大花金挖耳培養(yǎng)細(xì)胞總黃酮提取工藝及抑菌活性研究

李玉平,龔 寧

1.西北農(nóng)林科技大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,陜西 楊凌712100

2.青海大學(xué)新農(nóng)村發(fā)展研究院,青海 西寧810016

3.西北農(nóng)林科技大學(xué)陜西省生物農(nóng)藥工程技術(shù)研究中心,陜西 楊凌712100

4.西北農(nóng)林科技大學(xué)化學(xué)與藥學(xué)院,陜西 楊凌712100

大花金挖耳Carpesium macrocephalumFranch.et Sav.細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮提取工藝及其胞內(nèi)物抑菌活性研究在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)和醫(yī)療保健中具有重要的意義。大花金挖耳系菊科(Compositae)天名精屬多年生草本植物[1]。國內(nèi)外學(xué)者從該植物中分離鑒定得到黃酮類、萜類、香豆素等化合物近百種[2,3]，該植物具有抗腫瘤、殺蟲等醫(yī)用功效[3,4]，隨著植物源農(nóng)藥研究的興起[5-8],大花金挖耳的抑菌、除草和殺蟲等活性[9-11]得到了初步研究。筆者前期研究了大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)黃酮[12]等農(nóng)藥活性物質(zhì)的培養(yǎng)條件。目前，有關(guān)其細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮提取工藝及細(xì)胞培養(yǎng)物抑菌活性尚無報(bào)道?；诔暡ㄝo助提取技術(shù)具有提取速度快、不改變生物活性物質(zhì)、工藝可行等優(yōu)點(diǎn)[13-15]，本文研究了不同干燥方式、溶劑、粉碎度和固液比等因素對(duì)大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮提取的影響，進(jìn)而采用超聲波聯(lián)合搖床振蕩提取得到總黃酮的提取工藝,并初步測試了細(xì)胞培養(yǎng)物對(duì)供試8 種病原真菌的抑菌活性,為大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)抑菌活性物質(zhì)的提取奠定了基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料、試劑與儀器

1.1.1 供試菌種 番茄灰霉病菌（Botrytis cinerea）、番茄早疫病菌（Alternaria solani）、辣椒疫霉病菌（Phytophthora capsici）、南瓜枯萎病菌（Fusarium bulbigenum）、西瓜枯萎病菌（Fusarium oxysporiumf.sp.niveum）、蘋果炭疽病菌（Glomerella cingulata）、小麥紋枯病菌（Rhizoctonia cerealis）、煙草赤星病菌（Alternaria longipes）。供試菌種由西北農(nóng)林科技大學(xué)無公害農(nóng)藥研究服務(wù)中心提供。

1.1.2 試劑 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品（質(zhì)量分?jǐn)?shù)≥95%，中國藥品生物制品檢定所）；萘乙酸(NAA)、6-芐氨基嘌呤(6-BA)（美國Sigma 公司）；B5 和N T 培養(yǎng)基中添加的蔗糖、肌醇、鹽酸硫胺素(VB1)、鹽酸吡哆醇以及各種無機(jī)鹽試劑均為分析純；丙酮、乙醇、氯仿、石油醚均為分析純。

1.1.3 儀器與設(shè)備MCFD5508 型冷凍干燥機(jī)（美國SIM 公司）；CR22G 高速冷凍離心機(jī)（HITACHI）；JY92-2D 超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)（寧波新芝生物科技股份有限公司）；ES-315Tomy High－pressure steam sterilizer（Tomy KOGYO CO.LTD.Nerima Tokyo.Japan）；BP-190S 電子天平（Sartorius 公司）；PHS-25型酸度計(jì)（上海雷磁儀器廠）；ZRD-5030 全自動(dòng)鼓風(fēng)干燥箱（上海智誠分析儀器制造有限公司）；HZT2 雙層振蕩器（哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司）；UV1102 紫外/可見分光光度計(jì)（上海天美科學(xué)儀器有限公司）。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 懸浮細(xì)胞培養(yǎng)方法 大花金挖耳懸浮細(xì)胞系[12]培養(yǎng)于NT+1.0 mg/L NAA+0.2 mg/L 6-BA+蔗糖40 g/L 中。培養(yǎng)條件為：pH 5.8（滅菌前）、搖床轉(zhuǎn)速120 r/min、溫度25±2℃、光照強(qiáng)度1500～2000 Ix、光照12 h/d，收集培養(yǎng)20 d 的褐化細(xì)胞作為供試材料。

1.2.2 大花金挖耳培養(yǎng)細(xì)胞的胞內(nèi)外黃酮含量的比較 在NT+1.0 mg/L NAA 0.2 mg/L 6-BA 液體培養(yǎng)基中（培養(yǎng)條件同上），接鮮重細(xì)胞40 g/L 于其中，培養(yǎng)20 d 后，分別收集培養(yǎng)細(xì)胞和過濾液，細(xì)胞在烘箱中60 ℃烘（12 h）至恒重，濾液經(jīng)5000 r/min 離心10 min 后，取上清液風(fēng)干，將烘干的細(xì)胞和風(fēng)干的濾液分別粉碎過60 目篩，丙酮振蕩提取四次，每次24 h，合并提取液，減壓濃縮，用30%乙醇定容，測定提取液中黃酮含量（mg/mL），計(jì)算樣品（細(xì)胞培養(yǎng)物）中黃酮含量(%)[12]。

1.2.3 干燥方式、溶劑、粉碎度、固液比和提取次數(shù)對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物中總黃酮提取效果的影響 試驗(yàn)設(shè)計(jì)如下：①收集懸浮培養(yǎng)20 d 的褐化細(xì)胞，抽濾后稱取鮮重細(xì)胞10 份，5 份60 ℃下烘至恒重，另5 份在-40 ℃下真空冷凍（10 Pa 條件下干燥12 h）至恒重，將烘干和凍干的細(xì)胞分別粉碎過60 目篩，丙酮振蕩提?。虎谌∵m量烘干粉碎的細(xì)胞，以l:10 固液比(g/mL)分別加入丙酮、乙醇、氯仿、石油醚：丙酮體積比（7.5:1）、石油醚：氯仿體積比（1:1）等5 種溶劑振蕩提取；③取適量烘干粉碎的細(xì)胞，分別對(duì)過20、40、60 目篩的等量樣品丙酮振蕩提?。虎軐?duì)過60 目篩的粉碎樣品，設(shè)計(jì)固液比(g/mL)分別為1:5、1:10、1:15、1:20，丙酮振蕩提取?！阿?、②”中設(shè)計(jì)的試驗(yàn)均提取四次，每次24 h，合并提取液，減壓濃縮，用30%乙醇定容，測定總黃酮得率，考察干燥方式和溶劑對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取效果的影響；“③、④”中設(shè)計(jì)的試驗(yàn)分別提取1、2、3、4 次，每次24 h，分別合并提取液，減壓濃縮，用30%乙醇定容，測定總黃酮得率，考察粉碎粒度、固液比和提取次數(shù)對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取效果（黃酮得率）的影響。黃酮得率（%）=X×V/N×M×10-1，式中X為提取液中總黃酮含量(mg/mL)，V為提取液定容體積（mL），N為提取前樣品質(zhì)量（g），M為稀釋倍數(shù)。

1.2.4 超聲波聯(lián)合搖床振蕩提取細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的正交試驗(yàn) 收集懸浮培養(yǎng)20 d 的褐化細(xì)胞，烘干粉碎，過60 目篩，分別稱取樣品12 份，每份10 g，用丙酮做溶劑，固液比1:10，按表1 正交L9（34）試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行提取。先搖床振蕩（A 因素）分別提取6、12、18 h，過濾，分別收集濾液，得到第一次提取液；再采用超聲波提取濾渣（丙酮做溶劑，固液比1:10），超聲時(shí)間（B 因素）分別為10、30、60 min，超聲功率（C 因素）分別為200、400、600 W，按表1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)第二次提取，得到第二次提取液，分別合并各處理的第1、2 次提取液，減壓濃縮，30%乙醇定容，測定總黃酮得率?？疾斐暡?lián)合搖床振蕩提取對(duì)大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物中總黃酮提取效果的影響。

表1 超聲波輔助提取正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 1 Orthogonal design of ultrasonic-assisted extraction experiment

1.2.5 驗(yàn)證試驗(yàn) 在以上試驗(yàn)的基礎(chǔ)上，收集懸浮培養(yǎng)20 d 的褐化細(xì)胞，烘干粉碎過60 目篩，以丙酮做溶劑，固液比1:10，搖床振蕩提取3 次，每次24 h，為對(duì)照（CK）。超聲波（600 W）提取60 min 后，收集第一次提取液，濾渣以搖床振蕩提取第二次（丙酮做溶劑，固液比1:10），提取時(shí)間設(shè)為：6、12、18、24 h，驗(yàn)證超聲波聯(lián)合搖床振蕩提取細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的正交試驗(yàn)結(jié)果。

1.2.6 大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物抑制菌絲生長試驗(yàn) 收集懸浮培養(yǎng)20 d 的褐化細(xì)胞，烘干粉碎過60 目篩,乙醇提取，減壓濃縮成浸膏，取適量丙酮溶解（超聲波促溶），定容至50 mg/mL。采用菌絲生長速率法[16]測定供試藥液對(duì)供試病原菌菌絲生長的抑制作用，用丙酮處理作對(duì)照。用十字交叉法測量供試真菌菌落生長直徑，取其平均值。根據(jù)公式（1）和（2）計(jì)算菌絲生長抑制率：

1.3 數(shù)據(jù)分析

以上試驗(yàn)重復(fù)3 次，使用DPS 數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)進(jìn)行毒力回歸方程計(jì)算，并對(duì)總黃酮含量等所得試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差鄧肯式分析(P=0.05)。

2 結(jié)果與分析

2.1 大花金挖耳培養(yǎng)細(xì)胞胞內(nèi)外黃酮含量變化

從圖1 可以看出，大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞內(nèi)的黃酮含量為1.22%、發(fā)酵液黃酮含量為0.13%，胞內(nèi)黃酮含量顯著高于胞外（發(fā)酵液），胞內(nèi)黃酮含量是胞外的21.22 倍（P＜0.05）。

圖1 胞內(nèi)外黃酮含量比較Fig.1 Comparison of extracellular and intracellular flavonoids content

圖2 不同干燥方法對(duì)干鮮重比和細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的提取效果Fig.2 Effects of different drying methods on rate of DW/FW and extracting total flavonoids from cultural materials

2.2 干燥方式對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取的影響

如圖2 所示，真空冷凍和烘干方法對(duì)大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的干重/鮮重比分別5.41%、5.75%；真空冷凍和烘干方法對(duì)細(xì)胞總黃酮的得率分別達(dá)到1.04%、1.22%，烘干較凍干所得的干重/鮮重比及總黃酮得率稍高，但均不顯著（P＜0.05）。

2.3 不同溶劑對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取的影響

圖3 表明，丙酮（I）、無水乙醇（Ⅱ）、氯仿（Ⅲ）、石油醚：丙酮（Ⅳ）、石油醚：氯仿（V）等5 種不同溶劑對(duì)懸浮培養(yǎng)細(xì)胞總黃酮的提取效果顯著不同。以無水乙醇、丙酮提取效果最為顯著，細(xì)胞總黃酮得率為1.22%，是其他溶劑提取細(xì)胞培養(yǎng)物得率的1.59～2.01 倍（P＜0.05）。

圖3 不同溶劑對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的提取效果Fig.3 Effects of different solvents on extraction of total flavonoids from cultural materials

圖4 樣品粒度對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的提取效果Fig.4 Effects of sample powder size on extraction of total flavonoids from cultural materials

2.4 粉碎粒度對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取的影響

由圖4 可知，在搖床振蕩提取次數(shù)一定的條件下，隨樣品粉碎度的增加，培養(yǎng)物總黃酮的得率逐漸增大，與沒有粉碎的細(xì)胞培養(yǎng)物相比，過20～60 目的細(xì)胞培養(yǎng)物的總黃酮得率高；在樣品粉碎粒度一定的情況下，隨搖床振蕩總提取次數(shù)的增加，黃酮得率逐漸增加，搖床振蕩提取3～4 次、樣品粒度40～60 目時(shí)對(duì)培養(yǎng)物黃酮提取較為適宜。

圖5 固液比對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的提取效果Fig.5 Effects of solid-to-liquid ratio on extraction of total flavonoids from cultural materials

圖6 超聲波聯(lián)合振蕩對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮的提取效果Fig.6 Effects of ultrasonic combined whirling on extraction of total flavonoids from cultural materials

2.5 固液比對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞黃酮提取的影響

由圖5 可知，在搖床振蕩提取次數(shù)一定的條件下，隨固液比從1:5 到1:20 的遞變，培養(yǎng)物總黃酮得率逐漸增大，1:10、1:15、1:20 固液比對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物的得率比較接近；在樣品固液比一定的情況下，隨搖床振蕩總提取次數(shù)的增加，黃酮得率不斷增加，當(dāng)固液比1:10～1:15，搖床振蕩提取3～4 次，黃酮得率增加到最高值1.22%。

2.6 超聲波聯(lián)合振蕩提取對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物總黃酮提取的正交試驗(yàn)效果

表2 試驗(yàn)方案及分析結(jié)果Table 2 The plan and results of the test

表2、3 表明：搖床振蕩提取時(shí)間、超聲提取時(shí)間和超聲波功率都對(duì)大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物中總黃酮的提取產(chǎn)生了顯著的影響。正交試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)搖床振蕩時(shí)間（A）、超聲波提取時(shí)間（B）和超聲波功率（C）三因素對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)物提取效果有明顯差異，依次為A＞B＞C，最佳組合是A3B3C3，即搖床振蕩提取18 h 后，濾渣在超聲波功率600 W 時(shí)，再超聲提取60 min，效果最好。

表3 方差分析表Table 3 The table of variance analysis

2.7 超聲波聯(lián)合搖床振蕩提取細(xì)胞黃酮正交試驗(yàn)的驗(yàn)證

從“2.6”可知，正交試驗(yàn)的最佳組合并未出現(xiàn)在正交試驗(yàn)組中，需要進(jìn)行驗(yàn)證，驗(yàn)證試驗(yàn)（圖6）表明，超聲波（600 W、60 min）提取后的濾渣再經(jīng)搖床振蕩提取，合并超聲波提取液和搖床振蕩提取液，檢測發(fā)現(xiàn)，隨搖床振蕩提取時(shí)間的延長，總黃酮得率顯著增大，搖床提取18～24 h 時(shí)，總黃酮得率最高達(dá)1.22%，并保持穩(wěn)定，與對(duì)照達(dá)到同樣效果?？梢姵曁崛。üβ?00 W、60 min）1次后，再搖床振蕩提?。?8 h）1 次，即可完成胞內(nèi)黃酮的提取。

2.8 大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物對(duì)8 種病原真菌的抑菌效果

表4 可見，大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的乙醇提取物對(duì)供試8 種供試病原菌生長均有不同程度的抑制作用，但對(duì)不同病原菌抑制效果存在較大差別。在藥液濃度50 mg/mL 時(shí)，抑制率達(dá)到50%以上的供試病原菌有辣椒疫霉病菌、蘋果炭疽病菌和小麥紋枯病菌等3 種病原真菌。

表4 大花金挖耳細(xì)胞提取物對(duì)8 種病原菌菌絲生長的抑制作用（3 d）Table 4 Inhibition rate of ethanol extracts from C.macrocephalum cell cultures against fungal mycelial growth of eight pathogenic fungi（3 d）

3 討論

植物中黃酮類化合物的合成主要在細(xì)胞質(zhì)中合成，在不同的膜系統(tǒng)間進(jìn)行轉(zhuǎn)運(yùn)，并最后貯存于液泡中[17]。本研究通過對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞及其培養(yǎng)液（發(fā)酵液）黃酮含量的檢測，發(fā)現(xiàn)大花金挖耳細(xì)胞生物合成的黃酮主要集中在細(xì)胞中，培養(yǎng)液中只有微量黃酮，可能與培養(yǎng)細(xì)胞后期衰亡破碎有關(guān)，造成少量黃酮類化合物進(jìn)入培養(yǎng)液。

研究表明高溫條件下長時(shí)間干燥處理會(huì)使黃酮含量減少，但短時(shí)間的高溫處理對(duì)黃酮含量影響較小[18]。本研究采取-40 ℃真空冷凍和60 ℃烘干兩種方法對(duì)收集的褐化細(xì)胞進(jìn)行處理，發(fā)現(xiàn)烘干較真空冷凍干燥對(duì)細(xì)胞總黃酮的得率及干重/鮮重比有不顯著的提高。這與烘干所用的溫度高、干燥快,能有效抑制相關(guān)酶的活性，減少其作用時(shí)間，使得總黃酮得率較凍干處理的高有關(guān)，這與郭澤美等[18]干燥處理葡萄皮及趙宇慧等[19]干燥處理枸杞粉的結(jié)果相似。

研究中發(fā)現(xiàn)丙酮、無水乙醇、氯仿、石油醚：丙酮、石油醚：氯仿等5 種不同溶劑對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞總黃酮的得率不同。以無水乙醇、丙酮提取效果最為顯著，本試驗(yàn)后期選擇了提取培養(yǎng)物活性物質(zhì)時(shí)，提出雜質(zhì)較少的丙酮作為溶劑。另外，本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，當(dāng)固液比大到一定程度時(shí)，有效成分已經(jīng)基本釋出完全，再增大固液比，雜質(zhì)增加，濃縮工作量加大，造成回收溶劑的浪費(fèi)，因此固液比應(yīng)控制在1:10～1:15 左右。

傳統(tǒng)的振蕩提取方法[20]是通過振蕩的方式使萃取劑與被提取的物質(zhì)反復(fù)接觸，最終被萃取物溶解到萃取劑中，再進(jìn)行純化和濃縮處理，獲得目標(biāo)物。振蕩提取步驟較簡單，成本低，缺點(diǎn)是耗時(shí)。超聲波提取[21]可以破壞植物細(xì)胞壁，加速有效成分的溶解和提取，具有提取均勻、時(shí)間短、簡單易行等優(yōu)點(diǎn)，不過高頻超聲波長時(shí)間提取也可能破壞物質(zhì)結(jié)構(gòu)，雜質(zhì)相對(duì)較多。本研究采用搖床振蕩聯(lián)合超聲波提取大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物活性成分，方法簡單，成本低，耗時(shí)短，溶劑用量少，該提取工藝為具有抗炎、抗氧化、抗癌、殺菌等廣泛活性作用的黃酮提取提供了新的選擇。

菊科植物的黃酮類、內(nèi)酯類、萜類等化合物均有抑菌活性[22,23]。本研究中大花金挖耳懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的粗提物對(duì)供試的8 種病原菌表現(xiàn)出了不同的抑菌作用，當(dāng)供試藥液濃度為50 mg/mL 時(shí)，供試病原菌菌絲生長抑制率達(dá)到50%以上的有辣椒疫霉病菌、蘋果炭疽病菌和小麥紋枯病菌等3 種病原菌，這說明：供試菌種菌絲生長抑制率與大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物中生物合成的黃酮等活性物質(zhì)密切有關(guān)，且供試菌種對(duì)藥液的敏感性不同。其中辣椒疫霉病菌屬于鞭毛菌亞門的卵菌，其他分屬于子囊菌亞門、擔(dān)子菌亞門和半知菌亞門的真菌[24]，鑒于植物病害中最多的是真菌病害，且近3 萬種之多[25]，下一步研究需以辣椒疫霉病菌、蘋果炭疽病菌和小麥紋枯病菌等作為細(xì)胞培養(yǎng)活性物質(zhì)分離純化的活性追蹤菌種，進(jìn)一步分離純化大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物活性物質(zhì)，探明其抑菌機(jī)理，為大規(guī)模細(xì)胞培養(yǎng)抑菌活性物質(zhì)奠定了基礎(chǔ)。

4 結(jié)論

大花金挖耳懸浮細(xì)胞生物合成的黃酮類化合物主要集中胞內(nèi)。在室溫下，細(xì)胞懸浮培養(yǎng)活性物質(zhì)的最佳提取條件是：以丙酮為溶劑、樣品粒度40～60 目、固液比1:10～1:15（g/mL），超聲輔助提?。üβ?00 W、60 min）1 次后，再接搖床振蕩提?。?8 h）1 次，總黃酮得率可達(dá)1.22%，該方法操作簡單、節(jié)省溶劑、環(huán)保、耗時(shí)短。大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)物具有抑菌活性，本研究為大花金挖耳細(xì)胞培養(yǎng)抑菌活性物質(zhì)的提取分離提供了實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)。