Toxiron Pharmacol， 2012， 32（3）：949-958.

[15]KARTHIKKUMAR V， SIVAGAMI G， VISWANATHAN P，et al. Rosmarinic acid inhibits DMH-induced cell proliferation in experimental rats[J]. J Basic Clin Physiol Pharmacol，2015，26 （2）：185-200.

[16]XU Y， HAN S， LEI K， et al. Anti-Warburg effect of rosmarinic acid via miR-155 in co;orectal carcinoma cells [J]. Eur J Cancer Prev， 2016， 25（6）：481-489.

[17]BAVKHOUSE N， ROSALES L， APABLAZA C，etal. Analgesic， anti-inflammatory and antioxidant properties of Buddleja globosa，Buddlejaceae[J]. J Ethnopharmacol， 2008，116（2）：263-269.

[18]王靜，王淼.我國食品安全快速檢測技術發(fā)展現(xiàn)狀研究進展[J]. 農(nóng)產(chǎn)品質量與安全， 2014（2）：42-47.

[19]馮雅斌，杜靚，溫靜.薄層色譜法在藥物分析中的應用及研究進展[J]. 疾病監(jiān)測與控制， 2011，5（1）：60-63.

[20]PLOKA-WASYLKA J. A new tool for the evaluation of the analytical procedure： green analytical procedure index[J]. Talanta， 2014（181）：204–209.

[21]TOBISZEWSKI M， MARC′M， GA USZKA A， et al. Greenchemistry metrics with special reference to green analytical chemistry[J]. Molecules， 2015（20）：10928–10946.

[22]GA USZKA A， MIGASZEWAKI Z M， KONIECZKA P， et al. Analytical eco-scale for assessing the greenness of analytical procedures[J]. Trends Anal Chem， 2012（37）：61-72.

（收稿日期：2021-03-05 編輯：陶希睿）