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    ST7L通過調控WNT/β-catenin通路抑制非小細胞肺癌惡性行為①

    2021-08-21 04:36:28孫乃輝張崇光天津市寧河區(qū)醫(yī)院普外科天津301500
    中國免疫學雜志 2021年11期
    關鍵詞:試劑盒肺癌通路

    孫乃輝 張 亮 袁 媛 張崇光(天津市寧河區(qū)醫(yī)院普外科,天津301500)

    肺癌是全球癌癥相關死亡的主要因素之一,是男性中第1個最常見的惡性腫瘤,也是女性中第4大最常見癌癥[1]。在全球范圍內,肺癌的新發(fā)病例為182.5萬例,占新發(fā)癌癥病例總數的12.9%;肺癌癌癥的死亡人數為1.59萬人,占癌癥總死亡人數的19.4%[2]。在中國,每年約有73.33萬新發(fā)肺癌病例及61.22萬人因肺癌死亡[3]。其中,非小細胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)是肺癌的主要類型,占所有肺癌病例的85%,5年生存率非常低[4]。盡管已經開發(fā)了各種治療技術,但由于目前已知的NSCLC特異性生物標記物的種類較少,可用于臨床診斷的指標種類稀缺,可供作為抗原依賴性的免疫療法的靶標數量也較少,導致在現有治療標準體系下治愈率低[5]。因此,肺癌死亡率的成功降低需全面了解NSCLC的生物學過程和一些新的治療策略。

    腫瘤抑癌基因7L(tumor suppressor gene 7L,ST7L),也稱為ST7R,STLR和FAM4B,位于染色體7q31區(qū)域,與同區(qū)域中發(fā)現的腫瘤抑制基因ST7為同源序列,與WNT2B基因在人類染色體1p13區(qū)以尾對尾的方式聚集。ST7L在多種癌癥中表達下調,包括胃癌、神經膠質瘤、卵巢癌、肝細胞癌和甲狀腺癌[6-10]。然而,ST7L在NSCLC中的重要性及其潛在機制尚未闡明。

    1 材料與方法

    1.1 材料 選取2016年11月至2017年12月天津市寧河區(qū)醫(yī)院病理科收治的25對NSCLC患者的腫瘤組織及其癌旁組織作為實驗標本,標本采集經本院倫理委員會討論通過。人NSCLC細胞系A549、H1299、H358、PC-9購自中國醫(yī)學科學院上海細胞庫;肺上皮永生化細胞系BEAS-2B購自天津ATCC分理處;ST7L的cDNA購自天津賽爾生物科技有限公司;TRIzol試劑購自Sigma公司;SYBR Green Master Mix RT-qPCR試劑盒購自南京康為試劑公司;RIPA裂解液、BCA試劑盒購自碧云天公司。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng) 將細胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清、100 μg∕ml鏈 霉 素、100 U∕ml青 霉 素 的RPMI1640培養(yǎng)基(DMED培養(yǎng)液亦可)。將上述細胞置于含CO2培養(yǎng)箱中37℃恒溫培養(yǎng),培養(yǎng)箱中CO2濃度設定為5%,采用0.025%的胰蛋白酶,每隔2~3 d對細胞進行消化、傳代培養(yǎng)。

    1.2.2 質粒構建 構建過表達ST7L的質粒。首先采用PCR法制備需要插入的外源片段,PCR實驗的條件為:95℃預變性3 min,(95℃變性30 s、58℃退火40 s、72℃延伸2 min),共進行33個循環(huán),72℃延伸12 min。瓊脂糖凝膠實驗回收的PCR產物大小約為1 700 bp,連接到pcDNA3載體上,獲得名稱為pcDNA3∕ST7L的過表達質粒。

    1.2.3 RT-qPCR實驗TRIzol法提取NSCLC組織和肺癌細胞中的總RNA,并反轉錄為cDNA,RT-qPCR試劑盒檢測。實驗步驟如下94℃30 s、58℃30 s、72℃30 s,共計35個循環(huán)。按照2-ΔΔCt法,通過β-actin對ST7L基因mRNA水平進行內源性校正,每組分別重復3次。

    1.2.4 CCK8實驗 取對數生長期細胞,分別取5*103個H1299和A549細胞接種于96孔板,每孔培養(yǎng)液為100 μl,將96孔板置于含5% CO2的培養(yǎng)箱,37℃恒溫培養(yǎng)18~24 h。待細胞貼壁后采用脂質體2000轉染上述肺癌細胞;另外,將不含細胞的完全培養(yǎng)液加入標準空白孔中對照。在不同轉染時間點結束時,將CCK8以100 μl∕孔逐一加入96孔板并繼續(xù)孵育4 h后終止培養(yǎng)。再采用酶標儀測定各孔吸光度(A)值,設定450 nm處波長。每組選取3個孔進行平行實驗,并重復3次。

    1.2.5 細胞集落形成實驗 將實驗各組A549和H1299細胞置于6孔板中轉染,待轉染24 h后,選取0.25%的胰酶消化細胞并充分混勻,用10 μl微量移液器吸取后加入1.5 ml離心管,1 000 r∕min離心5 min后棄上清并收集細胞,收集完成后重懸細胞并計數,加入60 mm細胞培養(yǎng)皿(300個∕皿),置于CO2培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng)14 d,至肉眼可見集落時,棄培養(yǎng)液,PBS洗滌2次。10%甲醛固定、結晶紫染色各10 min,最后用PBS洗凈后晾干并拍照,實驗累計重復3次。

    1.2.6 Western blot實驗 各組已轉染細胞于48 h后,RIPA裂解液在4℃條件下裂解30 min。收集蛋白混合液至離心管,BCA試劑盒定量測定蛋白濃度。具體測定步驟如下:①在每個泳道上加注15 μg蛋白樣品;②10%SDS-PAGE電泳后將蛋白轉膜至PVDF膜,并用PBST封閉1 h;③將稀釋好的一抗分別對應加入后,置于4℃水浴箱孵育過夜;④TBST連續(xù)洗膜3次,加入二抗并置于室溫搖床內,繼續(xù)孵育2 h后重復3次TBST洗膜;⑤ECL發(fā)光試劑盒(化學發(fā)光法辣根過氧化物酶底物)發(fā)光顯影、定影及結果分析。

    1.2.7 數據庫分析 應用TCGA數據庫分析ST7L在正常人與腫瘤患者組織的表達水平差異;應用GEO數據庫分析ST7L在不同腫瘤分型的表達水平差異。

    1.3 統(tǒng)計學分析 全部實驗過程均按標準重復執(zhí)行3次,數 據 性 實 驗 結 果 用±s表 示,采 用SPSS19.0軟件對實驗數據進行統(tǒng)計學分析,以GraphPad6.0軟件進行相關圖片制作。組間數據差異的兩兩比較采用Bonferroni法檢驗;多組間數據差異比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 NSCLC中ST7L表 達 水 平 降 低ST7L的mRNA水平在腫瘤組織中降低(圖1A),且ST7L的表達水平與腫瘤的大小、TNM分期及遠端轉移呈負相關,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);與年齡、性別及組織學分類差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見表1。TCGA數據庫分析結果表明,與正常組相比,ST7L mRNA水平在356例腫瘤組織中降低(圖1B),肺癌細胞系中ST7L表達水平較其永生化的正常非上皮細胞降低(圖1C),差異均有統(tǒng)計學意義。GEO數據庫分析發(fā)現ST7L的表達水平與肺鱗癌及腺癌的分型無相關性(圖1D)。

    表1 NSCLC患者臨床病理資料與ST7L表達分析Tab.1 Clinical characteristics and expression of ST7L in NSCLC patients

    圖1 ST7L在NSCLC中低表達Fig.1 ST7L was low expression in NSCLC

    2.2 ST7L抑制A549和H1299細胞的增殖能力和周期進程,并促進細胞凋亡CCK8實驗表明,過表達ST7L后,可在24 h、48 h、72 h時間點抑制A549和H1299細胞的活性(圖2A)。集落形成實驗表明,過表達ST7L可抑制A549和H1299細胞的增殖能力(圖2B)。流式細胞術結果表明,過表達ST7L能夠抑制A549和H1299細胞 由G1期向S期 和G2期的轉換(圖2C)。凋亡實驗結果表明,過表達ST7L可促進了A549和H1299細胞的凋亡能力(圖2D)。

    圖2 ST7L抑制A549和H1299細胞的增殖能力Fig.2 ST7L inhibits proliferation of A549 and H1299 cells

    2.3 ST7L抑制WNT∕β-catenin信號通路的激活Western blot結果表明,過表達ST7L可抑制A549和H1299細胞中CTNNB1、C-MYC和Cyclin D1的表達水平(圖3A、B)。TOP-FOP雙熒光報告系統(tǒng)檢測結果發(fā)現,過表達ST7L可抑制TOP∕FOP報告載體的活性(圖3C)。免疫熒光實驗結果表明,過表達ST7L可有效 抑制A549和H1299細 胞中CTNNB1由胞漿向胞核的轉運(圖3D)。

    圖3 ST7L失活WNT/β-catenin信號通路Fig.3 ST7L inactivated WNT/β-catenin signaling path?way

    3 討論

    ST7L作為抑癌基因在腫瘤中的作用已被報道。例如,過表達ST7L可抑制卵巢癌細胞的增殖和遷移侵襲能力[8];ST7L在膠質瘤中抑制細胞的惡性行為,但其在NSCLC中的研究報道較少[7]。本研究發(fā)現,過表達ST7L后能顯著抑制A549和H1299細胞的增殖能力和細胞周期進程,并促進細胞凋亡。

    ST7L是ST7的同源基因,含有575個氨基酸,最早由KATOH等[11]借助cDNA-PCR和生物信息學預測手段確定。由于染色體區(qū)域的重組或等位基因的缺失,ST7L也可能發(fā)揮抑癌基因作用,并與miRNA的調控密切相關。近期研究表明,其在乳腺癌、宮頸癌、肝細胞癌、胰腺癌等的侵襲與轉移中也發(fā)揮非常重要的調控作用[12-15]。

    WNT信號通路是進化上高度保守的通路之一,通過膜受體蛋白與配體蛋白WNT結合,將胞外信號傳遞到胞內,負責調控機體胚胎發(fā)育、細胞命運及正常組織的均質穩(wěn)定等關鍵的生物過程[16-17]。WNT途徑的主要組分如下:WNT配體、卷曲蛋白受體、LRP5∕6共受體(低密度脂蛋白受體相關蛋白5∕6)、Dsh(Dishevelled)、β-連環(huán)蛋白和TCF∕LEF(T-細胞因子∕淋巴增強因子)及由APC(腺瘤性結腸息肉)、軸蛋白(腳手架蛋白)和兩種激酶CK1α(酪蛋白激酶1α)和GSK-3β(糖原合酶激酶3β)組成的一種“降解復合物”[18]。WNT配體和β-連環(huán)蛋白在該途徑中發(fā)揮關鍵作用[19]。當WNT信號通路被激活時,β連環(huán)蛋白被導入細胞核,其可與TCF∕LEF家族的轉錄因子相互作用,招募轉錄共激活p300和∕或CBP(CREB結合蛋白)以及其他組件子轉錄下游目標基因云,包括c-MYC的和細胞周期蛋白D1等[20]。

    本篇研究構建了pcDNA3∕ST7L的過表達質粒,提取NSCLC組織和肺癌細胞中的總RNA并反轉錄為cDNA,通過CCK8、集落形成實驗、細胞周期試驗檢測出ST7L在A549和H1299細胞中可通過抑制WNT信號的活化影響C-MYC和Cyclin D1的表達水平,從而有效抑制細胞增殖和周期進程并促進細胞凋亡。基于TCGA和GEO臨床數據庫,正常組織表達結果與NSCLC癌組織檢測結果對照分析,也顯示NSCLC中ST7L表達水平降低。

    綜上,課題組在NSCLC細胞中確定ST7L作為抑癌基因通過抑制WNT信號通路的活化,抑制A549和H1299細胞的增殖能力和細胞的周期進程,可能為臨床診斷和精準治療NSCLC提供了分子基礎和新的策略。

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