張 瑜,曾聰彥,卓 斌,胡玉良,肖凌婷,辛?xí)苑?,董杰?/p>
(廣州中醫(yī)藥大學(xué)附屬中山中醫(yī)院,廣東中山528400)
腦脈醒神膠囊是在我院臨床使用多年的有效經(jīng)驗(yàn)方基礎(chǔ)上制成的醫(yī)院制劑(粵藥制字Z20130020),由大黃、桃仁、紅花、丹參、黃芩、梔子、厚樸、法夏、茯苓、膽南星、竹茹等中藥組成,其中大黃有瀉下通腑兼活血化瘀之功,為方中君藥,與桃仁、紅花、丹參等臣藥相伍,使諸藥活血化瘀開竅之功大顯其威,使“血瘀”遁去;痰、瘀、熱內(nèi)結(jié),壅于腸腑,致腑氣不通、燥屎內(nèi)結(jié),因此大黃與厚樸、芒硝成大承氣湯,直清陽明腑實(shí),推陳出新;石菖蒲芳香辟穢,通竅醒神助麝香通諸竅;法半夏、膽南星、茯苓、竹茹健脾化痰開竅醒神;黃芩、山梔性辛涼苦寒,清熱涼血化瘀,除三焦之熱;諸藥合用共奏活血化瘀、化痰開竅、通腑瀉熱、開竅醒腦之功[1]。根據(jù)腦脈醒神膠囊方中各藥有效成分及性質(zhì)進(jìn)行分析,同時(shí)考慮醫(yī)院中藥制劑生產(chǎn)的特點(diǎn),配制工藝采用君藥大黃醇提,有利于提取大黃蒽醌類成分[2-3],其余藥味桃仁、紅花、丹參、黃芩、梔子、厚樸等采用水提的方法。以上主要藥味醇提、水提工藝的合理與否將直接影響成品質(zhì)量,進(jìn)而影響臨床療效,故本文對大黃醇提及其余藥味水提工藝進(jìn)行了研究,篩選出合理可行的提取工藝。
Agilent 1236型高效液相色譜儀(美國安捷倫);UV2550紫外可見分光光度計(jì)(日本島津);BS-224S型電子天平(德國賽多利斯);HH-S4數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市醫(yī)療儀器廠);東方-A型直熱式電熱恒溫干燥箱(廣州東方電熱干燥設(shè)備廠);大黃素對照品(中國藥品生物制品檢定所提供,批號110756-200110),苦杏仁苷對照品(中國藥品生物制品檢定所提供,批號 110820-201607);大黃、桃仁、紅花、丹參、黃芩、梔子、厚樸、法夏、茯苓、膽南星、竹茹等藥材均購于廣東廣弘藥材有限公司,經(jīng)廣州中醫(yī)藥大學(xué)附屬中山中醫(yī)院梅全喜教授鑒定,均符合《中國藥典》2015年版各藥材項(xiàng)下規(guī)定,甲醇為色譜純,水為重蒸餾水,其余所用試劑均為分析純。
2.1.1 大黃總蒽醌含量的測定[4-5]
2.1.1.1 對照溶液的制備 精密稱取大黃素對照品5.26mg,加0.8%醋酸鎂甲醇液溶解并定容至50mL,即得大黃素對照液(0.105 2mg/mL)。
2.1.1.2 供試品溶液的制備 精密吸取各號提取液 1 mL,水浴揮干,加冰醋酸-25%鹽酸(10∶21)15 mL使溶解,沸水浴中回流1 h,立即置冰水浴中冷卻,用乙醚萃取5次,15mL/次,合并萃取液,加無水硫酸鈉脫水后,濾過,揮干,加0.8%醋酸鎂甲醇液溶解,轉(zhuǎn)移至25mL量瓶中,用0.8%醋酸鎂甲醇液定容至刻度,搖勻,即得。
2.1.1.3 最佳測定波長的確定 取大黃素對照液適量,水浴揮干,以0.8%醋酸鎂甲醇溶液溶解殘?jiān)⒍ㄈ葜?0 mL,搖勻;以0.8%醋酸鎂甲醇溶液作參比溶液,在400~600 nm波長范圍內(nèi)分別對大黃素對照液和供試品溶液進(jìn)行掃描,兩者在505 nm處均有最大吸收,故選擇505 nm作為測定波長。結(jié)果見圖1。
圖1 大黃素吸收光譜圖
2.1.1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備 分別精密吸取大黃素對照品溶液 1.0、2.0、3.0、4.0、6.0、8.0、10.0 mL 置蒸發(fā)皿中,揮干,以0.8%醋酸鎂甲醇溶液洗滌殘?jiān)?,定容?5mL,搖勻。以醋酸鎂甲醇溶液為空白,在505 nm測定吸收度(A),以大黃素對照液濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo)(X),吸收度(A)為縱坐標(biāo)(Y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為:Y=24.42X-0.865,r=0.998 7。結(jié)果表明大黃素對照液濃度在4.208~42.08μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.1.2.1 乙醇濃度考察 取大黃藥材飲片100 g,共4份,分別加8倍量對應(yīng)濃度乙醇溶液(30%、50%、70%、90%),加熱回流提取 30min,濾過,減壓濃縮并定容至100mL,即得。照大黃總蒽醌含量測定法進(jìn)行測定。結(jié)果見表1。
表1 乙醇濃度單因素考察結(jié)果
從表1中可以看出,隨著乙醇濃度的增加,大黃總蒽醌含量逐漸增高,乙醇濃度為70%時(shí)總蒽醌含量有最大值,因此,大黃回流提取法乙醇濃度以70%左右為宜。70%乙醇濃度可以是60%,也可以是80%,因此,選擇還需60%、70%、80%這3個(gè)濃度水平進(jìn)一步安排正交考察。
2.1.2.2 提取時(shí)間考察 取大黃藥材飲片100 g,共4份,加70%乙醇8倍量,加熱回流提取10、30、50、70min,濾過,減壓濃縮并定容至100mL,即得。照大黃總蒽醌含量測定法進(jìn)行測定。結(jié)果見表2。
表2 提取時(shí)間單因素考察結(jié)果
從表2中可以看出,隨著提取時(shí)間的增加,總蒽醌的濃度逐漸增大,當(dāng)提取時(shí)間為30 min,提取較充分,與50min和70min兩組相比,相差不大。因此,大黃回流提取時(shí)間確定為30min。
2.1.2.3 乙醇用量考察 取大黃藥材飲片100 g,共 4 份,分別加 70%乙醇溶液 4、6、8、10 倍量,加熱回流提取30min,濾過,減壓濃縮并定容至100mL,即得。照大黃總蒽醌含量測定法進(jìn)行測定。結(jié)果見表3。
表3 乙醇用量單因素考察結(jié)果
從表3中可以看出,隨著加液倍量的增加,總蒽醌的濃度逐漸增大,當(dāng)加液倍量為8倍量時(shí),提取較充分,與10倍量相比,相差不大,可對其做進(jìn)一步的正交考察。
2.1.3 正交試驗(yàn) 在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,本試驗(yàn)采用正交試驗(yàn)優(yōu)化提取工藝,選取乙醇濃度(A),提取次數(shù)(B),乙醇用量(C)作為考察因素,各取3水平,進(jìn)行L9(34)正交試驗(yàn),篩選最佳工藝條件。以大黃總蒽醌的提取率為考察指標(biāo),篩選最佳醇提工藝。因素水平見表4,實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果見表5。
表4 因素水平表
表5 試驗(yàn)安排及結(jié)果
方差分析結(jié)果見表6。
表6 方差分析結(jié)果
對大黃總蒽醌提取工藝的數(shù)據(jù)進(jìn)行直觀分析(表 5),可知,影響因素順序?yàn)?B>A>C,即提取次數(shù)對大黃總蒽醌提取率影響最大,其次為乙醇濃度,再次為乙醇用量,最佳提取工藝組合為A2B3C3。由表6可見,因素B(提取次數(shù))各水平之間有顯著差異(P<0.05),因素 A(乙醇濃度)和因素 C(乙醇用量)各水平間無顯著性差異(P >0.05)。鑒于C(乙醇用量)對提取效果無顯著性影響,為降低成本,將C3改為C2,由此確定大黃總蒽醌最佳提取工藝為A2B3C2,結(jié)合單因素提取時(shí)間考察結(jié)果,得出大黃最佳醇提工藝為藥材飲片加70%乙醇6倍量,加熱回流提取3次,每次30min。
2.1.4 驗(yàn)證試驗(yàn) 為確定該工藝的優(yōu)劣和穩(wěn)定性,據(jù)所篩選的最佳條件,驗(yàn)證3批,結(jié)果見表7。由表可知,驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果與正交試驗(yàn)優(yōu)選結(jié)果吻合,說明正交試驗(yàn)選出的工藝條件合理,工藝條件穩(wěn)定可行。
表7 提取工藝驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果
2.2.1 因素與考察指標(biāo)確定 依據(jù)中藥水提經(jīng)驗(yàn),確定提取次數(shù)、提取時(shí)間、加水倍量等為水提效果的主要因素,以方中藥材中主要指標(biāo)成分苦杏仁苷提取率和干膏得率為考察指標(biāo),采用單因素試驗(yàn)方法進(jìn)行試驗(yàn)。
2.2.2 樣品的制備 按處方比例稱取1/20處方量的桃仁、紅花、丹參、黃芩、梔子、厚樸、法夏、茯苓、膽南星、竹茹等藥味,按實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的方法進(jìn)行提取,濾過,濾液濃縮并定容至250mL,備用。
2.2.3 總固體物的測定 精密吸取各樣品濃縮液20 mL,至已恒重的蒸發(fā)皿中,水浴蒸干,照干燥失重法(中國藥典2015年版四部通則0831)測定,計(jì)算干膏得率,公式如下:
W為20 mL濃縮液中干浸膏重量,V為定容體積,Wt為藥材重量。
2.2.4 苦杏仁苷的含量測定
2.2.4.1 色譜條件[6]色譜柱:Kromasil 100-5 C18柱(4.6×250mm,5 μm);流動相:水-甲醇(82∶18);檢測波長:210 nm;流速:1mL/min;柱溫:30 ℃。
2.2.4.2 對照品溶液的制備 精密稱取苦杏仁苷對照品適量,加70%甲醇制成每1mL含苦杏仁苷 74.5 μg的溶液,即得。
2.2.4.3 供試品溶液的制備 精密吸取樣品溶液1mL置25mL量瓶中,用70%甲醇定容至刻度,搖均,微孔濾膜濾過,取續(xù)濾液作為供試品溶液。
2.2.4.4 陰性樣品溶液的制備 稱取除桃仁外的藥材加10倍量水,煎煮2次,1.5 h/次,藥液濾過,合并濾液,濃縮并定容至250mL,取1mL濃縮液,自供試品溶液的制備項(xiàng)下“取樣品溶液1mL”起同法操作,制得陰性樣品溶液。
2.2.4.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 精密量取苦杏仁苷對照品溶液(74.5 μg/mL)1,2,4,6,8,10,15 μL 進(jìn)樣,記錄色譜圖,測定其峰面積,并以峰面積(Y)對進(jìn)樣量(X)進(jìn)行回歸,得回歸方程:Y=0.8549X+2.912 6,r=0.999 5。結(jié)果表明:在0.074 5~1.117 5 μg范圍內(nèi),苦杏仁苷峰面積與進(jìn)樣量呈良好的線性關(guān)系。
2.2.4.6 陰性干擾的判斷 吸取上述對照品、供試品及陰性對照溶液各10μL,分別注入液相色譜儀,記錄色譜圖,結(jié)果顯示,陰性對照圖譜與對照品、供試品圖譜中苦杏仁苷相應(yīng)的保留時(shí)間無其他峰干擾,表明選擇性良好,陰性無干擾。結(jié)果見圖2。
圖2 高效液相色譜圖
2.2.4.7 樣品含量測定 精密吸取各供試品溶液各10μL進(jìn)樣,記錄色譜圖,根據(jù)供試品吸收度積分值與對照品積分值,外標(biāo)兩點(diǎn)法計(jì)算,即得。
2.2.5 單因素試驗(yàn)
2.2.5.1 提取時(shí)間的考察 按處方量取黃芩、梔子等藥味共5份,各加水8倍量,煎煮1次,分別煎煮20、40、60、80、120min,濾過,濃縮定容至250 mL,測定苦杏仁苷含量和得膏率。結(jié)果見表8。
表8 提取時(shí)間考察結(jié)果表
表8結(jié)果表明,苦杏仁苷的提取率在提取60 min左右時(shí)可以達(dá)到最大,隨著時(shí)間的延長,苦杏仁苷的提取率反而降低,這可能同苦杏仁苷對熱不穩(wěn)定,長時(shí)間加熱導(dǎo)致其破壞有關(guān);而干膏得率隨著提取時(shí)間的延長呈增加態(tài)勢。確定本工藝的提取時(shí)間為60min。
2.2.5.2 加水倍量的考察 按處方量取黃芩、梔子等藥味共 5 份,分別加水 4、6、8、10、12 倍量,加熱回流提取2次,60 min/次,濾過,合并濾液,藥液濃縮定容至250mL,測定苦杏仁苷提取率和得膏率。結(jié)果見表9。
表9 加水量考察結(jié)果表
表9結(jié)果表明,8倍水量苦杏仁苷提取率達(dá)90%,干膏得率與10倍水量和12倍水量相比無明顯差異,本著節(jié)能減耗的原則,確定本工藝加水量為8倍。
2.2.5.3 提取次數(shù)的考察 按處方量取黃芩、梔子等藥味1份,每次加8倍量水提取1 h,提取3次,分別收集3次提取液,濃縮定容至250 mL,即得。測定苦杏仁苷提取率和得膏率。結(jié)果見表10。
表10 提取次數(shù)考察結(jié)果表 (n=3)
表10結(jié)果表明,隨著提取次數(shù)的增加,苦杏仁苷的提取率和干膏得率都呈降低態(tài)勢,提取2次和提取1次相比,苦杏仁苷的提取率和干膏得率都呈顯著性降低,而提取3次和提取2次相比,降低并不明顯,考慮到節(jié)約工時(shí)和效益最大化,確定以提取2次為宜。
2.2.6 驗(yàn)證試驗(yàn) 由上述試驗(yàn)確立最佳提取工藝為,藥材水提取兩次,每次加水8倍量,1.0 h/次。按上述確立工藝進(jìn)行重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次,結(jié)果見表11。驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果表明,該工藝條件合理,可行,重現(xiàn)性好。
表11 提取工藝驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果
科學(xué)合理地選擇中藥復(fù)方的提取工藝是保持原方療效的關(guān)鍵和核心,也是中藥劑型改進(jìn)和創(chuàng)新的前提和基礎(chǔ)。腦脈醒神膠囊是在其湯劑基礎(chǔ)上改進(jìn)而成的,處方復(fù)雜,各藥味所含有效成分理化性質(zhì)各異,有針對性地將提取工藝分為大黃醇提和其余藥材水提,這樣能夠較好地提取有效成分并保留藥物的藥理活性成分[7],更好地發(fā)揮藥效。
在大黃醇提工藝中,首先通過單因素試驗(yàn)初步考察了乙醇濃度、提取時(shí)間、乙醇用量對大黃總蒽醌提取效率的影響,確定了提取時(shí)間為30min,選擇出了正交試驗(yàn)的三因素三水平。然后用正交試驗(yàn)法考察了乙醇濃度、提取次數(shù)、乙醇用量三因素對大黃總蒽醌提取效率的影響,最終確定了最佳的大黃醇提工藝條件,驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明優(yōu)選的大黃醇提工藝穩(wěn)定可行。
在水提工藝優(yōu)選中,以苦杏仁苷和干浸膏得率作為考察指標(biāo),采用單因素試驗(yàn)考察了影響中藥復(fù)方制劑水提的提取次數(shù)、提取時(shí)間、加水倍量幾大主要因素,最終也較好地確定了其最佳的水提工藝條件,驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明優(yōu)選的水提工藝穩(wěn)定可行。此外,現(xiàn)代藥理研究表明,苦杏仁苷具有多種生物學(xué)效應(yīng),如具有抗腦缺血與抑制血小板聚集作用,能明顯提高腦缺血狀態(tài)下細(xì)胞色素氧化酶的活力,改善能量代謝,延長細(xì)胞生存時(shí)問,促進(jìn)組織細(xì)胞代謝及功能恢復(fù)和組織修復(fù)[8-9],這與腦脈醒神膠囊有活血化瘀、開竅醒腦的主要作用相同,應(yīng)為該制劑中主要有效成分之一,故選擇苦杏仁苷作為工藝優(yōu)選的考察指標(biāo)是合理、可行的。