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      枳實(shí)通降顆粒通過干預(yù)MK2 磷酸化抑制炎癥反應(yīng)防治術(shù)后炎性腸梗阻相關(guān)性肺損傷

      2021-08-23 03:31:12黎李王華帥何永恒
      中成藥 2021年8期
      關(guān)鍵詞:枳實(shí)肺泡肺部

      莫 黎李 倩 王華帥 李 瑩 黃 麗 何永恒

      (1.湖南中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院,湖南 長(zhǎng)沙410005; 2.湖南中醫(yī)藥大學(xué),湖南 長(zhǎng)沙410208; 3.湖南省中醫(yī)藥研究院附屬醫(yī)院,湖南 長(zhǎng)沙410006)

      肺部感染是腹部手術(shù)后的常見并發(fā)癥之一[1],直接影響患者的術(shù)后康復(fù),甚至危及患者的生命安全[2]。術(shù)后炎性腸梗阻(postoperative ileus,POI)是腹部尤其是腸道手術(shù)后無法避免的一個(gè)特殊時(shí)期或并發(fā)癥,其持續(xù)時(shí)間的長(zhǎng)短與術(shù)后患者肺部感染的發(fā)生具有一定的相關(guān)性[3?4]。手術(shù)創(chuàng)傷等導(dǎo)致的炎癥反應(yīng)不但是POI 的主要原因,其激發(fā)的瀑布式炎癥反應(yīng)也是造成肺臟損傷的重要原因[5]。因此,有效地防治POI,促進(jìn)術(shù)后胃腸功能的早期恢復(fù)對(duì)預(yù)防術(shù)后肺部感染的發(fā)生,保障術(shù)后患者的順利康復(fù)具有重要的臨床意義[6]。

      在前期的研究中證實(shí),枳實(shí)通降顆粒不但能顯著地促進(jìn)結(jié)直腸腫瘤術(shù)后胃腸功能的恢復(fù),有效地預(yù)防術(shù)后早期炎性腸梗阻的發(fā)生,并且對(duì)肺部感染的發(fā)生也有一定的防治作用[7]。為進(jìn)一步論證及探明其可能的作用機(jī)制,本實(shí)驗(yàn)以POI 模型大鼠為研究對(duì)象,觀察枳實(shí)通降顆粒對(duì)大鼠肺組織的MK2 磷酸化的影響,探討其保護(hù)POI 相關(guān)性肺損傷的作用及可能機(jī)制,以期為該藥的進(jìn)一步開發(fā)和應(yīng)用提供參考。

      1 材料

      1.1 動(dòng)物 鼠齡6 周的SPF 級(jí)SD 大鼠84 只,雌雄各半,體質(zhì)量180~220 g,由湖南斯萊克景達(dá)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司提供,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào)SCXK(湘)2016?0002。飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心實(shí)驗(yàn)室,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用許可證號(hào)SYXK(湘)2019?0009,適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后開始實(shí)驗(yàn)。本實(shí)驗(yàn)已經(jīng)湖南中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物理論委員會(huì)批準(zhǔn)(LL2019092005)。

      1.2 藥物 專利方枳實(shí)通降顆粒[8]由枳實(shí)10 g、烏藥10 g、大腹皮10 g、廣木香10 g、黃柏10 g、澤瀉12 g、三七6 g、西洋參6 g、川牛膝12 g、甘草6 g組成。中藥飲片購自湖南中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院門診中藥房(湖南新匯制藥廠生產(chǎn)),并由周平蘭教授鑒定合格,按照傳統(tǒng)法水煎濃縮成生藥含量為3.4 g/mL 的藥液,置于冰箱冷藏備用。琥珀酸普蘆卡必利片(意大利Janssen Cilag S.p.A.公司生產(chǎn),2 mg×7 片/盒,批號(hào)JGL6E00),將其制備成含藥量為0.036 mg/mL 的混懸液。

      1.3 試劑 IL?6、IL?8、TNF?α 試劑盒(上海晶天生 物,批號(hào)E20200103010、E20200103011、E20200103012);彩色預(yù)染蛋白標(biāo)志物(美國(guó)Thermo 公司,貨號(hào)26616);BCA 蛋白濃度測(cè)定試劑盒、化學(xué)發(fā)光檢測(cè)試劑盒(北京康為世紀(jì)生物科技有限公司,貨號(hào)CW0014S、CW0049);羊抗鼠二抗、羊抗兔二抗(美國(guó)PROTEINTECH 公司,貨號(hào)SA00001?1、SA00001?2);髓過氧化物酶(MPO)試劑盒(南京建成海浩生物科技有限公司,貨號(hào)A044?1?1)。引物[生工生物工程(上海)股份有限公司,221020117];逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR 試劑盒(美 國(guó)Promega 公 司,A3500、A6001);Trizol(美國(guó)Invitrogen 公司,15596018);Protein G Magnetic Beads(美國(guó)Cell Signaling 公司,9006S);蛋白質(zhì)標(biāo)志 物(美國(guó) Thermo 公 司,26634);HE 染液(珠海貝索生物技術(shù)有限公司)。

      1.4 儀器 紫外分光光度計(jì)(上?,F(xiàn)科儀器有限公司);酶標(biāo)儀(芬蘭雷勃公司);全自動(dòng)化學(xué)發(fā)光分析儀(上海天能生命科學(xué)有限公司);電泳儀、Real?time PCR 儀(美國(guó)BIO?RAD 公司);灰度分析軟件(美國(guó)Alpha Innotech 公司);液基薄層細(xì)胞制片儀(武漢宏翔惠康生物制品有限公司)。

      2 方法

      2.1 造模與分組 84 只SD 大鼠按照隨機(jī)數(shù)字表法隨機(jī)分為7組:空白組,假手術(shù)組,模型組,枳實(shí)通降顆粒低、中、高劑量組和普蘆卡必利組,每組各12 只,雌雄各半,分別于術(shù)后24 h 取材。所有大鼠于術(shù)前禁食24 h,禁水12 h,術(shù)后禁食不禁水。根據(jù)前期造模實(shí)驗(yàn)選擇最優(yōu)的造模方法為3%戊巴比妥鈉(3 mL/kg 體質(zhì)量腹腔注射麻醉大鼠)麻醉大鼠并固定,常規(guī)消毒鋪無菌單,逐層開腹,找到盲腸,沿盲腸根部結(jié)扎并切除結(jié)扎部分盲腸,用兩根鹽水棉簽自空腸起始部開始夾持并輕輕向遠(yuǎn)心端摩擦小腸壁,至回盲部為止,只處理1 次,然后回納小腸,分兩層關(guān)腹,整個(gè)手術(shù)過程約15 min左右;假手術(shù)組僅分層打開腹腔,然后用鹽水紗布覆蓋,15 min 后分兩層關(guān)腹。

      2.2 給藥 造模術(shù)后6 h,所有大鼠均按5 mL/kg給藥量標(biāo)準(zhǔn)一次性灌胃給藥。根據(jù)大鼠體表面積換算確定給藥劑量,枳實(shí)通降顆粒低、中、高劑量組分別按照4.2、8.3、16.6 g/kg 的標(biāo)準(zhǔn)給予中藥濃縮藥液,普蘆卡必利組按照0.18 mg/kg 給藥[9],空白組、假手術(shù)組、模型組則給予等量生理鹽水。

      2.3 標(biāo)本采集及指標(biāo)檢測(cè) 術(shù)后24 h 再次麻醉后心尖取血處死大鼠,打開腹腔及胸腔采集標(biāo)本后進(jìn)行分別檢測(cè)。

      2.3.1 HE 染色觀察肺組織病理形態(tài)學(xué)改變 取右肺下葉,固定、包埋、切片,蘇木精伊紅(HE)染色,光鏡下觀察肺組織病理形態(tài)學(xué)改變情況,并采用美國(guó)胸科協(xié)會(huì)肺損傷評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)[5]進(jìn)行評(píng)分,主要指標(biāo)為肺泡上皮的損傷程度、炎癥細(xì)胞的浸潤(rùn)、肺泡隔的厚度等,總分?jǐn)?shù)為0~5分。見表1。

      表1 肺損傷病理學(xué)評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)Tab.1 Pathology criteria for scoring of lung injury

      2.3.2 支氣管肺泡灌洗液(BALF)肺泡中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞及淋巴細(xì)胞數(shù)量計(jì)算 將大鼠胸腔和頸部打開,顯露氣管及雙側(cè)主支氣管,夾閉右主支氣管及近咽喉處遠(yuǎn)端氣管,將右肺標(biāo)本取下。于主支氣管夾閉處近端穿入的5#頭皮針管,以5 mL 無熱原生理鹽水灌入左肺,保留9 s 后回收,再次注入并重復(fù)3 次,匯集3 次的肺泡灌洗液,立即以4 500 r/min 離心10 min,棄上清,用Hank’s 液洗細(xì)胞1 次,再離心,棄去上清液,HE 染色后,針對(duì)每份標(biāo)本,在光學(xué)顯微鏡下取10個(gè)高倍鏡視野統(tǒng)計(jì)細(xì)胞總數(shù),并進(jìn)行細(xì)胞分類(吞噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞、淋巴細(xì)胞)計(jì)數(shù)。

      2.3.3 ELISA 法檢測(cè)肺組織IL?6、IL?8、TNF?α 的水平及MPO 活性 取出右中上肺葉標(biāo)本,-80 ℃冰箱保存,粉碎、勻漿、離心后取上清液,檢測(cè)肺組織中IL?6、IL?8、TNF?α 水平;參照過氧化物酶(MPO)試盒說明書操作檢測(cè)MPO 活性,MPO 活力(U/g)=(測(cè)定OD值-對(duì)照OD值)/(11.3×參與反應(yīng)血清量)。

      2.3.4 Western blot、RT?PCR 檢測(cè)肺組織MK2、p?MK2 蛋白及mRNA 表達(dá) 取各組大鼠右下肺葉標(biāo)本,按照以下步驟進(jìn)行檢測(cè):提取組織總蛋白,BCA 法測(cè)蛋白濃度,SDS?PAGE 電泳,轉(zhuǎn)膜,依次加入一抗及二抗進(jìn)行免疫反應(yīng),化學(xué)發(fā)光并用顯影,定影試劑進(jìn)行顯影和定影,PhotoShop 整理去色,Alpha 軟件處理系統(tǒng)分析目標(biāo)帶的光密度值。觀察肺組織中MK2 及p?MK2 蛋白表達(dá)情況。按照PCR 劑盒說明書操作,提取所得肺組織中總的RNA,進(jìn)行擴(kuò)增后檢測(cè)并計(jì)算MK2、p?MK2 mRNA的表達(dá)情況。見表2。

      表2 PCR 引物序列Tab.2 PCR primer sequences

      2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 通過SPSS 21.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料以()表示,如符合正態(tài)分布和方差齊性,則采用單因素方差分析進(jìn)行多組比較,組間比較采用LSD 法分析;如不符合正態(tài)分布及方差齊性,則采用Kruskal?Wallis H 檢驗(yàn)。以P<0.05 為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      3 結(jié)果

      3.1 肺組織病理形態(tài)學(xué)及評(píng)分 模型組肺組織結(jié)構(gòu)破壞明顯,肺間質(zhì)和肺泡腔中有明顯的中性粒細(xì)胞浸潤(rùn),肺間隔明顯增寬,偶見少量的蛋白質(zhì)殘留物組,枳實(shí)通降顆粒中、高劑量組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)破壞減輕,肺間隔無明顯增寬,肺泡腔和肺間質(zhì)內(nèi)中性粒細(xì)胞滲出減少。模型組與空白組及假手術(shù)組比較,評(píng)分升高(P<0.01);藥物干預(yù)各組與模型組比較,各干預(yù)組病理結(jié)構(gòu)改變相對(duì)較輕,以枳實(shí)通降顆粒高、中劑量為明顯(P<0.05,P<0.01),其次為低劑量組及普蘆卡必利組,但無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見圖1、表3。

      表3 各組大鼠肺組織病理學(xué)評(píng)分比較(, n=12)Tab.3 Comparison of pulmonary histopathological scores of each group(, n=12)

      表3 各組大鼠肺組織病理學(xué)評(píng)分比較(, n=12)Tab.3 Comparison of pulmonary histopathological scores of each group(, n=12)

      注:與空白組及假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.05,##P<0.01;與枳實(shí)通降顆粒低劑量組比較,☆☆P<0.01;與普蘆卡必利組比較,△△P<0.01。

      圖1 枳實(shí)通降顆粒對(duì)大鼠肺組織病理形態(tài)學(xué)改變的影響(HE, ×100)Fig.1 Effects of Zhishi Tongjiang Granules on pulmonary pathomorphological changes of rats(HE, ×100)

      3.2 枳實(shí)通降顆粒對(duì)模型大鼠肺組織IL?6、IL?8、TNF?α 水平的影響 與假手術(shù)組及空白組比較,模型組肺組織中炎性因子水平偏高(P<0.01);與模型組比較,各藥物干預(yù)組炎性因子水平偏低(P<0.01),以枳實(shí)通降顆粒中、高劑量效果最明顯,優(yōu)于其他藥物干預(yù)組(P<0.05,P<0.01),見表4。

      表4 各組大鼠肺組織中炎癥因子IL?6、IL?8、TNF?α 水平比較(, n=12)Tab.4 Comparison of pulmonary inflammatory factors IL?6, IL?8 and TNF?α in rats of each group(, n=12)

      表4 各組大鼠肺組織中炎癥因子IL?6、IL?8、TNF?α 水平比較(, n=12)Tab.4 Comparison of pulmonary inflammatory factors IL?6, IL?8 and TNF?α in rats of each group(, n=12)

      注:與空白組及假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與枳實(shí)通降顆粒低劑量組比較,☆☆P<0.01;與普蘆卡必利組比較,△P<0.05,△△P<0.01。

      3.3 枳實(shí)通降顆粒對(duì)模型大鼠肺泡灌洗液中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、淋巴細(xì)胞計(jì)數(shù)的影響 與假手術(shù)組及空白組比較,模型組肺泡灌洗液中炎性細(xì)胞計(jì)數(shù)偏高(P<0.01);與模型組比較,各藥物干預(yù)組炎性細(xì)胞計(jì)數(shù)偏低(P<0.01),以枳實(shí)通降顆粒中、高劑量效果最明顯,優(yōu)于其他藥物干預(yù)組(P<0.05,P<0.01),見表5。

      表5 各組大鼠肺泡灌洗液中炎性細(xì)胞計(jì)數(shù)比較(, n=12)Tab.5 Comparison of inflammatory cell counts in BALF of rats in each group(, n=12)

      表5 各組大鼠肺泡灌洗液中炎性細(xì)胞計(jì)數(shù)比較(, n=12)Tab.5 Comparison of inflammatory cell counts in BALF of rats in each group(, n=12)

      注:與空白組及假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與枳實(shí)通降顆粒低劑量組比較,☆☆P<0.01;與普蘆卡必利組比較,△P<0.05,△△P<0.01。

      3.4 枳實(shí)通降顆粒對(duì)各組大鼠肺組織中MK2、p?MK2 蛋白及mRNA 表達(dá)情況及MPO 活性的影響 與空白組及假手術(shù)組比較,模型組小腸組織p?MK2 蛋白及mRNA 的表達(dá)、MPO 活性偏高(P<0.01);各藥物干預(yù)組p?MK2 蛋白的表達(dá)水平、MPO 活性低于模型組(P<0.01),以枳實(shí)通降顆粒中、高劑量組最明顯,與普蘆卡必利組及低劑量組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。各組MK2 蛋白及mRNA 的表達(dá)無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。見圖2、表6~7。

      表6 各組大鼠肺組織中MK2 及p?MK2 蛋白表達(dá)情況及MPO 活性情況比較(, n=12)Tab.6 Comparison of pulmonary MK2 and p?MK2 protein expression and MPO activity of rats in each group(, n=12)

      表6 各組大鼠肺組織中MK2 及p?MK2 蛋白表達(dá)情況及MPO 活性情況比較(, n=12)Tab.6 Comparison of pulmonary MK2 and p?MK2 protein expression and MPO activity of rats in each group(, n=12)

      注:與空白組及假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與枳實(shí)通降顆粒低劑量組比較,☆☆P<0.01;與普蘆卡必利組比較,△△P<0.01。

      圖2 枳實(shí)通降顆粒對(duì)各組大鼠肺組織中MK2、p?MK2蛋白表達(dá)的影響Fig.2 Effects of Zhishi Tongjiang Granules on the expression of pulmonary MK2 and p?Mk2 protein of rats in each group

      4 討論

      表7 各組大鼠肺組織中MK2 及p?MK2 mRNA 表達(dá)情況比較(, n=12)Tab.7 Comparison of pulmonary MK2 and p?MK2 mRNA expression of rats in each group(, n=12)

      表7 各組大鼠肺組織中MK2 及p?MK2 mRNA 表達(dá)情況比較(, n=12)Tab.7 Comparison of pulmonary MK2 and p?MK2 mRNA expression of rats in each group(, n=12)

      注:與空白組及假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01;與枳實(shí)通降顆粒低劑量組比較,☆☆P<0.01;與普蘆卡必利組比較,△△P<0.01。

      《靈樞·本輸》曰:“肺合大腸,大腸者,傳導(dǎo)之府”,五臟之肺與六腑之大腸互為表里,關(guān)系密切,是中醫(yī)藏象學(xué)說的主要理論之一。肺與大腸不但在解剖上緊密聯(lián)系,在生理和病理上也很容易相互影響。如《靈樞·四時(shí)氣》有云,“腹中常鳴,氣上沖胸,喘不能久立,邪在大腸?!倍咴谏砩舷嗷ヒ来?,病理上相互傳變,治療上相互為用?!饵S帝內(nèi)經(jīng)靈樞集注》 云,“大腸為肺之腑而主大便,……故大腸之病,亦能上逆而反遺于肺。”臨床上當(dāng)大腸有病時(shí),往往會(huì)影響到肺,導(dǎo)致肺臟出現(xiàn)相應(yīng)的病變,而腸道手術(shù)自然也會(huì)影響到肺,這也從中醫(yī)理論上闡明了臨床結(jié)直腸腫瘤手術(shù)后容易并發(fā)肺部感染的機(jī)理[10]。

      研究證實(shí)[11?12],肺與腸道關(guān)系密切,不但在組胚生理上具有共源性,病理生理上也相互影響。二者的黏膜上皮細(xì)胞均來自胚胎時(shí)期的內(nèi)胚層,且黏膜免疫因子具有同步性,通過淋巴系統(tǒng)歸巢等途徑相互聯(lián)系,共同發(fā)揮局部特異性免疫功能,是人體的黏膜免疫系統(tǒng)的主要構(gòu)成部分。腸道有病,腸源性有害因素可經(jīng)腸道和全身循環(huán)淋巴管、血管循環(huán)系統(tǒng)到達(dá)肺部,導(dǎo)致肺部炎癥反應(yīng);同時(shí),腸道功能的障礙,也會(huì)影響機(jī)體營(yíng)養(yǎng)的攝入,降低機(jī)體免疫力,容易造成術(shù)后肺部感染的易發(fā)。肺與大腸之間相互影響作用,形成了肺?腸軸聯(lián)動(dòng)學(xué)說的主要解剖和病理生理學(xué)基礎(chǔ),這也是結(jié)直腸腫瘤手術(shù)后肺部感染易發(fā)性的病理生理學(xué)基礎(chǔ)。而肺泡液中的一些炎癥因子也與肺部感染的發(fā)生密切相關(guān),如檢測(cè)肺泡灌洗液中IL?6 水平及白細(xì)胞分類計(jì)數(shù)對(duì)早期肺炎的臨床診斷就具有重要臨床意義,其敏感性要優(yōu)于血液降鈣素原檢測(cè)[13]。因此,抑制手術(shù)造成的炎癥反應(yīng),促進(jìn)胃腸功能恢復(fù)對(duì)防治腹部大手術(shù)后肺部感染具有重要意義。

      手術(shù)操作誘發(fā)的炎癥反應(yīng)在術(shù)后24 h 達(dá)到最高峰,48 h 后逐步降低,本實(shí)驗(yàn)也證實(shí)術(shù)后24 h肺組織中的炎癥因子水平最高。引起POI 相關(guān)性炎癥反應(yīng)的機(jī)制復(fù)雜,涉及多個(gè)信號(hào)傳導(dǎo)通路的共同作用[14]。P38 信號(hào)通路是炎癥反應(yīng)中最重要的一條通路,其中關(guān)鍵性物質(zhì)MK2 激酶,參與并調(diào)控了炎癥反應(yīng)的發(fā)生、發(fā)展過程。MK2 通過磷酸化而得以激活,介導(dǎo)炎癥反應(yīng)中細(xì)胞因子的產(chǎn)生和細(xì)胞遷移,調(diào)節(jié)促炎因子的釋放,產(chǎn)生炎癥反應(yīng),進(jìn)而介導(dǎo)POI 及其相關(guān)性肺損傷的重要途徑[15?16]。從實(shí)驗(yàn)中可得知,枳實(shí)通降顆粒能有效的抑制MK2 的磷酸化,具有較強(qiáng)的抗炎作用,并且與用藥劑量存在正相關(guān)。這可能正是枳實(shí)通降顆粒防治POI,進(jìn)而促進(jìn)術(shù)后胃腸功能的恢復(fù)和保護(hù)肺組織的作用機(jī)制所在。該機(jī)制的闡明,將為枳實(shí)通降顆粒的進(jìn)一步的深入研究開發(fā)奠定了基礎(chǔ),也為中藥復(fù)方在該領(lǐng)域的應(yīng)用研究拓展了思路。然而,中藥復(fù)方的有效成分復(fù)雜,作用靶點(diǎn)多,枳實(shí)通降顆粒是否其還能通過其他通路產(chǎn)生作用,以及對(duì)肺?腸軸的影響作用機(jī)制尚有待進(jìn)一步研究。

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