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    苦蕎中可溶性及不可溶性膳食纖維調(diào)控 糖尿病小鼠糖脂代謝的功效

    2021-08-31 03:30:00吳偉菁
    食品科學(xué) 2021年15期
    關(guān)鍵詞:苦蕎麩皮膳食

    仇 菊,朱 宏,吳偉菁*

    (1.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部食物與營養(yǎng)發(fā)展研究所,北京 100081;2.廈門醫(yī)學(xué)院公共衛(wèi)生與醫(yī)學(xué)技術(shù)系,福建 廈門 361023)

    膳食纖維對人體的健康作用越來越受到關(guān)注。我國對正常成年人的膳食纖維每日推薦攝入量為25~35 g[1],而據(jù)統(tǒng)計(jì)我國居民的平均攝入量只有11 g[2],不到推薦量的一半。所以,在日常膳食中非常有必要補(bǔ)充膳食纖維。已有大量研究發(fā)現(xiàn),總膳食纖維的攝入與2型糖尿病的患病風(fēng)險(xiǎn)顯著相關(guān),其中谷物膳食纖維降低糖尿病患病風(fēng)險(xiǎn)的作用最為明顯,蔬菜其次,水果的膳食纖維與患病風(fēng)險(xiǎn)無明顯關(guān)聯(lián)[3-5]??梢?,谷物作為膳食纖維的重要來源在平衡膳食營養(yǎng)及預(yù)防2型糖尿病中發(fā)揮重要作用。

    由于不可溶性膳食纖維(insoluble dietary fiber,IDF)在谷物中占比較大,多數(shù)營養(yǎng)干預(yù)研究將谷物膳食纖維等同于IDF。例如,有研究將燕麥膳食纖維作為IDF,與瓜爾豆膠可溶性膳食纖維(soluble dietary fiber,SDF)進(jìn)行對比,發(fā)現(xiàn)燕麥IDF比瓜爾豆膠SDF能更有效地改善肥胖小鼠的胰島素敏感性[6]。然而,燕麥中最受關(guān)注的SDF為β-葡聚糖,β-葡聚糖在調(diào)控血糖及血脂方面的功效均已獲得廣泛的認(rèn)可[7-10]。然而,除了燕麥及大麥[11]中的β-葡聚糖作為SDF受到了較多關(guān)注,其他谷物中SDF及IDF功效尚不明確,更缺乏對谷物中SDF及IDF功效比較的研究。

    苦蕎經(jīng)證實(shí)是一種具有改善血糖、血脂代謝的功能性谷物[12]。大部分研究認(rèn)為苦蕎的功效來自類黃酮[12-13]、D-手性肌醇[14]、蛋白質(zhì)[15]等,卻忽視了苦蕎中含量較高的膳食纖維。苦蕎中膳食纖維含量(質(zhì)量分?jǐn)?shù))約為25.97%[16],遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于小麥(11~17 %)[17]、大米(3.24 %)[18]等谷物中膳食纖維的含量。目前,關(guān)于苦蕎膳食纖維的研究,主要集中在提取工藝及改性上,對其調(diào)控血糖的作用僅局限在體外抑制α-D-葡萄糖苷酶活性的作用[19]。雖然,谷物膳食纖維維持糖脂穩(wěn)態(tài)功能的研究已有較多報(bào)道,但苦蕎膳食纖維的功能活性,特別是體內(nèi)功效活性卻鮮有研究。

    因此,本實(shí)驗(yàn)從苦蕎麩皮粉中分別提取SDF及IDF,通過對比二者對糖尿病小鼠血糖、血脂、肝臟脂肪積累及盲腸中短鏈脂肪酸(short-chain fatty acids,SCFAs)的影響,探究不同膳食纖維調(diào)控糖脂代謝的功效差異及相關(guān)調(diào)控機(jī)制的異同。本研究不僅為苦蕎膳食纖維的調(diào)控糖脂代謝功效提供直接科學(xué)證據(jù),也為探究谷物SDF及IDF的作用差異提供了思路。

    1 材料與方法

    1.1 動(dòng)物、材料與試劑

    4 周齡雄性清潔級C57BL/6小鼠,購于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司,生產(chǎn)許可證號(hào):SCΧK(滬)2017-005。

    ‘西蕎二號(hào)’苦蕎麩皮粉,由國家燕麥?zhǔn)w麥產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系涼山綜合試驗(yàn)站提供。其中,麩皮質(zhì)量占全籽粒的37%。

    SCFAs標(biāo)準(zhǔn)品、蛋白酶Alcalase 2.4L(活力大于2.4 U/g)、蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品、鏈脲佐菌 美國Sigma 公司;淀粉葡萄糖苷酶(100 IU/mg)、耐高溫α-淀粉酶(20 000 U/mL) 北京百靈威試劑公司;胰島素試劑盒 武漢華美生物有限公司;葡萄糖、糖化血清蛋白(glycosylated serum protein,GSP)、總膽固醇(total cholesterol,TC)、低密度脂蛋白膽固醇(low density lipoprotein cholesterol,LDL-C)、甘油三酯(triglyceride,TG)、高密度脂蛋白(high density lipoprotein cholesterol,HDL-C)、丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶(alanine aminotransferase,ALT)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase,AST)試劑盒 南京建成生物工程研究所;其他常用試劑均購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑北京有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    7890B氣相色譜儀(配有火焰離子化檢測器) 日本 島津公司;ICS-3000離子交換色譜儀(配有脈沖安培檢測器) 美國賽默飛世爾公司;ACCU-CHEK Active血糖儀 瑞士Roche公司;Alpha-2-4-LSC真空冷凍干燥機(jī) 德國Christ公司;Infinite M200酶標(biāo)儀 奧地 利Tecan公司; Avanti JΧN-26 離心機(jī) 美國貝克曼公司; SΧL-1208馬弗爐 上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;Kieltec Analysister全自動(dòng)凱氏定氮儀 美國FOSS儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 苦蕎麩皮粉的組成分析

    苦蕎麩皮粉中膳食纖維(包括SDF和IDF)質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定采用AOAC方法991.43《膳食纖維的測定方法-酶重量法》;苦蕎麩皮粉中的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定參考GB 5009.5—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中蛋白質(zhì)的測定》;脂肪質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定參考GB 5009.6—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中脂肪的測定》;總淀粉質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定參考GB 5009.9—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中淀粉的測定》;水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定參考GB 5009.3—2016 《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中水分的測定》;灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定參考GB 5009.4—2016《食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品中灰分的測定》;抗性淀粉質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定采用AOAC方法2002.023《淀粉與植物性基質(zhì)中的抗性淀粉-酶消化法》;蘆丁質(zhì)量分?jǐn)?shù)參考文獻(xiàn)[13]測定。

    1.3.2 SDF及IDF提取制備

    本實(shí)驗(yàn)膳食纖維提取參考AOAC方法991.43,并做適當(dāng)修改??嗍w麩皮粉于80 ℃、體積分?jǐn)?shù)85%的乙醇溶液中于浸泡1 h,過濾。經(jīng)60 ℃干燥過夜后,將苦蕎麩皮粉與水混合(1∶10,m/V)均勻,加熱至95 ℃保持15 min,使得淀粉糊化。加入耐高溫α-淀粉酶(1∶500,V/V) 水解淀粉,95 ℃保持30 min,直至碘反應(yīng)顯色為陰性。冷卻至60 ℃后,將pH值調(diào)節(jié)為7.5,再加入堿性蛋白酶(1∶500,V/V),于60 ℃反應(yīng)4 h,除去蛋白質(zhì)。用鹽酸調(diào)pH值為4.5,并加入淀粉葡萄糖苷酶,于55 ℃反應(yīng)2 h,將淀粉水解產(chǎn)物進(jìn)一步水解。水解結(jié)束后,將混合液pH值調(diào)至7.0,加熱至80 ℃反應(yīng)10 min以滅酶?;旌衔镉? 500 r/min離心20 min,分別收集上清液和沉淀,獲得的沉淀即為IDF。IDF依次采用蒸餾水、無水乙醇及丙酮進(jìn)一步洗滌、離心(5 500 r/min、10 min),收集沉淀獲得洗滌后的IDF。上清液加入4 倍體積預(yù)熱至60 ℃的無水乙醇,并于室溫沉淀1 h。離心(5 500 r/min、10 min)收集沉淀,隨后采用無水乙醇和丙酮洗滌沉淀、離心(5 500 r/min、10 min),收集沉淀獲得SDF。SDF及IDF分別進(jìn)行真空冷凍干燥。

    1.3.3 膳食纖維單糖組成測定

    參考文獻(xiàn)[20],采用離子交換色譜儀,配Carbo PacTMPA20分析柱(3×150 mm,6 μm),測定膳食纖維的單糖組成。

    1.3.4 葡萄糖結(jié)合能力測定

    體外葡萄糖結(jié)合測定實(shí)驗(yàn)參考文獻(xiàn)方法[21]。將1 g的膳食纖維樣品加入10 mL不同濃度的葡萄糖溶液中,于37 ℃水浴水平振蕩6 h后,離心(4 000×g、20 min),取上清液測定葡萄糖濃度。上清液的葡萄糖濃度采用葡萄糖試劑盒進(jìn)行測定。葡萄糖結(jié)合能力根據(jù)公式(1)計(jì)算。

    1.3.5 糖尿病模型的建立及實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    標(biāo)準(zhǔn)鼠維持飼料購自于北京華阜康生物科技股份有限公司,所有小鼠適應(yīng)喂養(yǎng)1 周(溫度(23±1)℃、相對濕度(60±5)%、12 h/12 h的晝夜交替)。隨機(jī)抽取9 只小鼠作為健康組,飼喂標(biāo)準(zhǔn)鼠維持飼料。其余小鼠的處理參考文獻(xiàn)[22],建立糖尿病模型。糖尿病模型組先通過飼喂高脂飼料(如表1所示,高脂飼料中脂肪供能比為45%)5 周后,禁食16 h,腹腔注射鏈脲佐菌素 120 mg/kg后,繼續(xù)禁食2 h。注射鏈脲佐菌素后第1周及第2周分別測定空腹血糖濃度,選取連續(xù)2 周空腹血糖均超過11.1 mmol/L的小鼠納入糖尿病模型組。糖尿病模型小鼠分為4 個(gè)組(9 只/組),分別為糖尿病組、1% SDF組、1% IDF組、5% IDF組。各組飼料組成如表1所示,飼喂8 周,期間小鼠自由攝入飼料與飲用水。每周記錄小鼠的體質(zhì)量、飼料攝入量及飲水量。

    表1 飼料配方和熱量密度Table 1 Composition and energy density of experimental diets used in this study g/kg

    1.3.6 空腹血糖濃度的測定及口服葡萄糖耐受實(shí)驗(yàn)

    干預(yù)期內(nèi)空腹血糖濃度(禁食16 h)在尾部采血后通過血糖儀測定??诜咸烟悄褪軐?shí)驗(yàn)在干預(yù)期最后1 d進(jìn)行,禁食16 h后,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物灌胃2 g/kg(以體質(zhì)量計(jì))的葡萄糖溶液,尾部采血后采用葡萄糖試劑盒測定0、0.5、1.0、1.5、2.0 h的血糖水平。血糖曲線下面積(area under curve,AUC)采用公式(2)進(jìn)行計(jì)算。

    式中:BG0、BG0.5、BG1、BG1.5、BG2為灌胃葡萄糖溶液后0、0.5、1.0、1.5、2.0 h的血糖濃度/(mmol/L)。

    1.3.7 血清及肝臟生化指標(biāo)的測定

    小鼠在禁食16 h后用異氟烷麻醉后,血液樣本由眼眶采血,并于室溫凝固離心后得血清。獲取小鼠肝臟與預(yù)冷的生理鹽水按1∶9(m/V)混合并于冰上均質(zhì),獲得肝臟均質(zhì)液。血清及均質(zhì)液中生化指標(biāo)(胰島素、GSP、TG、TC、LDL-C、HDL-C、ALT、AST水平)均采用試劑盒法測定。

    1.3.8 短鏈脂肪酸的測定

    取小鼠盲腸內(nèi)容物,加入5 倍體積的硫酸酸化的超純水(pH 2.0)于4 ℃提取30 min。4 ℃離心(6 000 r/min、15 min)后,精確量取0.5 mL上清液,加入0.5 mL的乙醚,充分漩渦混勻后離心(6000 r/min、10 min),收集乙醚層后,用0.22 μm的濾膜過濾后進(jìn)行氣相色譜檢測。進(jìn)樣量為1 μL。色譜溫度程序:初始溫度100 ℃;6 ℃/min 升溫至170 ℃;20 ℃/min升溫直至230 ℃,并保持2 min。進(jìn)樣口溫度為250 ℃,檢測器溫度為280 ℃。配制SCFAs標(biāo)準(zhǔn)液(質(zhì)量濃度0.1~2 mg/mL)進(jìn)行定量分析。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    采用SPSS 24.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo) 準(zhǔn)差表示。多組之間比較采用單因素方差分析,事后比較采用Duncan分析。P<0.05表示差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 苦蕎麩皮組成及其膳食纖維單糖組成

    如表2所示,苦蕎麩皮中含有豐富的蛋白質(zhì)、抗性淀粉及膳食纖維??嗍w麩皮中總膳食纖維質(zhì)量分?jǐn)?shù)為23.54%,其中IDF的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為19.52%,約為SDF質(zhì)量分?jǐn)?shù)(4.02%)的5 倍??嗍w膳食纖維中單糖組成分析結(jié)果顯示,苦蕎SDF中單糖組成(質(zhì)量分?jǐn)?shù))分別為:53.56%葡萄糖、21.22%半乳糖、8.26%阿拉伯糖、6.47%甘露糖、5.74%木糖、4.76%鼠李糖;苦蕎IDF中的單糖組成(質(zhì)量分?jǐn)?shù))分別為:46.65%葡萄糖、21.36%阿拉伯糖、10.42%半乳糖,9.48%木糖、5.87%鼠李糖、5.18%半乳糖糖醛酸、1.04%葡萄糖醛酸。

    表2 苦蕎麩皮粉的主要成分和質(zhì)量分?jǐn)?shù)Table 2 Major composition of tartary buckwheat bran

    2.2 苦蕎SDF及IDF的葡萄糖結(jié)合能力

    在不同濃度的葡萄糖溶液中,苦蕎SDF及IDF均表現(xiàn)出葡萄糖結(jié)合能力,在各濃度梯度上,二者結(jié)合能力 無顯著差異(P>0.05)(表3)。隨著葡萄糖溶液的濃度從10 mmol/L升高至200 mmol/L,與SDF及IDF結(jié)合的葡萄糖分別為11.39~2 070.64、12.01~1 913.19 μmol/g。

    表3 不同濃度的葡萄糖溶液中苦蕎SDF及IDF的葡萄糖結(jié)合能力Table 3 Glucose binding capacities of SDF and IDF from tartary buckwheat at different concentrations of glucose

    2.3 苦蕎SDF及IDF對糖尿病小鼠血糖、血清GSP水平的影響

    糖尿病組小鼠的空腹血糖水平及血清中GSP濃度均顯著高于健康組小鼠(P<0.05),而經(jīng)過8 周干預(yù)后,苦蕎SDF及IDF干預(yù)顯著降低了糖尿病小鼠的空腹血糖水平(P<0.05)(表4)。但1% SDF與1% IDF及5% IDF組間的空腹血糖水平無顯著差異(P>0.05)。GSP濃度可反映1~2 周內(nèi)機(jī)體的平均血糖的水平,不受臨時(shí)血糖濃度波動(dòng)的影響,可反映較長時(shí)間的血糖控制水平。其檢測結(jié)果發(fā)現(xiàn),SDF及IDF干預(yù)均顯著降低了糖尿病小鼠的GSP濃度(P<0.05),而且5% IDF組的GSP水平顯著低于1% SDF及1% IDF組(P<0.05)。雖然,SDF及IDF在干預(yù)期內(nèi)降低空腹血糖的作用無顯著差異(P>0.05),但5% IDF對GSP濃度的控制效果則更明顯。

    表4 膳食干預(yù)后糖尿病小鼠空腹血糖及GSP濃度的變化Table 4 Changes in fasting blood glucose and glycosylated serum protein (GSP) levels in diabetic mice during dietary intervention

    如圖1A所示,口服葡萄糖耐量實(shí)驗(yàn)中,與糖尿病組相比,1% SDF及5% IDF在0~2 h內(nèi)能夠降低血糖水平,而1% IDF對血糖的控制效果不明顯,與糖尿病組無顯著性差異(0.5 h及2 h,P>0.05)。如圖1B所示,經(jīng)過SDF及IDF干預(yù)后,AUC顯著低于糖尿病組(P<0.05),但不同劑量組間無顯著差異。如圖1C所示,經(jīng)過1% SDF及5% IDF干預(yù)后,糖尿病小鼠的血清胰島素水平顯著上升,而1% IDF對胰島素水平無顯著改善作用。上述結(jié)果表明,1% IDF控制血糖上升的作用沒有1% SDF強(qiáng),但當(dāng)IDF劑量達(dá)到5%時(shí),其控制餐后血糖上升的作用與1% SDF無明顯差別。

    圖1 膳食纖維對糖尿病小鼠血糖代謝的影響Fig.1 Effect of dietary fiber on glucose metabolism in diabetic mice

    2.4 苦蕎SDF及IDF對糖尿病小鼠血脂代謝的影響

    如圖2所示,與糖尿病組相比,苦蕎SDF及IDF均能夠顯著降低糖尿病小鼠的血清TC及LDL-C水平 (P<0.05),且1% SDF、1% IDF對控制TC和LDL-C水平的效果無顯著差異(P>0.05),但5% IDF比1% SDF及1% IDF更顯著地降低了TC和LDL-C水平 (P<0.05)。SDF及IDF對于TG及HDL-C水平無顯著影響(P>0.05)。上述結(jié)果表明,在降低血清TC及LDL-C水平上,1% IDF與1%的SDF效果相當(dāng),但5% IDF效果更強(qiáng)。

    圖2 膳食纖維對糖尿病小鼠血脂代謝的影響Fig.2 Effect of dietary fiber on serum lipid profile of diabetic mice

    2.5 苦蕎SDF及IDF對糖尿病小鼠肝臟脂質(zhì)代謝及肝功能的影響

    如圖3所示,與糖尿病組相比,1% SDF能夠顯著降低肝臟TC、TG水平(P<0.05),而1% IDF無顯著性降低TC及TG水平的作用(P>0.05);SDF及IDF均能夠顯著降低血清ALT水平(P<0.05),1% IDF及5% IDF對血清ALT水平影響無顯著差異(P>0.05)。1% SDF降低血清ALT水平的作用顯著高于1% IDF(P<0.05),而與5% IDF無顯著差異(P>0.05)。SDF及IDF均對血清中AST活力無顯著影響(P>0.05)(圖3D)。上述結(jié)果表明,1% IDF對肝臟脂質(zhì)無明顯改善作用,5% IDF降低肝臟TC、ALT水平的作用與1% SDF效果相近,但在降低肝臟TG水平方面,1% SDF效果更強(qiáng)。

    圖3 膳食纖維對糖尿病小鼠肝臟脂肪組成及肝功能的影響Fig.3 Effect of dietary fiber on hepatic lipid profile and function parameters of diabetic mice

    2.6 苦蕎SDF及IDF對糖尿病小鼠盲腸中SCFAs質(zhì)量濃度的影響

    如圖4所示,苦蕎SDF及IDF干預(yù)能夠顯著提高糖尿病小鼠盲腸中的乙酸質(zhì)量濃度(P<0.05)。1% SDF及5% IDF均能夠顯著提高糖尿病小鼠盲腸中的丙酸及丁酸質(zhì)量濃度(P<0.05),但1% IDF對提高糖尿病小鼠盲腸中丙酸及丁酸質(zhì)量濃度無影響。由此可見,IDF提高盲腸中SCFAs水平的效果與劑量緊密相關(guān),1% SDF與5% IDF對盲腸中SCFAs質(zhì)量濃度的影響相同。

    圖4 膳食纖維對糖尿病小鼠盲腸中SCFAs質(zhì)量濃度的影響Fig.4 Effect of dietary fiber on caecal SCFAs in diabetic mice

    3 討 論

    多數(shù)研究將IDF作為谷物膳食纖維的代表來解釋谷物膳食纖維降低2型糖尿病患病風(fēng)險(xiǎn)的作用[3-4],卻忽視了谷物中并存的SDF與IDF的作用貢獻(xiàn)差異。有研究認(rèn)為IDF與SDF不同,SDF通過發(fā)酵促進(jìn)腸道有益菌生長,并產(chǎn)生SCFAs改善腸道健康從而發(fā)揮調(diào)控糖脂代謝等作用[23], 而IDF更多是通過促進(jìn)腸道蠕動(dòng)來發(fā)揮作用[24]。食物中的SDF及IDF作用也逐步受到關(guān)注,然而,谷物中IDF的含量遠(yuǎn)大于SDF,因此,比較其二者功效時(shí),需考慮其在谷物中的原始比例。本研究測定苦蕎麩皮中IDF含量約為SDF的5 倍。因此,在比較SDF及IDF在同等劑量下(1%)功效外,按照苦蕎原料中的比例,比較1% SDF及5% IDF干預(yù)對糖尿病小鼠糖脂代謝的影響,旨在研究在苦蕎食品真實(shí)體系下,SDF及IDF作用貢獻(xiàn)。

    本研究的體內(nèi)、體外實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),苦蕎SDF及IDF具有一定的調(diào)節(jié)血糖的作用。體外葡萄糖結(jié)合能力結(jié)果未發(fā)現(xiàn)二者在相同濃度下的差異,但根據(jù)以往研究來看,不同來源IDF的葡萄糖結(jié)合能力各異,大米IDF在5~200 mmol/L葡萄糖溶液中的結(jié)合能力為 10~1 040 μmol/g[25];燕麥IDF在100 mmol/L葡萄糖溶液中的結(jié)合能力為430 μmol/g[26],相比之下,苦蕎SDF及IDF的葡萄糖結(jié)合能力較高。膳食纖維可能通過結(jié)合葡萄糖延緩餐后血糖升高[21]。進(jìn)一步的血糖研究結(jié)果也發(fā)現(xiàn),苦蕎SDF及IDF在糖尿病小鼠體內(nèi)降低空腹血糖的作用無顯著差異,但對GSP水平的控制效果則是5% IDF更顯著。這說明,IDF對血糖的調(diào)控存在劑量依賴性。隨后的口服葡萄糖耐受實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)了同樣的結(jié)果,1% IDF控制血糖上升的作用比1% SDF弱。這一發(fā)現(xiàn)與以往對比SDF及IDF的研究結(jié)果一致:在同等劑量下,脫脂小茴香SDF比IDF具有更顯著降低血糖作用[23]。另外研究還發(fā)現(xiàn),5% IDF的調(diào)控血糖的效果與1% SDF相同,說明雖然同等劑量下IDF作用較弱,但是由于IDF在谷物中占比大,它能與SDF一樣調(diào)控血糖代謝。在接下來的研究中發(fā)現(xiàn),苦蕎IDF提高盲腸中SCFAs水平的效果也與劑量緊密相關(guān),1% SDF與5% IDF對盲腸中SCFAs的含量具有相同作用,而1% IDF對丙酸和丁酸的產(chǎn)生無促進(jìn)作用。膳食纖維通過發(fā)酵促進(jìn)腸道菌群生長并提高SCFAs的作用已有較多報(bào)道。SDF可顯著提高盲腸中SCFAs含量,例如,低聚果糖、β-葡聚糖、蘋果果膠[27]、瓜爾膠[6]、脫脂小茴香的SDF[23]等,但纖維素?zé)o相關(guān)作用[27]。研究表明,膳食纖維發(fā)酵后產(chǎn)生SCFAs可能參與血糖調(diào)控,這與改善胰島素抵抗、改善炎癥、促進(jìn)β胰島細(xì)胞增殖及抑制凋亡、增加GLP-1分泌等機(jī)制有關(guān)[28-30]。

    在調(diào)控脂質(zhì)代謝方面,苦蕎膳食纖維也呈現(xiàn)出劑量依賴效應(yīng)。5% IDF能夠比1% IDF及1% SDF更顯著降低血清TC及LDL-C水平,且5% IDF降低肝臟TC、ALT水平的作用與1% SDF效果相同。已有研究報(bào)道,SDF(7%瓜爾膠[31]及2%、4%大麥β-葡聚糖[32])對模型鼠的血清TC、TG水平無影響。但大麥β-葡聚糖可以有效降低高脂誘導(dǎo)肥胖小鼠的肝臟TG及TC水平。膳食中添加甲基纖維素及車前草殼纖維等IDF能夠降低高脂誘導(dǎo)肥胖大鼠的血清TG及TC,而纖維素?zé)o該作用[33]。另外,10%燕麥IDF能夠比瓜爾膠(一種SDF)更顯著降低高脂誘導(dǎo)肥胖小鼠肝臟的TG積累,其機(jī)理與肝臟中脂肪代謝相關(guān)酶的活力增加有關(guān)[6]。這些研究說明不同來源的SDF及IDF調(diào)控脂質(zhì)代謝的效果存在差異。谷物膳食纖維能夠降低血脂及肝臟脂肪積累已有科學(xué)證據(jù),其作用機(jī)制可能是通過調(diào)控脂肪代謝相關(guān)基因FAS[32-33]及膽固醇相關(guān)基因CYP7A1[32],促使脂肪分解轉(zhuǎn)化生成SCFAs。由此可見,苦蕎SDF和IDF均能夠通過促進(jìn)SCFAs生成,改善糖尿病小鼠的脂質(zhì)代謝。

    綜上所述,SDF及IDF干預(yù)均能夠降低糖尿病小鼠的空腹血糖,相同劑量下SDF能夠比IDF更有效的發(fā)揮降血糖作用,但當(dāng)IDF劑量為SDF的5 倍時(shí),即苦蕎麩皮中的原始比例,IDF降低血清TC及LDL-C水平的作用比SDF更佳。1% SDF及5%的IDF具有同樣的提高盲腸中SCFAs水平的效果。本研究揭示了苦蕎SDF及IDF在維持血糖及血脂穩(wěn)態(tài)作用的量效關(guān)系上的差異,以及通過促進(jìn)胰島素分泌改善糖耐量、通過促進(jìn)SCFAs排出改善脂質(zhì)代謝等相關(guān)作用機(jī)制方面的異同,為充分理解谷物中SDF和IDF的糖脂調(diào)控功效提供了科學(xué)證據(jù)。

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