傅龍龍,周芳,安琪,張開舒,童越,許劍鋒,王曉尉,郭穎,李鴻,袁冬,盧文紅,梁小薇,谷翊群
(1.國家衛(wèi)生計生委科學技術(shù)研究所 國家衛(wèi)生計生委男性生殖健康重點實驗室 男性臨床研究室/北京人類精子庫,北京 100081;2.北京協(xié)和醫(yī)學院研究生院,北京 100730;3.青島大學附屬醫(yī)院生殖中心,青島 266000)
線粒體是精子內(nèi)除細胞核以外,唯一攜帶遺傳物質(zhì)的細胞器;與細胞核的遺傳系統(tǒng)構(gòu)成了一個整體。線粒體DNA(mitochondrion DNA,mtDNA)是一條雙鏈環(huán)狀的DNA,共含有16 569個堿基對,有自己的遺傳系統(tǒng)和自己的蛋白質(zhì)翻譯系統(tǒng),且部分遺傳密碼與核密碼有不同的編碼含義。人類線粒體基因組共編碼了37個基因,編碼13 種蛋白質(zhì),22種tRNA和2種rRNA[1]。這13種蛋白質(zhì)與核DNA編碼蛋白參與線粒體氧化磷酸化,是機體提供能量和物質(zhì)代謝的重要基礎(chǔ)。隨著mtDNA研究的不斷深入,mtDNA成為衡量線粒體功能的重要生物標記物[2];研究者在異常精液中發(fā)現(xiàn)mtDNA突變與缺失[3-5]與男性不育、精液質(zhì)量下降等生殖相關(guān)疾病密切相關(guān)。
精液冷凍是輔助生殖技術(shù)發(fā)展的重要保障:為中重度少弱精子癥男性進行精液凍存,用于后期輔助生殖;凍存志愿者精液,為男方無精子癥夫婦提供精子;為放化療前腫瘤患者、輸精管絕育術(shù)前患者、移植患者等進行自體精液保存,保存生育力[6]。精子冷凍損傷是精子冷凍和復蘇過程中,由于滲透壓改變、細胞內(nèi)外冰晶形成、冷凍保護劑的毒性等因素,不可避免的都會發(fā)生一些物理和化學損傷。冷凍復蘇過程會降低精子質(zhì)量[7-8]:活力下降、受孕率減少,頂體完整性降低,精子線粒體膜電位降低。冷凍損傷是否會引起mtDNA水平的破壞,從而降低精子相關(guān)功能?本研究觀察冷凍保存前后人精子線粒體mtDNA拷貝數(shù)和完整性的變化。
1.精液樣本收集:本研究得到國家衛(wèi)生計生委科學技術(shù)研究所倫理委員會通過,所有志愿者簽署知情同意書。標本來源于北京人類精子庫捐精志愿者,禁欲5~7 d后,手淫法取精留存于消毒干燥取精杯中,置于37℃水浴完全液化后,按照世界衛(wèi)生組織操作指導規(guī)范分析精液。選取符合捐精條件的正式志愿者為研究對象:精子濃度>60×106/ml,前向運動精子(PR)百分比>60%,PR復蘇率>60%。
2.精液分組:收集研究對象精液,待精液完全液化后,每份精液樣品分為2份:1份進行精液冷凍復蘇處理,納入實驗組;1份為新鮮精液,納入研究對照組。
除特殊說明,本實驗采用的相關(guān)試劑均來自于美國Sigma公司。
1.精液冷凍及復蘇:本研究中,實驗組采用北京精子庫精液操作流程進行精液冷凍復蘇[9]:1份體積甘油-卵黃-檸檬酸鹽(自制)冷凍保護劑逐滴加入到2份體積精液中,充分混勻裝入冷凍管,在30~35℃孵育10 min。將冷凍管放入程控冷凍儀中(Planner,英國),進行冷凍降溫。精液于液氮保存2周后復蘇:37℃水浴快速復溫5~10 min。對實驗組和研究對照組精子均進行精子活力、mtDNA拷貝數(shù)和完整性檢測。
2.Markler計數(shù)板聯(lián)合CASA法評估精子活力:采用Makler板(Sefi Instruments,以色列),在400倍光學顯微鏡下最少計數(shù)200個精子。計數(shù)精子總數(shù)和PR精子數(shù),計算精子濃度和PR百分比。并采用計算機輔助精子動態(tài)圖像檢測系統(tǒng)CASA(IVOS,Hamilton Thorn Research,美國)分析運動參數(shù):平均路徑速率(Average path velocity,VAP)、直線速率(Straight-line velocity,VSL)和曲線速率(Curvilinear velocity,VCL)。
3.精子總DNA提?。撼浞只靹蚓汉?,根據(jù)每份標本收集精子數(shù)為20×106個的標準,取相應體積的精液。將所取精液,與PBS液以體積比1∶2的比例進行混勻,1 000 g離心5 min,小心吸取并丟棄上清液。再加入1 ml PBS液,輕柔吹打,重懸精子后,1 000 g離心5 min,并重復兩次。留取精子沉淀團,使用DNA提取試劑盒(北京天根生化)提取精子基因組DNA,稀釋至10 ng/μl,-80°凍存?zhèn)溆谩?/p>
4.實時熒光定量PCR(qPCR)檢測mtDNA拷貝數(shù):選取mtDNA編碼的16SrRNA為目的基因[10],以核編碼β-actin為內(nèi)參基因,半定量檢測mtDNA拷貝數(shù)。兩基因引物由Invitrogen(上海)公司合成,引物序列詳見表1。使用ABI PRISM 7500熒光定量PCR儀(Applied Biosystems,美國)進行擴增,獲得各樣品所擴展基因的CT值、擴增曲線和溶解曲線。擴展反應體系為20 μl:2×UltraSYBR Mixture(With ROX)(北京康為世紀)10 μl、上游引物(10 μmol/L)0.4 μl、下游引物(10 μmol/L)0.4 μl、DNA模板2 μl。擴增程序為:95℃10 min,(95℃15 s,60℃ 60 s)×45個循環(huán)。同時在60~95℃進行溶解曲線分析,根據(jù)溶解曲線圖,評價引物特異性。采用基因的CT值,對mtDNA 拷貝數(shù)進行相對定量[9]:mtDNA拷貝數(shù)=2-△ct,其中△ct=CT16srRNA-CTβ-actin。
表1 引物序列
5.長鏈PCR方法檢測精子mtDNA完整性:采用長鏈PCR方法擴增mtDNA 8 700 bp片段。引物由Invitrogen(上海)公司合成,詳見表1。使用A100 PCR儀擴增,反應體系20 μl:2×Es Taq MasterMix(Dye)10 μl、上游引物(10 μmol/L)0.4 μl、下游引物(10 μmol/L)0.4 μl、DNA模板(10 ng/μl)2 μl,加入滅菌蒸餾水至20 μl。擴增程序為:95℃ 5 min,(95℃ 30 s,62℃ 60 s,72℃ 1 min)×30個循環(huán),72℃延伸5 min。以8 700 bp片段產(chǎn)物評價精子mtDNA的完整性;采用Quantity One v.4.6.2軟件讀取8 700 bp條帶電泳強度值。為了消除mtDNA數(shù)量的影響,將長鏈PCR擴增后的8 700 bp條帶的電泳強度值與相對應的拷貝數(shù)進行標準化處理:電泳強度值/mtDNA拷貝數(shù)。
共納入22例符合北京人類精子庫捐精條件的正式志愿者。納入志愿者年齡為(27.8±3.0)歲,禁欲天數(shù)(6.1±0.9)d。志愿者精液體積為(5.0±1.5)ml,精子濃度(75.8±15.8)×106/ml,前向運動精子百分比為(68±6)%。采用北京精子庫精液操作流程進行精液冷凍,22名志愿者總活動精子復蘇率為(72±8)%。
1.冷凍保存對精子活力影響:冷凍復蘇后前向運動精子百分比顯著降低(P<0.05);冷凍保存后精子活力明顯降低,VSL、VCL和VAP均顯著低于新鮮精液組(P<0.05)(表2)。
2.冷凍保存對人精子mtDNA拷貝數(shù)的影響:按照mtDNA拷貝數(shù)=2-△ct,△ct= CT16srRNA-CTβ-actin,計算各樣本mtDNA拷貝數(shù)。新鮮精液組精子mtDNA拷貝數(shù)為(5.66±5.53),冷凍復蘇組精子mtDNA拷貝數(shù)為(10.12±8.41),配對樣本t檢驗顯示冷凍復蘇組精子mtDNA拷貝數(shù)較新鮮精液精子顯著增加(P<0.05)。
表2 冷凍保存對精子活力及運動參數(shù)量影響
注:與新鮮對照組相比,*P<0.05
3.冷凍保存對人精子mtDNA完整性的影響:以8 700 bp條帶擴展相對強度值計算mtDNA完整性,冷凍復蘇后精子組與新鮮精液精子組無統(tǒng)計學差異[(29.69±15.04)vs.(32.78±16.0),P=0.077],暫不認為冷凍復蘇會降低精子mtDNA的完整性。
精子冷凍保存技術(shù)發(fā)展至今,已有幾十年的歷史,其在輔助生殖技術(shù)中起到了至關(guān)重要的作用,且到目前為止,精液冷凍也是目前唯一有效的男性生育力保存的方式。隨著冷凍方法和冷凍保護劑的不斷改良,精子的存活率有了一定提高,但對精子功能等仍然會造成了一些不可逆轉(zhuǎn)的影響。本研究結(jié)果中也發(fā)現(xiàn),精液冷凍明顯降低精子活力、減少RP百分率、降低精子運動參數(shù)。但活力和形態(tài)的改變,很難全面評估冷凍復蘇后的精子質(zhì)量;因此尋求多指標評價精子質(zhì)量,篩選優(yōu)質(zhì)精子進行后期輔助生殖尤為重要。
凍融后精子遺傳物質(zhì)的改變一直受到相關(guān)領(lǐng)域研究者的關(guān)注[11]。我們團隊早期研究發(fā)現(xiàn)精子冷凍會增加核DNA碎片[12],此后在越來越多的證據(jù)得到相類似結(jié)果[13]。我們對冷凍損傷對人精子DNA甲基化相關(guān)影響也進行相關(guān)探索[9]。
mtDNA是核DNA以外的遺傳物質(zhì),mtDNA拷貝數(shù)和完整性是評價精子功能的重要指標之一。mtDNA拷貝數(shù)與常規(guī)精液參數(shù)如精子濃度、精子總數(shù)、精子活率及正常形態(tài)精子率呈負相關(guān)[4-5,14];它對成功受精和胚胎形成具有極大的重要性,與胚胎發(fā)育密切相關(guān)[15]。mtDNA完整性也與精子質(zhì)量相關(guān)[3-5]:精液質(zhì)量越高,mtDNA完整性越好;精液質(zhì)量越差,mtDNA完整性越差。冷凍技術(shù)是否會對精子mtDNA的完整性和拷貝數(shù)產(chǎn)生影響,鮮有報道。
本研究初步探討了冷凍保存對于人類線粒體DNA完整性和拷貝數(shù)的影響,采用qPCR和長鏈PCR技術(shù)分別檢測冷凍前后精子mtDNA的拷貝數(shù)和完整性,以進一步研究冷凍損傷導致精子功能降低的相關(guān)因素。不同的實驗方法,所測的結(jié)果存在差異[16]。本實驗采用的qPCR不僅可以半定量,而且特異度高,可以排除假基因的干擾;且相比于二次測序技術(shù)[17]操作簡單,對樣本制備和數(shù)據(jù)處理的要求較低,易于大量使用和推廣。本實驗中22例合格供精志愿者新鮮精液mtDNA拷貝數(shù)及完整性檢測結(jié)果,與Zhang等[5]研究結(jié)果相近。精子冷凍復蘇后mtDNA拷貝數(shù)增加,這與卵母細胞冷凍相關(guān)研究相一致[18-19]。本研究通過長鏈PCR測量mtDNA完整性,并在每個精子樣品中用mtDNA拷貝數(shù)歸一化,進行量化比較。但目前結(jié)果暫未發(fā)現(xiàn)凍融后精子mtDNA完整性發(fā)現(xiàn)明顯變化。國內(nèi)蔡學泳等[20]關(guān)于冷凍保存對人類卵母細胞線粒體DNA缺失的研究也發(fā)現(xiàn)卵母細胞mtDNA缺失率和mtDNA拷貝數(shù)在冷凍處理前后均無統(tǒng)計學差異。不同于核DNA的穩(wěn)固,mtDNA多以拷貝的形式存在于線粒體中,且沒有組蛋白的保護,線粒體DNA修復的途徑也并不完善;因此,線粒體中的氧化損傷比細胞核中的氧化損傷高,mtDNA所累積的突變是細胞核基因組的10~50倍[21]。
目前研究認為冷凍復蘇過程中,精子內(nèi)氧自由基和抗氧化劑防御體系平衡的喪失,過量的ROS產(chǎn)生,是引起精子冷凍損傷的重要因素。不同于其他細胞結(jié)構(gòu),成熟精子胞質(zhì)少,且線粒體集中分布于精子中段,所以精子抗氧化能力減弱且缺乏修復能力,極易受到ROS損傷[22]。相關(guān)臨床研究也顯示[23]:ROS會引起精子功能降低與男性不育、女性復發(fā)性流產(chǎn)、兒童先天畸形等生殖相關(guān)疾病,存在密切相關(guān)性。本研究結(jié)果顯示,在捐精合格志愿者人群中,冷凍過程會增加mtDNA拷貝數(shù),但對mtDNA完整性的影響不大??赡艿脑蚴荹20,24]:ROS刺激引起線粒體呼吸鏈功能受損,ATP合成受到抑制,為了彌補損傷后的功能缺陷,拷貝數(shù)代償性增加;但目前冷凍過程中ROS的蓄積,尚未引起mtDNA完整性的改變。
我們研究了現(xiàn)有冷凍復蘇技術(shù)對精子mtDNA拷貝數(shù)和完整性的影響,但受到條件限制,本實驗凍存時間尚未達到臨床保存所需時間要求。后期需要進一步擴大研究人群、增加樣本量、延長冷凍及納入精子參數(shù)相關(guān)性研究,為精子冷凍損傷的機制進行進一步研究。