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    沉默EpCAM表達(dá)對膽囊癌細(xì)胞增殖和遷移的影響

    2021-09-16 02:51:32鄔仲鑫蔡煒龍尹磊
    浙江醫(yī)學(xué) 2021年16期
    關(guān)鍵詞:膽囊癌細(xì)胞株克隆

    鄔仲鑫 蔡煒龍 尹磊

    膽囊癌起源于膽道上皮細(xì)胞,是膽道系統(tǒng)最常見的惡性腫瘤[1-2],在我國其發(fā)病率逐年增加。由于膽囊癌早期缺乏明顯和特殊的臨床癥狀,且易轉(zhuǎn)移,因此大多數(shù)患者明確診斷時已處于腫瘤中晚期。目前,根治性切除是膽囊癌唯一有效的治療方法,但其根治性(R0)切除率低[3]。膽囊癌對放化療效果不顯著,尚無有效的靶向治療或免疫治療方案,因此預(yù)后極差,患者平均生存時間只有5.2~24.4個月,且近年來,膽囊癌患者的5年相對生存率持續(xù)下降[4]。因此,目前亟待了解膽囊癌發(fā)生、發(fā)展的相關(guān)機(jī)制并研制出針對性較強(qiáng)的分子靶向治療藥物[5]。上皮細(xì)胞黏附分子(EpCAM)是一種分子量為40 kD的Ⅰ型跨膜糖蛋白,其通過參與細(xì)胞核信號傳導(dǎo)、介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞遷移、增殖和分化等過程,在腫瘤的發(fā)生和遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移中發(fā)揮重要作用。大量研究表明,EpCAM在結(jié)腸癌、肺癌、胃癌等腫瘤中呈高表達(dá)[6],且抗EpCAM靶向藥物已用于治療惡性腹腔積液[7]。然而有關(guān)EpCAM在膽囊癌中的作用研究很少,因此本研究探討沉默EpCAM表達(dá)對膽囊癌細(xì)胞增殖和遷移的影響。

    1 材料和方法

    1.1 實驗材料 人膽囊癌細(xì)胞株(EH-GB1、EH-GB2、GBC-SD、NOZ、OCUG-1、SGC-996)由中國科學(xué)院上海生命研究院細(xì)胞資源中心提供。DMEM培養(yǎng)基、William′s培養(yǎng)基、RPMI1640培養(yǎng)基、Opti-MEM培養(yǎng)基和FBS均購自美國Gibco公司;鏈霉素-青霉素雙抗購自上海翊圣有限公司;小干擾RNA si-NC和si-EpCAM(5′-CUAC AAGCUGGCCGUAAACdTdT-3′)、EpCAM引物均由上海拓然生物科技有限公司合成;脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑LipofectamineTM2000購自美國Invitrogen公司;CCK-8試劑盒、多聚甲醛、結(jié)晶紫均購自上海碧云天生物科技有限公司。反轉(zhuǎn)錄試劑盒和實時熒光定量PCR試劑盒均購自大連Takara公司;酶標(biāo)儀(BIORAD,IMARK)購自美國伯樂公司;顯微鏡(OLYMPUS,cx23)購自中國奧林巴斯有限公司。

    1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 將人膽囊癌細(xì)胞株置于5%CO2和37℃的培養(yǎng)箱中,分別用含10%FBS和100 U/ml青霉素、100 U/ml鏈霉素的培養(yǎng)基培養(yǎng)。EH-GB1、EH-GB2、GBC-SD和OCUG-1細(xì)胞株使用DMEM培養(yǎng)基,NOZ細(xì)胞株使用William培養(yǎng)基,SGC-996細(xì)胞株使用RPMI1640培養(yǎng)基。細(xì)胞常規(guī)置于100 mm培養(yǎng)皿中,于生長對數(shù)期時使用胰蛋白酶-EDTA消化并收集。

    1.3 細(xì)胞分組和轉(zhuǎn)染 將人膽囊癌細(xì)胞株NOZ和GBC-SD分為實驗組(si-EpCAM組)、對照組(si-NC組)和空白組(Control組),其中si-EpCAM組細(xì)胞轉(zhuǎn)染si-EpCAM,si-NC組細(xì)胞轉(zhuǎn)染si-NC,Control組細(xì)胞不添加小干擾RNA。將NOZ和GBC-SD細(xì)胞株接種于6孔板內(nèi),待長至30%~50%左右時進(jìn)行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染過程按照LipofectamineTM2000轉(zhuǎn)染試劑說明書進(jìn)行,即用250 μl Opti-MEM培養(yǎng)基培養(yǎng)液分別稀釋10 μl 20 μmol/L的siRNA儲存液和5 μl lipo2000,混勻并室溫孵育5 min后將兩者混合,室溫孵育20 min,加入到含有1 500 μl Opti-MEM培養(yǎng)基的6孔板內(nèi)。轉(zhuǎn)染6 h后,更換新鮮培養(yǎng)基。待48 h后收集人膽囊癌細(xì)胞株進(jìn)行后續(xù)實驗。

    1.4 EpCAM的mRNA相對表達(dá)量檢測 采用qRTPCR法。轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞中加入1 ml Trizol提取總RNA,檢測RNA的濃度和純度。按mRNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,qRT-PCR反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性30 s;95℃變性5 s;60℃退火延伸34 s,共40個循環(huán)。引物序列如下:上游:5′-AATCGTCAATGCCAGTGTACTT-3′;下游:5′-TCTCATCGCAGTCAGGATCATAA-3′。其相對表達(dá)量采用 2-ΔΔCt法計算。

    1.5 細(xì)胞增殖能力檢測 采用CCK-8法。轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞常規(guī)消化、離心、重懸后計數(shù),將細(xì)胞接種于96孔板中,GBC-SD 細(xì)胞每孔 0.8×103個,NOZ 細(xì)胞每孔 1×103個,每組設(shè)置5個復(fù)孔。將96孔板置于37°C、5%CO2培養(yǎng)箱中,分別于1、2、3、4 d加入培養(yǎng)液與CCK-8按9∶1 混合的反應(yīng)液 100 μl/孔,37 ℃避光培養(yǎng) 3~4 h 后取出,使用酶標(biāo)儀檢測450 nm處的吸光度(OD)值來表示細(xì)胞增殖能力,并繪制細(xì)胞生長曲線。上述實驗重復(fù)3次,取平均值。

    1.6 細(xì)胞克隆能力檢測 采用克隆形成實驗。轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞常規(guī)胰酶消化、離心、重懸后計數(shù),將細(xì)胞分別接種于3 cm培養(yǎng)皿中,每孔1 000個細(xì)胞,每組設(shè)置3個復(fù)孔,置于37°C、5%CO2培養(yǎng)箱中。持續(xù)2周,定期換液隨時檢查,到細(xì)胞形成克隆時終止培養(yǎng),染色觀察克隆數(shù)量。每孔加入1 ml 4%多聚甲醛固定后以結(jié)晶紫染色。拍照并采用Image J軟件進(jìn)行計數(shù)。上述實驗重復(fù)3次,取平均值。

    1.7 細(xì)胞遷移能力檢測 采用Transwell小室實驗。轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞常規(guī)胰酶消化、離心、重懸后計數(shù)。用無血清培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞密度至5×105/ml。取200 μl細(xì)胞懸液加于上層小室,下室加入500 μl 10%FBS的完全培養(yǎng)基,放置在37°C、5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi),培養(yǎng)24~48 h后取出Transwell小室,去除小室上清液,用PBS沖洗,多聚甲醛固定20 min后,用棉簽輕輕擦掉上層未遷移細(xì)胞,結(jié)晶紫染色20 min,PBS沖洗。顯微鏡下觀察和計數(shù)5個不同視野的細(xì)胞遷移數(shù)。上述實驗重復(fù)3次,取平均值。

    2 結(jié)果

    2.1 6株及3組細(xì)胞EpCAM的mRNA相對表達(dá)量比較 6株細(xì)胞中,NOZ和GBC-SD細(xì)胞株EpCAM的mRNA相對表達(dá)量相對較高,SGC-996細(xì)胞株最低,見圖1;而在NOZ和GBC-SD細(xì)胞株中,si-EpCAM組Ep-CAM的mRNA相對表達(dá)量均明顯低于si-NC組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05),見表1。

    表1 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞EpCAM的mRNA相對表達(dá)量比較

    圖1 6株膽囊癌細(xì)胞EpCAM的mRNA相對表達(dá)量比較(EpCAM為上皮細(xì)胞黏附分子)

    2.2 3組細(xì)胞增殖能力比較 加入CCK-8后第4天,NOZ和GBC-SD細(xì)胞株中,與si-NC組比較,si-EpCAM組細(xì)胞OD值均明顯降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。見圖 2。

    圖2 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞增殖能力比較(OD為吸光度;*P<0.05)

    2.3 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞克隆能力比較 NOZ和GBC-SD細(xì)胞株中,si-EpCAM組細(xì)胞的克隆形成數(shù)均明顯少于si-NC組,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。見圖3(插頁)、表2。

    圖3 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞克隆能力比較(EpCAM為上皮細(xì)胞黏附分子)

    表2 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞克隆形成數(shù)比較

    2.4 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞遷移能力比較 NOZ和GBC-SD細(xì)胞株中,與si-NC組比較,si-EpCAM組中細(xì)胞遷移數(shù)均明顯降低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。見圖4(插頁)、表3。

    圖4 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞遷移能力比較(EpCAM為上皮細(xì)胞黏附分子;結(jié)晶紫染色,×100)

    表3 3組NOZ和GBC-SD細(xì)胞遷移數(shù)比較

    3 討論

    膽囊癌惡性程度較高,病程進(jìn)展迅速,缺乏有效治療手段,且發(fā)病率呈現(xiàn)逐年升高的趨勢。近幾十年來關(guān)于膽囊癌的研究有了一定的進(jìn)展,但早期診斷和采取合適的治療方法仍是改善本病預(yù)后的主要途徑。然而,膽囊癌高轉(zhuǎn)移、高侵襲特性的分子機(jī)制尚未被完全闡明,并且用于膽囊癌診斷的腫瘤分子標(biāo)志物特異性較差,遠(yuǎn)不能為膽囊癌的早期診斷提供分子靶標(biāo)。

    EpCAM最早于1979年在結(jié)腸癌中發(fā)現(xiàn),是一種嗜同種非鈣離子依賴性上皮細(xì)胞黏附分子。除了在細(xì)胞間黏附中發(fā)揮作用外,相關(guān)體內(nèi)外實驗還表明,EpCAM在細(xì)胞信號傳導(dǎo),增殖及分化中起著重要作用[8]。EpCAM在上皮起源的腫瘤中有著異常的高表達(dá)水平,在結(jié)直腸癌、肝癌等多種腫瘤中作為篩選腫瘤干細(xì)胞的標(biāo)志物[9-10];也可作為在腫瘤進(jìn)展和轉(zhuǎn)移過程中治療和預(yù)后的標(biāo)志物[11-12]。EpCAM的預(yù)后價值在不同腫瘤中有所差別,在乳腺癌[13]、結(jié)直腸癌[14]、前列腺癌[15]、胰腺癌[16]等中,高表達(dá)和預(yù)后不良呈正相關(guān);而在食管癌[17]、胃癌[18]、甲狀腺癌[19]等中,高表達(dá)和預(yù)后不良呈負(fù)相關(guān)。因此,EpCAM與不同臨床結(jié)果之間的關(guān)系是復(fù)雜的,可能與腫瘤的起源或腫瘤進(jìn)展的階段相關(guān),其相關(guān)機(jī)制還需要進(jìn)一步的研究。

    Varga等[20]發(fā)現(xiàn),EpCAM高表達(dá)是膽囊癌不良預(yù)后的獨立危險因素。本研究初步探討了EpCAM在膽囊癌細(xì)胞NOZ和GBC-SD中對其增殖和轉(zhuǎn)移功能的影響,為今后進(jìn)一步的機(jī)制研究奠定基礎(chǔ)。EpCAM作為上皮細(xì)胞黏附分子,在細(xì)胞間連接和癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移中具有重要作用。本研究首先在6株膽囊癌細(xì)胞系中檢測了EpCAM的mRNA相對表達(dá)量,結(jié)果發(fā)現(xiàn),在NOZ和GBC-SD中EpCAM的相對表達(dá)量較高,可能與NOZ和GBC-SD本身具有較強(qiáng)的遷移能力相關(guān);而在SGC-996中,EpCAM幾乎沒有表達(dá),也提示可能與SGC-996較弱的遷移能力有關(guān)(關(guān)于膽囊癌細(xì)胞的遷移能力數(shù)據(jù)尚未發(fā)表)。在Transwell實驗中,敲減EpCAM的表達(dá)明顯抑制了NOZ和GBC-SD的遷移能力,證明了EpCAM的確在膽囊癌細(xì)胞的遷移中發(fā)揮了重要作用,其相關(guān)機(jī)制還需要進(jìn)一步研究,在膽囊癌中是否與腫瘤轉(zhuǎn)移有關(guān)也有待探索。此外,本研究應(yīng)用CCK-8實驗和克隆形成實驗驗證了敲減EpCAM的表達(dá)可抑制NOZ和GBCSD的增殖能力,說明EpCAM在膽囊癌細(xì)胞的增殖方面也發(fā)揮了作用。

    綜上所述,EpCAM可能通過促進(jìn)膽囊癌細(xì)胞的增殖和遷移能力從而促進(jìn)膽囊癌的發(fā)生、發(fā)展及轉(zhuǎn)移。EpCAM可考慮作為篩選腫瘤干細(xì)胞的標(biāo)志物,也可作為診斷和治療膽囊癌的分子靶點。但其調(diào)控膽囊癌細(xì)胞功能的具體機(jī)制以及在臨床中的應(yīng)用仍需進(jìn)一步探索。

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