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    新型植物基載體對乳糖酶的高效遞送及保護(hù)

    2021-07-28 08:34:30侯欣堯鄧紫玙梁宏閃
    食品科學(xué) 2021年14期
    關(guān)鍵詞:乳糖酶凍干乳糖

    侯欣堯,鄧紫玙,2,梁宏閃,2,,李 斌,2,3

    (1.華中農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,湖北 武漢 430070;2.環(huán)境食品學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 武漢 430070;3.湖北省功能食品工程技術(shù)研究中心,湖北 武漢 430068)

    乳糖是由D-葡萄糖和D-半乳糖在乳糖合成酶的催化下通過β-1,4-糖苷鍵連接而成的二糖,廣泛存在于牛奶及奶制品中[1-2]。乳糖不能直接被人體吸收,需要被消化道中產(chǎn)生的乳糖酶分解為單糖后才可以被吸收利用。若部分乳糖酶缺乏的人群一次性攝入較多的乳糖,乳糖未被水解進(jìn)入結(jié)腸后,被腸道微生物分解,產(chǎn)生大量的乳酸、甲酸、醋酸等短鏈脂肪酸和甲烷、H2、CO2等氣體,會造成腸道內(nèi)滲透壓升高使得腸腔內(nèi)水分增多而引起腹?jié)q、腸鳴、腸絞痛直至發(fā)生水瀉等癥狀,該現(xiàn)象被稱為乳糖不耐受[3]。乳糖酶缺乏和乳糖吸收不良在世界范圍內(nèi)廣泛發(fā)生,但存在較大的地理差異,全世界大約有40億 人面臨乳糖不耐受[4],大部分集中于亞洲人和非洲裔美國人,歐洲乳糖不耐癥患病率低于亞洲[5]。在我國大約有90%以上的成年人有乳糖酶缺乏的現(xiàn)象[6]。乳糖酶的缺乏由遺傳因素決定并隨著年齡的增長,腸道內(nèi)乳糖酶的活性逐漸降低,導(dǎo)致成年人乳糖不耐癥患病率更高。目前為緩解乳糖不耐受這一問題,已經(jīng)研發(fā)出相關(guān)方法,其中包括生產(chǎn)低乳糖或無乳糖制品。但目前有研究表明,乳糖不耐癥患者長期食用無乳糖制品會導(dǎo)致營養(yǎng)不良問題,如鈣、磷元素和維生素的缺乏,骨骼處于亞健康狀態(tài),患骨質(zhì)疏松的風(fēng)險(xiǎn)更高等[7],因此將乳糖酶以酶制劑的形式添加到乳制品中是解決乳糖不耐癥最根本最直接的選擇,具有較大的發(fā)展?jié)撃堋?/p>

    生物酶制劑安全、無毒,將其用于解決乳糖不耐癥是近年來的一個(gè)研究熱點(diǎn),具有重要的臨床價(jià)值和社會意義。乳糖酶于1998年底被我國食品添加劑標(biāo)準(zhǔn)化委員會列入食品添加劑目錄,作為食品原料進(jìn)行管理。目前有研究發(fā)現(xiàn)用乳糖酶治療兒童腹瀉繼發(fā)乳糖不耐受能顯著提高臨床療效,縮短治療療程且無明顯不良反應(yīng)[8]。因此,利用乳糖酶制劑治療兒童腹瀉繼發(fā)乳糖不耐受在保證嬰幼兒乳糖攝入的同時(shí)緩解乳糖不耐受癥狀,是治療腹瀉繼發(fā)乳糖不耐受的理想方法。其中β-半乳糖苷酶是最常見的乳糖酶補(bǔ)充劑,可將其在消費(fèi)者食用前以液態(tài)形式添加到牛奶中,或與乳制品一起以固體形式加入牛奶中[9]。由于單一裸露的乳糖酶在口服時(shí)易被胃酸破壞,因此眾多研究者聚焦構(gòu)造乳糖酶遞送體系,保護(hù)其順利通過胃液,抵達(dá)腸道發(fā)揮作用[10-11]。然而已有研究對乳糖酶在胃液中保護(hù)效果欠佳,使其在主要作用部位小腸處活性較低,因此乳糖酶的遞送仍需開發(fā)出一種綠色、生物相容性好的有效遞送系統(tǒng),在滿足安全性的同時(shí)實(shí)現(xiàn)對乳糖酶的高效保護(hù)及靶向遞送。

    自然界中,花粉孢粉素外壁具有良好的彈性、物理和化學(xué)抗性、紫外線屏蔽能力和抗氧化活性。這些特性使植物能夠保護(hù)其遺傳物質(zhì)不受外界因素影響[12-14]。因此可通過提取孢粉素生產(chǎn)無過敏原外殼,即孢粉素外壁膠囊(sporopollenin exine capsules,SECs)[15]。同時(shí),SECs被美國食品和藥物管理局普遍認(rèn)為是安全材料[16-17]。近年來,從天然花粉的孢子中提取的SECs由于結(jié)構(gòu)均勻、力學(xué)和化學(xué)穩(wěn)定性強(qiáng)、孔隙率大、內(nèi)腔大、可利用性豐富等特點(diǎn),被廣泛用于藥物及營養(yǎng)素包封[18]。向日葵花粉外壁比許多其他花粉外壁對酸和堿的處理更有彈性,且該花粉為單腔大孔徑花粉,便于物質(zhì)負(fù)載,是一種優(yōu)質(zhì)的遞送材料。根據(jù)Rienzo等[19]的研究可知,雖然向日葵花粉外壁表面孔隙大使其便于物質(zhì)的負(fù)載,然而在遞送過程中負(fù)載物較易從花粉表面孔中釋放,影響負(fù)載物活性或穩(wěn)定性。針對這一問題,可以通過適宜的聚合物涂層技術(shù)進(jìn)行調(diào)控,保護(hù)負(fù)載物在遞送過程中的穩(wěn)定性。

    海藻酸鈉(sodium alginate,Alg)又稱海藻膠、褐藻酸鈉或海帶膠,是一種從天然褐藻中提取的聚陰離子多糖的鈉鹽,因其無毒同時(shí)具有良好的生物黏附性、生物相容性、生物可降解性及膠凝特性,被廣泛用于食品工業(yè)、醫(yī)藥工業(yè)、日用化工業(yè)等領(lǐng)域[20]。茯苓多糖(carboxymethylpachymaran,CMP)為茯苓的主要成分,但其水溶性低,影響其研究應(yīng)用[21],而經(jīng)過羧甲基化的CMP其水溶性及生物活性均顯著提高[22],同時(shí)還表現(xiàn)出顯著的免疫調(diào)節(jié)、抗炎和抗氧化活性[23]。此外,最近的研究表明,CMP具有顯著的pH值敏感性和優(yōu)異的溶脹能力,因此有很大潛力成為一種新的藥物或營養(yǎng)素載體[24]。

    本實(shí)驗(yàn)采用不同Alg與CMP溶液體積比的混合凝膠體系作為包膜材料,對負(fù)載乳糖酶的新型植物基材料(向日葵SECs)進(jìn)行包膜,探究不同多糖比例對乳糖酶的釋放及保護(hù)效果,優(yōu)化最佳配比,以期最大化實(shí)現(xiàn)對乳糖酶的保護(hù)及控制性釋放。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    β-半乳糖苷酶 上海源葉生物科技有限公司;向日葵花粉 卡爾科學(xué)實(shí)驗(yàn)室;羧甲基CMP 武漢潤歌生物科技有限公司;鄰硝基苯β-D-半乳吡喃糖苷(2-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside,ONPG)、Alg國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    DZ-3BCII真空干燥箱 上海索普儀器有限公司;JSM-6390LV掃描電子顯微鏡 日本NTC公司;Carl Zeiss LSM880激光共聚焦顯微鏡 德國耶拿公司;Thermo Multskan Go全自動(dòng)酶標(biāo)儀 上海鼎謙生物科技有限公司;SPX-150BIII生化培養(yǎng)箱 杭州綠博儀器有限公司;FiveEasy Plus pH計(jì) 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;YP502N電子天平 上海精密科學(xué)儀器有限公司;MIX-30S渦旋儀 杭州米歐儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 花粉SECs的制備及表征

    1.3.1.1 SECs的提取

    稱取2 g脫脂向日葵花粉加入15 mL 85 g/100 mL磷酸溶液,酸解處理不同時(shí)間(3、5、10、20 h)后,真空過濾收集花粉,隨后經(jīng)過一系列洗脫:熱水(50 ℃,5×100 mL)→熱丙酮(50 ℃,2 h,100 mL)→2 mol/L熱鹽酸(50 ℃,1 h,100 mL)→熱水(50 ℃,5×100 mL)→熱丙酮(50 ℃,1×100 mL)→熱乙醇(50 ℃,2×100 mL),每次洗滌之間至少懸停5 min。真空過濾收集處理后的SECs,在60 ℃烘箱中干燥至質(zhì)量恒定,放入干燥箱貯存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.1.2 激光共聚焦顯微鏡分析

    未脫脂和經(jīng)脫脂酸解處理的SECs通過激光共聚焦顯微鏡分析其熒光。配備3 個(gè)光譜反射/熒光檢測通道,6 條激光線(405、458、488、514、561、633 nm)和1 個(gè)倒置顯微鏡。

    1.3.1.3 掃描電子顯微鏡觀察

    取干燥的樣品用導(dǎo)電膠置于載物臺上,用洗耳球吹去未粘合樣品。經(jīng)過離子濺射儀噴金后,在10 kV電子下用電子顯微鏡觀察脫脂后向日葵花粉的形貌。

    花粉SECs切面制備是通過將SECs固定在掃描電子顯微鏡樣品固定帶上,將其浸入液氮中20~30 s后,使用一把鋼制手術(shù)刀片切割而成。

    1.3.2 負(fù)載實(shí)驗(yàn)

    50 mg花粉SECs與1 mL 1 mg/mL乳糖酶溶液渦旋均勻混合10 min,將混合液轉(zhuǎn)移至6 孔板中,用錫紙覆蓋6 孔板的上端且扎孔。將6 孔板置于30 ℃真空干燥箱真空干燥0.5 h,而后關(guān)閉真空閥繼續(xù)干燥2.5 h后得到負(fù)載樣品。

    1.3.3 乳糖酶活力測定

    1.3.3.1 磷酸鹽緩沖液(pH 6.5)配制

    稱取8.8 g磷酸二氫鉀(KH2PO4)、250 mg七水硫酸鎂(MgSO4?7H2O)、18.6 mg二水乙二胺四乙酸(C10H14N2Na2O8?2H2O)及8.0 g三水磷酸氫二鉀(K2HPO4?3H2O)溶解于600 mL水中,攪拌至溶液均一穩(wěn)定。而后用pH計(jì)進(jìn)行測量,誤差在0.05之內(nèi)。測量完畢后,將溶液轉(zhuǎn)入1 000 mL容量瓶,用水定容并搖勻,至于4 ℃冷藏貯存。

    1.3.3.2 ONPG底物溶液配制

    將250.0 mg ONPG溶解于80 mL磷酸鹽緩沖液(pH 6.5)中,而后轉(zhuǎn)移至100 mL容量瓶中,用反應(yīng)緩沖液定容搖勻,制備不得早于使用前2 h。

    1.3.3.3 Na2CO3溶液配制

    稱取50 g Na2CO3、37.2 g二水乙二胺四乙酸溶解于約700 mL的超純水中,緩慢攪拌至固體完全溶解。最后定容至1 000 mL的容量瓶中,搖勻??煞胖潦覝孛芊赓A存。

    1.3.3.4 酶活力測定

    配制1.00 mg/mL乳糖酶溶液作為對照組母液。每個(gè)樣品取兩支試管,一支作為實(shí)驗(yàn)組,一支作為對照組。將所有試管、ONPG底物溶液和Na2CO3溶液同時(shí)放置于37.0 ℃水浴鍋中平衡30 min,而后取出放在試管架中,按照已定的順序排好。在樣品液中快速加入5.00 mL ONPG底物溶液,在對照液中加入2.00 mL Na2CO3溶液,渦旋混合均勻。室溫下靜置,精確反應(yīng)10 min。迅速加入2.00 mL Na2CO3溶液于樣品液中,5.00 mL ONPG底物溶液于對照液中,渦旋混合均勻。從每個(gè)試管取200 μL溶液于微孔板中,每支試管樣品做3 次平行,使用Thermo Multskan Go全自動(dòng)酶標(biāo)儀在420 nm波長處精確測量樣品和對照液的吸光度。

    1.3.4 包膜實(shí)驗(yàn)

    配制5%的Alg及6%的羧甲基CMP溶液。采用4 個(gè)不同體積比(Alg∶CMP=1∶0、1∶1、2∶1、3∶1)Alg-CMP多糖混合液與50 mg負(fù)載后的SECs均勻混合。使用1 mL的針筒逐滴加于50 mL、0.05 mol/L的CaCl2溶液均勻攪拌后,靜置10 min后真空抽濾,超純水洗滌3 次后,得到硬化后的凝膠球。

    1.3.5 體外釋放實(shí)驗(yàn)

    將不同比例Alg-CMP體系(Alg∶CMP=1∶0、1∶1、2∶1、3∶1)制成的凝膠球加入模擬胃液(simulated gastric fluid,SGF,pH 2.5),放入恒溫?fù)u床37 ℃、100 r/min孵育2 h。收集凝膠球,水洗后加入模擬腸液(simulated intestinal fluid,SIF,pH 7.4),37 ℃、100 r/min恒溫?fù)u床孵育6 h。固定時(shí)間下取出均勻混合的樣品液1 mL,測量其在420 nm波長處的吸光度。同時(shí)取錐形瓶,加入未經(jīng)包膜處理的負(fù)載乳糖酶的SECs(乳糖酶質(zhì)量相同),按照上述相同條件,固定時(shí)間下取出均勻混合的樣品液1 mL,測量其在420 nm波長處的吸光度,作為對照組。

    1.3.6 凍干保護(hù)效果評價(jià)

    羧甲基CMP具有優(yōu)良的特性,常作為凍干制劑中蛋白質(zhì)的賦形劑。因此將乳糖酶液和Alg-CMP體系制備的凝膠球進(jìn)行凍干處理后測其酶活力,由此驗(yàn)證Alg-CMP體系是否具備成為乳糖酶凍干保護(hù)劑的潛力。酶活力損失率計(jì)算如下:

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    各組實(shí)驗(yàn)均進(jìn)行3 次平行測定,數(shù)據(jù)分析采用Excel軟件,結(jié)果表示為±s。作圖采用Origin Pro 8.5。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 SECs的制備與表征

    向日葵花粉為單腔花粉,在去除其致敏內(nèi)容物,較大空腔為藥物及營養(yǎng)素的包埋提供了充足的負(fù)載空間。依據(jù)實(shí)驗(yàn)室對向日葵孢粉素的前期研究可得[25],其脫脂10 h后經(jīng)過不同時(shí)間的磷酸酸解處理,得到SECs。SECs通過粒徑測定、形貌分析及C、N元素分析等一系列表征,表明經(jīng)磷酸處理后,其內(nèi)容物去除程度不斷提高,致使其內(nèi)腔中空程度顯著增大。研究發(fā)現(xiàn),在酸解處理10 h后,其內(nèi)腔較大,同時(shí)SECs形態(tài)結(jié)構(gòu)保持完整。因此本實(shí)驗(yàn)采用磷酸處理10 h后的向日葵SECs作為目標(biāo)遞送載體。

    由圖1a、b對比可知,經(jīng)脫脂和酸解處理后向日葵孢粉素中內(nèi)容物被去除,SECs內(nèi)腔的中空程度得到了較大提高,為負(fù)載乳糖酶提供了充足空間。SECs的掃描電子顯微鏡切面圖進(jìn)一步證明了向日葵SECs內(nèi)容物被充分去除(圖1c)。從圖2可以清晰觀察到,向日葵孢粉素外壁具有微米級大孔和納米級小孔,可實(shí)現(xiàn)乳糖酶的負(fù)載。從上述形貌特征可知,向日葵SECs表面具孔,同時(shí)其內(nèi)腔大、粒徑分布均一,是實(shí)現(xiàn)乳糖酶高效負(fù)載的優(yōu)異載體。

    圖1 向日葵SECs激光共聚焦顯微鏡和掃描電子顯微鏡圖像Fig.1 CLM and SEM images of SECs

    圖2 脫脂和酸解處理后向日葵SECs掃描電子顯微鏡圖像(×30)Fig.2 SEM images of defatted SECs and acid treated SECs (× 30)

    2.2 β-半乳糖苷酶負(fù)載

    基于實(shí)驗(yàn)室前期研究[25],本實(shí)驗(yàn)采用真空負(fù)載技術(shù)實(shí)現(xiàn)乳糖酶的負(fù)載。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在SECs與β-半乳糖苷酶質(zhì)量比50∶1,負(fù)載溫度30 ℃、負(fù)載3 h條件下,向日葵SECs的酶活力保留率高達(dá)(85.40±1.19)%。圖3是采用FITC熒光標(biāo)記的乳糖酶負(fù)載前后向日葵SECs的激光共聚焦顯微鏡圖(激發(fā)片波長460~550 nm,發(fā)射片波長590 nm)。對比圖3可看出,熒光標(biāo)記的乳糖酶已被成功負(fù)載于向日葵SECs內(nèi),進(jìn)一步說明向日葵SECs可作為乳糖酶的優(yōu)良的載體。但由于向日葵SECs表面存在大小孔,雖然為乳糖酶的負(fù)載提供了通道,但是前期實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證發(fā)現(xiàn)多孔的結(jié)構(gòu)使其不能在胃環(huán)境下提供對乳糖酶的保護(hù)。因此需要在負(fù)載乳糖酶后,使用高聚物包埋技術(shù)進(jìn)一步實(shí)現(xiàn)對花粉大小孔的包埋,同時(shí)可利用高聚物的性質(zhì)賦予體系一定的環(huán)境相應(yīng)性。

    圖3 熒光標(biāo)記的乳糖酶負(fù)載前(a)和負(fù)載后(b)向日葵SECs激光共聚焦顯微鏡圖Fig.3 CLM images of free SECs (a) and SECs loaded with fluorescent labeled β-Gal (b)

    2.3 體外模擬實(shí)驗(yàn)

    2.3.1 微球形貌

    本實(shí)驗(yàn)選擇使用Alg與Alg-CMP體系實(shí)現(xiàn)對花粉大小孔的包埋。圖4顯示,Alg凝膠球在SGF中模擬消化2 h后,其形態(tài)結(jié)構(gòu)與0 h相比并未有較大變化,仍是球體。從形態(tài)上分析,這有利于保護(hù)乳糖酶在胃液環(huán)境中不受破壞,保持其活性。在SIF消化的過程中,凝膠球慢慢溶解,這表明乳糖酶在腸液環(huán)境中可被緩慢釋放,顯示出一定的釋放靶向性。

    圖4 Alg凝膠球在SGF和SIF中的溶出過程照片F(xiàn)ig.4 Photographs displaying the dissolution process of ASG in SGF and SIF

    從圖5可得,Alg與CMP混合(體積比1∶1)所制的凝膠球在SGF和SIF中的變化情況類似Alg凝膠球。在SGF中孵育2 h后,其形態(tài)結(jié)構(gòu)與初始相比并未有顯著變化,這表明加入CMP后的凝膠球同樣具備保護(hù)乳糖酶在胃酸環(huán)境下不被破壞的特點(diǎn)。之后在SIF消化過程中,凝膠球逐漸溶解,這表明加入CMP并不影響乳糖酶在腸液中的響應(yīng)性釋放。

    圖5 Alg-CMP凝膠球在SGF和SIF中的溶出過程照片F(xiàn)ig.5 Photographs displaying the dissolution process of Alg-CMP in SGF and SIF

    2.3.2 掃描電子顯微鏡分析

    從圖6可知,初始狀態(tài),SECs可包裹在Alg凝膠中,SGF孵育2 h后,凝膠結(jié)構(gòu)部分松散,但仍可看出凝膠可黏附在SECs外。這進(jìn)一步說明了該體系具備一定的保護(hù)乳糖酶抵抗胃環(huán)境的能力。SIF中凝膠球隨著模擬消化時(shí)間的延長逐漸溶解,乳糖酶被釋放于腸液中發(fā)揮作用。從圖7可知,在經(jīng)過胃環(huán)境孵育2 h后,凝膠結(jié)構(gòu)基本無變化,SECs仍緊密包裹于凝膠網(wǎng)絡(luò)中。推測Alg與CMP間的相互作用可以一定程度增強(qiáng)凝膠強(qiáng)度,從而可以為負(fù)載有乳糖酶的SECs提供更強(qiáng)的保護(hù)。負(fù)載有乳糖酶的SECs在經(jīng)過不同包膜材料處理后,其在SIF中的酶活力保留率將進(jìn)一步驗(yàn)證。

    圖6 Alg凝膠球在SGF和SIF中溶解過程掃描電子顯微鏡圖Fig.6 SEM images displaying the dissolution process of ASG in SGF and SIF

    圖7 Alg-CMP凝膠球在SGF和SIF中的溶解過程掃描電子顯微鏡圖Fig.7 SEM images displaying the dissolution process of Alg-CMP in SGF and SIF

    2.3.3 體外釋放

    實(shí)驗(yàn)顯示,僅使用向日葵SECs負(fù)載乳糖酶,未進(jìn)行表面聚合物包埋,該體系測得乳糖酶基本全部失活(對照組,結(jié)果未顯示),表明SECs上大小孔雖然可實(shí)現(xiàn)對乳糖酶的負(fù)載,然而其未能在胃部的強(qiáng)酸環(huán)境中對乳糖酶提供高效保護(hù)。因此,需要Alg或Alg-CMP體系實(shí)現(xiàn)對花粉大小孔的包埋。如圖8所示,在SIF中孵育4 h后釋放基本達(dá)到平衡。其中僅使用Alg制備的微球中乳糖酶活力保留率最低,對乳糖酶的保護(hù)效果不理想。這可能是由于Alg形成微球的空間網(wǎng)絡(luò)狀結(jié)構(gòu)較疏松,導(dǎo)致其在SGF環(huán)境中H+對乳糖酶活力產(chǎn)生了破壞作用[26]。而加入CMP后,在經(jīng)過SIF消化4 h后酶活力顯著提高,尤其是Alg與CMP溶液體積比為1∶1時(shí),其酶活力保留率最高,約55%,對乳糖酶起到明顯的保護(hù)作用。這可能是由于加入CMP后,凝膠球形成的空間網(wǎng)絡(luò)狀結(jié)構(gòu)更為致密,從而可以抵抗胃環(huán)境達(dá)到對乳糖酶活性更好的保護(hù)效果,這與掃描電子顯微鏡分析結(jié)果可以相互驗(yàn)證。關(guān)于CMP與Alg間的相互作用力影響凝膠結(jié)構(gòu),進(jìn)而影響酶活力保留率的原因,據(jù)推測可能與兩種多糖的結(jié)構(gòu)具有一定關(guān)系。Alg結(jié)構(gòu)中含有大量羧基,是一種陰離子多糖也是酸性多糖,其結(jié)構(gòu)上的Na+可以與Ca2+發(fā)生離子交換,快速形成水凝膠[27]。CMP是β-吡喃糖苷鍵結(jié)合的多糖,也是一種陰離子多糖,據(jù)王博等[28]研究發(fā)現(xiàn),CMP的分子鏈構(gòu)象與糖溶液的濃度、溶劑性質(zhì)及離子強(qiáng)度密切相關(guān),不同物化性質(zhì)的溶液都會對其分子鏈的構(gòu)象產(chǎn)生很大影響。從結(jié)構(gòu)方面看,這兩種多糖結(jié)構(gòu)較為相似,因此具有較好的生物相容性[29]。這兩種多糖分子中含有大量羥基和羧基,分子間可通過范德華力作用形成物理交聯(lián)使得分子之間的作用力增加,從而使得凝膠球的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)更為致密[30],起到一定的緩釋效果,這與圖8結(jié)果也吻合。綜上可知,Alg與CMC溶液體積比為1∶1時(shí)所制備的凝膠球?qū)θ樘敲傅谋Wo(hù)效果最佳。

    圖8 包膜后SECs外模擬累積釋放圖Fig.8 In vitro simulated cumulative release of β-Gal from SECs after capsulation

    2.4 凍干保護(hù)

    真空冷凍干燥技術(shù)應(yīng)用廣泛,尤其在食品、生物、醫(yī)藥等多種領(lǐng)域[31]。酶制劑經(jīng)過冷凍干燥技術(shù)處理后可延長其儲存性能,有利于對其活力的保持[31]。但是對于穩(wěn)定性較差的酶制劑如乳糖酶,經(jīng)冷凍干燥后,可一定程度損失其活性。因此可開發(fā)具有優(yōu)良冷凍保護(hù)效果的體系,最大化減小冷凍條件對酶活力的不利影響。由表1可知,經(jīng)Alg-CMP體系保護(hù)的乳糖酶凍干后經(jīng)過SIF釋放的酶活力高于純酶液,因此該體系具有作為乳糖酶凍干保護(hù)劑的能力。其保護(hù)機(jī)制可能是因?yàn)镾ECs物理和化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定,具有良好的抗高溫高壓等特性。通過SECs堅(jiān)硬的外殼對乳糖酶進(jìn)行封裝,相當(dāng)于乳糖酶抵抗外界不良環(huán)境的天然屏障,極大增強(qiáng)了乳糖酶對外界不利環(huán)境的抗性。之后通過多糖體系將花粉上的微孔包封,一方面是進(jìn)一步增強(qiáng)其抗性,另一方面是在包封過程中,由于蛋白質(zhì)分子內(nèi)存在大量的氫鍵,而多糖類化合物含有大量的自由羥基,它們之間相互結(jié)合將蛋白質(zhì)分子牢牢地束縛在花粉之中,從而保護(hù)了蛋白質(zhì)分子在冷凍干燥過程中不變性,進(jìn)而起到保護(hù)乳糖酶活性的作用[31-32]。綜上所述,Alg-CMP體系具有作為乳糖酶的凍干保護(hù)劑的潛力。

    表1 經(jīng)SIF消化6 h后凍干乳糖酶與凍干Alg-CMP體系中乳糖酶活力損失率Table 1Enzymatic activity loss percentage of freeze-dried β-Gal and freeze-dried β-Gal in Alg-CMP system after 6 h incubation in SIF

    3 結(jié) 論

    將向日葵花粉經(jīng)過一系列處理后采用真空負(fù)載技術(shù)可實(shí)現(xiàn)對乳糖酶的高效負(fù)載。但是由于向日葵SECs表面的大小孔,需要進(jìn)一步對SECs進(jìn)行包膜處理。包膜實(shí)驗(yàn)采用4 個(gè)不同比例的Alg與CMP多糖體系(Alg∶CMP=1∶0、1∶1、2∶1、3∶1),與負(fù)載后的SECs均勻混合后制備凝膠球。在體外模擬消化實(shí)驗(yàn)中,通過形貌圖以及掃描電子顯微鏡圖可以驗(yàn)證Alg-CMP凝膠球在模擬消化釋放時(shí),在SGF中基本不變,在SIF中凝膠溶解。體外消化釋放圖也進(jìn)一步證實(shí)凝膠球在SIF消化過程中乳糖酶在逐步釋放,在4 h左右基本釋放達(dá)到平衡。同時(shí)結(jié)果顯示Alg-CMP微球(體積比1∶1)可以有效阻止乳糖酶過胃失活,實(shí)現(xiàn)在腸道中的響應(yīng)性釋放,最大化保存酶活性。實(shí)驗(yàn)還發(fā)現(xiàn),Alg-CMP體系負(fù)載的乳糖酶在凍干處理后具有高效保護(hù)乳糖酶的效果,體系具備成為乳糖酶凍干保護(hù)劑的潛力。通過對向日葵SECs遞送體系的構(gòu)建及后續(xù)實(shí)驗(yàn),成功論證了其可以作為乳糖酶高效遞送及保護(hù)載體的可行性,為乳糖不耐癥的治療提供了新的思路和想法。

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