羅 瓊,陳復(fù)彬,李青輕,黎 東,楊春艷*
(1.西華師范大學(xué) 化學(xué)化工學(xué)院 化學(xué)合成與污染控制四川省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,四川 南充 637002;2.南充市食品藥品檢驗(yàn)所,四川 南充 637000)
吡喹酮(Praziquantel)是一種合成的異喹啉—吡嗪衍生物,世界衛(wèi)生組織(WHO)將其歸納為一種基本藥物[1],在治療由血吸蟲病引發(fā)的發(fā)育遲緩、消瘦、缺乏體能、認(rèn)知障礙及不孕等疾病中發(fā)揮著重要作用[2];與此同時(shí),它還是治療家畜中由各種吸蟲和絳蟲引發(fā)感染的重要藥物[3]。然而,在實(shí)際應(yīng)用中,吡喹酮卻因其高效和廉價(jià)的特點(diǎn)而被過度濫用,產(chǎn)生了嚴(yán)重的藥物殘留,殘留量甚至超過了“日本肯定列表制度”中對(duì)其規(guī)定的 20 μg/kg 的范圍[4],給人們的健康帶來了很大危害(如:萎靡不振、頭痛、惡心、腹痛、產(chǎn)生耐藥性等癥狀)[5]。盡管中國尚未對(duì)吡喹酮?dú)埩袅孔龀雒鞔_的規(guī)定,但作為一個(gè)貿(mào)易大國,對(duì)吡喹酮?dú)埩袅康臋z測(cè)是不可或缺的。目前檢測(cè)吡喹酮的方法主要有:液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(LC-MS/MS)[6-9]、氣相色譜法(GC)[10]、中紅外光譜法[11]、反相高效液相色譜-紫外法(RP-HPLC-UV)[12]等。盡管這些方法對(duì)吡喹酮的檢測(cè)有一定優(yōu)勢(shì),但往往需要昂貴的儀器,且檢測(cè)時(shí)間長、操作復(fù)雜,因此尋找一種儀器便宜,并能簡單、快速檢測(cè)吡喹酮的方法至關(guān)重要。而流動(dòng)注射-化學(xué)發(fā)光法(FI-CL)可滿足以上優(yōu)點(diǎn),此外其還有很高的檢測(cè)靈敏度,在醫(yī)藥[13-15]、環(huán)境[16-17]、食品[18-19]等各個(gè)領(lǐng)域均具有廣泛的應(yīng)用。
本研究發(fā)現(xiàn),Luminol與NaIO4能產(chǎn)生化學(xué)發(fā)光,而吡喹酮可使其化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度顯著降低,且發(fā)光強(qiáng)度與吡喹酮濃度在一定范圍內(nèi)呈線性關(guān)系,基于此建立了測(cè)定吡喹酮的新方法,并成功運(yùn)用于豬飼料中吡喹酮含量的測(cè)定,結(jié)果令人滿意。
RFL-1型超微弱化學(xué)發(fā)光/生物發(fā)光檢測(cè)儀(西安瑞邁分析儀器有限公司),UV-2550型紫外可見分光光度計(jì)(日本島津公司),Cary Eclipse熒光分光光度計(jì)(安捷倫公司)。
Luminol儲(chǔ)備液(1.0×10-2mol/L):稱取0.177 2 g Luminol,用0.1 mol/L NaOH溶液溶解后轉(zhuǎn)入100 mL棕色容量瓶中,用水定容,避光保存,使用前至少放置24 h,使用時(shí)逐級(jí)稀釋;吡喹酮儲(chǔ)備液(1.0×10-3mol/L):稱取0.015 6 g吡喹酮用水溶解并定容后,避光保存,使用時(shí)逐級(jí)稀釋;1.0×10-2mol/L的NaIO4儲(chǔ)備液;實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水均為超純水。
FI-CL流路如圖1所示:蠕動(dòng)泵P1分別輸送Luminol與NaOH溶液,當(dāng)流動(dòng)體系平穩(wěn),化學(xué)發(fā)光信號(hào)穩(wěn)定時(shí),獲得基線信號(hào)Io。吡喹酮和NaIO4溶液以及載流H2O通過蠕動(dòng)泵P2輸送,且吡喹酮溶液及載流H2O通過六通閥V進(jìn)樣,反應(yīng)產(chǎn)生的抑制信號(hào)為Is。分別記錄發(fā)光體系的基線信號(hào)(Io)和抑制信號(hào)(Is),峰高值ΔI=Io-Is。
圖2 魯米諾化學(xué)反應(yīng)的化學(xué)發(fā)光動(dòng)力學(xué)曲線Fig.2 Chemiluminescence kinetic curve of luminol chemical reactionc(Luminol)=4.0×10-4 mol/L;c(NaIO4)=3.0×10-4 mol/L;c(NaOH)=8.0×10-3 mol/L;c(Praziquantel)=2.0×10-7 mol/L
吡喹酮對(duì)Luminol-NaIO4發(fā)光體系的發(fā)光信號(hào)具有很強(qiáng)的抑制作用,其化學(xué)發(fā)光動(dòng)力學(xué)曲線如圖2。由圖可以看出,未加入吡喹酮時(shí),反應(yīng)產(chǎn)生較強(qiáng)的化學(xué)發(fā)光。該化學(xué)發(fā)光反應(yīng)的速度很快,化學(xué)發(fā)光信號(hào)在反應(yīng)開始后1.9 s達(dá)到峰值,發(fā)光強(qiáng)度為5 329;當(dāng)加入吡喹酮后,發(fā)光強(qiáng)度被抑制,化學(xué)發(fā)光信號(hào)反應(yīng)開始后2.3 s達(dá)到峰值,發(fā)光強(qiáng)度為1 908。因此,無論吡喹酮是否加入Luminol-NaIO4化學(xué)發(fā)光體系中,從化學(xué)反應(yīng)開始至達(dá)到峰值的時(shí)間均很短,這表明該體系是一種快速發(fā)光反應(yīng),適合于用FI-CL方法檢測(cè)吡喹酮。
為了考察Luminol-NaIO4-Praziquantel可能的反應(yīng)機(jī)理,進(jìn)行了如下實(shí)驗(yàn):將熒光分光光度計(jì)的光源關(guān)掉,借助流動(dòng)注射技術(shù)分別掃描了Luminol-NaIO4以及含有吡喹酮的Luminol-NaIO4混合溶液的化學(xué)發(fā)光光譜(圖3)。結(jié)果表明:Luminol-NaIO4-Praziquantel與Luminol-NaIO4的最大發(fā)射波長均在425 nm左右,與文獻(xiàn)報(bào)道的Luminol氧化產(chǎn)物—3-氨基鄰苯二甲酸根離子(3-APA*)的最大發(fā)射波長類似[20],這表明無論吡喹酮是否參與反應(yīng),該體系的發(fā)光體始終為激發(fā)態(tài)的3-APA*。
為進(jìn)一步探討吡喹酮對(duì)Luminol-NaIO4體系抑制作用的反應(yīng)機(jī)理,本研究采用紫外-可見分光光度計(jì)分別測(cè)定了溶液不同混合方式的紫外吸收光譜(圖4)。如圖所示,Luminol與NaIO4混合溶液的吸收光譜(曲線d)并不是由Luminol(曲線b)與NaIO4(曲線a)的吸收光譜純粹疊加所形成。Luminol在221、300、347 nm處的吸收峰值降低,NaIO4在194 nm處的吸收峰值消失,說明Luminol與NaIO4發(fā)生了反應(yīng)。當(dāng)向Luminol-NaIO4體系加入吡喹酮溶液時(shí),對(duì)比曲線d和g,兩者吸收峰的位置大致相似,而吡喹酮在201 nm處的吸收峰消失(曲線c),NaIO4在194 nm處(曲線a)的吸收峰消失,Luminol的特征吸收峰略有降低,說明吡喹酮與體系中的NaIO4發(fā)生了反應(yīng),導(dǎo)致其吸收光譜的峰形發(fā)生了變化。
圖3 魯米諾化學(xué)反應(yīng)的化學(xué)發(fā)光光譜Fig.3 Chemiluminescence spectra of luminol chemical reactionsc(Luminol)=5.0×10-3 mol/L;c(NaIO4)=3.0×10-4 mol/L;c(Praziquantel)=1.0×10-4 mol/L;c(NaOH)=0.1 mol/L
圖4 不同溶液的紫外-可見吸收光譜Fig.4 Ultraviolet-Visible absorption spectra of different solutionsc(Luminol)=5.0×10-3 mol/L;c(NaIO4)=3.0×10-4 mol/L;c(Praziquantel)=1.0×10-4 mol/L;c(NaOH)=0.1 mol/L
2.2.1 流路及儀器參數(shù)的選擇為了獲得最佳的化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度,對(duì)不同流路、混合管長度(3~9 cm)以及光電倍增管負(fù)高壓(500~700 V)進(jìn)行考察。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn):當(dāng)采用圖1的流路,且混合管長度為7 cm,光電倍增管負(fù)高壓為550 V時(shí),化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度較大且信號(hào)穩(wěn)定。
2.2.2 流速的選擇試劑的流速會(huì)對(duì)化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度造成一定影響,因此本實(shí)驗(yàn)對(duì)P1泵(1.4~3.0 mL/min)與P2泵(1.3~3.0 mL/min)的流速進(jìn)行了考察。結(jié)果顯示,當(dāng)P1泵的流速在1.4~1.9 mL/min范圍時(shí),發(fā)光強(qiáng)度隨著流速的增加而增加;而當(dāng)流速大于1.9 mL/min時(shí),發(fā)光強(qiáng)度反而下降。實(shí)驗(yàn)表明:Luminol與NaOH混合溶液的進(jìn)樣速率會(huì)直接影響發(fā)光強(qiáng)度的大小,且當(dāng)P1泵的流速為1.9 mL/min時(shí)發(fā)光強(qiáng)度達(dá)到最佳。因此,選擇1.9 mL/min作為P1泵的最佳流速。同理分析可知,當(dāng)P2泵的流速在1.3~2.4 mL/min范圍時(shí),發(fā)光強(qiáng)度隨流速的增加而增加;當(dāng)流速大于2.4 mL/min時(shí),發(fā)光強(qiáng)度反而下降。因此,選擇2.4 mL/min作為P2泵的最佳流速。
2.2.3 化學(xué)發(fā)光試劑的優(yōu)化對(duì)該體系中所有試劑(NaOH、Luminol及NaIO4)的濃度進(jìn)行優(yōu)化。由于介質(zhì)的堿性強(qiáng)弱對(duì)該體系具有重要影響,且不同的堿性介質(zhì)對(duì)發(fā)光強(qiáng)度的作用也不同。實(shí)驗(yàn)配制了相同濃度的NaOH、Na2CO3和NaHCO3等堿性溶液,分別以此3種溶液作為該體系的堿性介質(zhì)。結(jié)果表明,在以NaOH為堿性介質(zhì)時(shí),吡喹酮的化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度相對(duì)穩(wěn)定且檢測(cè)信號(hào)好。因此,實(shí)驗(yàn)選用NaOH作為檢測(cè)體系的堿性介質(zhì)。進(jìn)一步考察不同濃度NaOH(1.0×10-4~2.0×10-2mol/L)對(duì)體系的影響。結(jié)果顯示,初始階段,體系的化學(xué)發(fā)光信號(hào)隨著NaOH濃度的增加而增加,當(dāng)濃度為8.0×10-3mol/L時(shí)化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度達(dá)到最高,隨著NaOH濃度的繼續(xù)增大,化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度反而減小,因此實(shí)驗(yàn)選擇8.0×10-3mol/L作為NaOH的最佳濃度。
Luminol作為化學(xué)發(fā)光反應(yīng)中的發(fā)光劑,其濃度變化也對(duì)該體系的發(fā)光強(qiáng)度、檢測(cè)靈敏度以及線性變化產(chǎn)生直接影響。本實(shí)驗(yàn)考察了Luminol在1.0×10-5~1.0×10-3mol/L濃度范圍內(nèi)的影響。結(jié)果顯示,化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度隨Luminol濃度的增加而增加,當(dāng)其達(dá)到4.0×10-4mol/L后,化學(xué)發(fā)光信號(hào)的強(qiáng)度逐漸趨于平穩(wěn),從試劑的節(jié)約性考慮,選擇Luminol溶液的最佳濃度為4.0×10-4mol/L。
NaIO4作為該實(shí)驗(yàn)體系的氧化劑,其濃度同樣影響著發(fā)光強(qiáng)度。本實(shí)驗(yàn)對(duì)NaIO4在1.0×10-5~1.0×10-3mol/L濃度范圍內(nèi)進(jìn)行了考察。結(jié)果顯示,體系的化學(xué)發(fā)光信號(hào)隨著NaIO4濃度的增大而增大,當(dāng)濃度為3.0×10-4mol/L時(shí)化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度達(dá)到最大,隨著其濃度的繼續(xù)增大,化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度的增加逐漸減緩,因此實(shí)驗(yàn)選擇NaIO4的最佳濃度為3.0×10-4mol/L。
圖5 不同濃度吡喹酮在Luminol-NaIO4體系的流動(dòng)注射信號(hào)Fig.5 Typical flow injection signals for different concentrations of praziquantel in the Luminol-NaIO4 systeminset:linear calibration curve in different praziquantel concentrations
在最佳條件下,考察了不同濃度吡喹酮與相對(duì)化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度(ΔI)的線性關(guān)系。結(jié)果顯示,吡喹酮濃度在4.0×10-8~1.0×10-6mol/L范圍內(nèi)與ΔI呈良好線性關(guān)系,且不同濃度的吡喹酮在Luminol-NaIO4體系中隨時(shí)間的遞增呈逐漸遞減的規(guī)律性變化(圖5)。吡喹酮的檢出限(3σ)為9.9×10-9mol/L,其線性方程為:ΔI=96.48c+84.38(c的單位為10-7mol/L),r2=0.991 1。對(duì)2.0×10-7mol/L的吡喹酮溶液平行測(cè)定11次,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為1.4%。
將本方法與文獻(xiàn)報(bào)道檢測(cè)吡喹酮的方法進(jìn)行比較,由表1可知,與其它方法相比,此方法具有使用儀器簡單、檢測(cè)靈敏度高的優(yōu)點(diǎn)。
表1 不同方法測(cè)定吡喹酮的比較Table 1 Comparison of different methods for determination of praziquantel
* no data
所測(cè)豬飼料樣品均購自周邊農(nóng)貿(mào)市場(chǎng)的,對(duì)購買的豬飼料進(jìn)行前處理[23],然后按照“1.2”方法,將其稀釋至線性范圍內(nèi)進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)以檢驗(yàn)該方法的準(zhǔn)確性(表2)。結(jié)果顯示:按不同濃度進(jìn)行加標(biāo)后,測(cè)得豬飼料中吡喹酮的加標(biāo)回收率為98.5%~100%,RSD為1.6%~2.4%。
表2 豬飼料中吡喹酮含量的測(cè)定結(jié)果(n=7)Table 2 Determination results of praziquantel in pig feed(n=7)
*no data
本文基于吡喹酮對(duì)Luminol-NaIO4化學(xué)發(fā)光體系較強(qiáng)的抑制作用,聯(lián)合流動(dòng)注射技術(shù),建立了一種簡單、快速、靈敏測(cè)定吡喹酮的新方法。該方法的檢測(cè)范圍為4.0×10-8~1.0×10-6mol/L,檢出限為9.9×10-9mol/L,加標(biāo)回收率為98.5%~100%。該方法靈敏度高、分析速度快,可用于豬飼料中吡喹酮含量的測(cè)定。