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      卵泡液中游離線粒體DNA提取和定量方法的研究

      2018-11-15 11:26:44劉宇趙雪鄒敏邵淑敏李嬌張衷源汪文諍張玲
      生殖醫(yī)學(xué)雜志 2018年11期
      關(guān)鍵詞:離心法卵泡線粒體

      劉宇,趙雪,鄒敏,邵淑敏,李嬌,張衷源,汪文諍,張玲,*

      (1.華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院計劃生育研究所,2.華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院生殖醫(yī)學(xué)中心,武漢 430000)

      游離DNA(circulating cell free DNA,cfDNA)是游離于細(xì)胞外的核酸,廣泛存在于血液[1-7]、卵泡液[8-9]、胚胎培養(yǎng)液[10-11]等液體中。血清和血漿中的cfDNA作為一種無創(chuàng)的檢測手段在腫瘤等疾病早期診斷及預(yù)后監(jiān)測中表現(xiàn)出廣闊的應(yīng)用前景。cfDNA包括游離核DNA(circulating cell free nuclear DNA,cfnDNA)和游離線粒體DNA(circulating cell free mitochondrial DNA,cfmtDNA)。線粒體DNA的結(jié)構(gòu)比較簡單且數(shù)量多,因此,cfmtDNA具有成為無創(chuàng)檢測標(biāo)志物的潛力。盡管有不少研究顯示了cfmtDNA與腫瘤的相關(guān)性[12-13],然而,對體液中cfmtDNA的研究尚處于起步階段,其檢測仍然存在很多問題,定量分析缺乏一個統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn),各實驗室的結(jié)果缺乏可比性。因此,本研究擬通過對卵泡液處理和冷凍儲存、不同Q-PCR引物和試劑盒進行分析比較,探索影響卵泡液中cfmtDNA提取和定量的因素,為后續(xù)實驗奠定基礎(chǔ)。

      資料和方法

      一、研究對象

      收集2016年3月~10月在華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院生殖醫(yī)學(xué)中心進行IVF/ICSI的78名患者的1~2個大卵泡液。其中14名患者的卵泡液用于卵泡液處理、冷凍儲存和試劑盒選擇研究;剩余64名患者的卵泡液用于實時熒光定量PCR(Q-PCR)引物的比較研究。納入標(biāo)準(zhǔn):(1)大卵泡(直徑>16 mm的卵泡)的卵泡液;(2)無明顯肉眼可見的血液污染。本研究通過本院倫理委員會批準(zhǔn)([2017]倫審字(S206)號)。

      二、主要試劑和儀器

      1.主要試劑:DNase/RNase-Free Deionized water(北京天根生化科技)、 SYBR Green(Takara,日本)、50 bp DNA ladder(北京天根生化科技)

      2.主要儀器和軟件:StepOne實時熒光定量PCR儀(ABI公司,美國);PCR產(chǎn)物凝膠電泳儀(JY200C,君意東方電泳設(shè)備,北京);臺式低溫離心機(Heofuge 15R,力康生物);凝膠成像系統(tǒng):Biometra BDA Digital(Biometra,德國)

      三、方法

      1.卵泡液的處理:卵泡液用4種方法處理,分別為:(1)一步離心法即3 000g離心15 min;(2)兩步離心法即3 000g離心15 min后16 000g離心10 min;(3)在兩步離心法的基礎(chǔ)上用0.22 μm過濾器過濾;(4)在兩步離心法的基礎(chǔ)上用0.45 μm過濾器過濾;對cfmtDNA的提取量進行比較。

      通過比較卵泡液4種處理方法對cfmtDNA提取量的影響實驗結(jié)果,在后續(xù)實驗中我們均用兩步離心法處理樣本。將IVF/ICSI患者的每人2 ml大卵泡液分成兩份:一份新鮮樣品直接提取cfmtDNA;另一份冷凍24 h后提取cfmtDNA。分別對新鮮及冷凍24 h后提取出來的cfmtDNA進行定量。

      2.DNA提?。悍謩e采用BeaverBeadsTMCirculating DNA 試劑盒和TIANamp Genomic DNA試劑盒進行樣本中cfmtDNA提取。提取方法完全按照試劑盒的說明書進行,用200 μl洗脫液洗脫DNA。

      3.q-PCR:用線粒體編碼的基因ND1[11]和hmito3[15]為引物定量cfmtDNA,hmito3引物設(shè)計參考文獻,并進行驗證,合成委托上海生工生物工程公司,引物序列詳情見表1。

      表1 線粒體編碼的基因ND1和hmito3引物序列

      熒光定量PCR反應(yīng)體系為20 μl,每個q-PCR反應(yīng)包括2 μl cfmtDNA模板、2 μmol/L正向和反向引物和10 μl SYBR Green I的反應(yīng)混合物。qPCR反應(yīng)條件:在95℃孵育30 s,接著在95℃進行5 s的變性,以及60℃ 30 s的退火和72℃ 30 s的延伸,40個循環(huán)。實時定量PCR在StepOne Software v2.3中進行。每個樣本重復(fù)3次。

      4.標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

      (1)標(biāo)準(zhǔn)品的制備:通過普通PCR擴增線粒體編碼的ND1和hmito3基因,產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳進行鑒定并切膠回收測濃度,此時的瓊脂糖凝膠電泳產(chǎn)物即為標(biāo)準(zhǔn)品i。

      (2)絕對定量標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:標(biāo)準(zhǔn)品i通過連續(xù)15次的5倍稀釋得到標(biāo)準(zhǔn)品ii-XVi,將標(biāo)準(zhǔn)品i-XVi分別進行熒光定量PCR分析。熒光定量PCR反應(yīng)體系為20 μl: 2 μl標(biāo)準(zhǔn)品、2 μmol/L正向和反向引物和10 μl SYBR Green I的反應(yīng)混合物;反應(yīng)條件為:在95℃孵育30 s,接著在95℃進行5 s的變性,以及60℃ 30 s的退火和72℃ 30 s的延伸,40個循環(huán)。實時定量PCR在StepOne Software v 2.3中進行。

      四、統(tǒng)計學(xué)處理

      結(jié) 果

      一、線粒體基因引物的特異性、相關(guān)性和絕對定量標(biāo)準(zhǔn)曲線

      兩對引物用于熒光定量PCR以后,均顯示出良好的擴增效果,熔解曲線正常,無引物二聚體和非特異性擴增,引物的特異性好(圖1A、B,圖2A、B)。2%瓊脂糖凝膠電泳圖顯示,ND1和hmito3分別可見139 bp和129 bp的目的條帶(圖1C)。ND1絕對定量標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=-3.78x+5.2715,其中R2=0.9979,擴增效率為83.89%(圖1D);hmito3絕對定量標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=-3.5489x+0.8876,其中R2=0.999 4,擴增效率為91.33%(圖2C)。ND1和hmito3兩個基因的擴增效率好,適用于樣本分析。在同一熒光閾值下,ND1和hmito3引物擴增cfmtDNA所得的濃度平均值分別為(3.49±5.17)ng/L和(0.03±0.02)ng/L,兩對引物濃度平均值之間有顯著性差異(P<0.05),相關(guān)性分析顯示ND1與hmito3良好的相關(guān)性(r=0.63,P<0.000 1),因此在后面的研究中,我們只選擇了其中一種線粒體基因的引物ND1進行定量分析。

      二、新鮮樣本中4種不同的處理方案對卵泡液中cfmtDNA提取量的影響

      4種不同的處理方案下,用線粒體基因ND1去定量卵泡液中cfmtDNA濃度,結(jié)果依次為:(14.34±14.81)ng/L、(3.41±5.04)ng/L、(2.19±2.72)ng/L、(1.58±2.08)ng/L。一步離心法得到的cfmtDNA濃度最高,與其他三種方案相比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);其他3種方案之間cfmtDNA濃度差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)(圖3)。

      圖1 ND1引物的Q-PCR結(jié)果

      A:擴增曲線;B:熔解曲線;C:標(biāo)準(zhǔn)曲線;其中hmito3引物的凝膠電泳圖譜見圖1 C圖2 hmito3引物的Q-PCR結(jié)果

      圖3 新鮮樣本中4種不同的處理方案對卵泡液中cfmtDNA提取量的影響與一步離心法相比,*P<0.05

      三、儲存條件對卵泡液中cfmtDNA提取量的影響

      以ND1為引物對cfmtDNA進行定量,冷凍前樣本中提取到的cfmtDNA濃度為(3.41±5.04)ng/L,冷凍后樣本中cfmtDNA為(2.82±2.40)ng/L,兩者cfmtDNA濃度差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。

      四、兩種不同試劑盒對卵泡液中cfmtDNA提取量的影響

      用ND1定量兩種試劑盒提取卵泡液中cfmtDNA的濃度,BeaverBeadsTMCirculating DNA試劑盒提取卵泡液中cfmtDNA的濃度為(5.17±2.77)ng/L,而TIANamp Genomic DNA試劑盒提取的為(2.79±2.37)ng/L,前者比后者提取到卵泡液中cfmtDNA的量顯著增加(P<0.05)(圖4)。

      圖4 兩種不同的試劑盒提取卵泡液中cfmtDNA的比較與TIANamp Genomic DNA試劑盒相比較,*P<0.05

      討 論

      近年來由于分子生物學(xué)的飛躍發(fā)展,對體液中的cfDNA和cfmtDNA的研究有了長足的進展。線粒體為細(xì)胞活動提供所必需的能量,同時參與細(xì)胞內(nèi)新陳代謝、鈣離子穩(wěn)定[15]、細(xì)胞凋亡和信號傳遞等多種生物過程,能夠較為全面的反映細(xì)胞的功能狀態(tài)。線粒體DNA質(zhì)與量的變化可導(dǎo)致氧化磷酸化異常等線粒體功能不良,在疾病的發(fā)生發(fā)展中起重要的作用。而且,線粒體DNA還具有基因長度短、分子結(jié)構(gòu)簡單及拷貝數(shù)眾多等特點。因此,cfmtDNA具有成為信息量大、敏感性高的血清標(biāo)志物潛力。目前關(guān)于cfmtDNA的研究主要針對血液及其他體液中cfmtDNA與腫瘤的關(guān)系,卵泡液中cfmtDNA的研究尚未見報道。

      我們的研究結(jié)果顯示3 000g離心15 min的條件下卵泡液中cfmtDNA的濃度是最高的,而后3種處理方式下cfmtDNA的濃度差異沒有統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。這與Chiu等[16]人的研究結(jié)果是一致的。他們通過研究循環(huán)線粒體DNA的物理特征發(fā)現(xiàn),不同的離心和過濾方案會影響健康個體血漿中線粒體DNA的定量,可能是由于血漿中存在顆粒相關(guān)(particle-associated)的線粒體DNA和非顆粒相關(guān)(non-particle-associated)的線粒體DNA。一步離心法獲得的卵泡液中cfmtDNA的濃度最高,推測是其中殘留的細(xì)胞碎屑所致。兩步離心法獲得的卵泡液則為一種幾乎無細(xì)胞或細(xì)胞碎屑的液體[17],這種離心方法可取得與過濾類似的效果,所以更建議用兩步離心法。-80℃冰箱冷凍卵泡液對cfmtDNA的提取量沒有影響,表明卵泡液樣本可先放于-80℃冰箱儲存,然后集中進行cfmtDNA的提取。這對于樣本的收集管理以及工作的安排提供了便利。

      熒光定量PCR可以通過檢測熒光信號的變化來測定引物的特異性。在本研究中,線粒體的兩對引物ND1和hmito3用于熒光定量PCR以后,均顯示良好的擴增效果,熔解曲線正常,無引物二聚體和非特異性擴增,引物的特異性好,凝膠電泳也證實目的條帶明顯。ND1為引物所得到的cfmtDNA濃度平均值遠遠大于hmito3引物所得的濃度平均值。hmito3引物擴增cfmtDNA濃度較低可能推測與hmito3在mtDNA中獨特存在有關(guān)。Malik等人[18]研究證實了hmito3是mtDNA獨特的短區(qū)域設(shè)計出來的引物,其不會共擴增任何核假基因。本研究中相關(guān)性分析結(jié)果顯示ND1引物與hmito3引物良好的相關(guān)性(P<0.000 1),說明hmito3和ND1引物均可用于卵泡液中cfmtDNA的定量分析。

      目前,提取cfmtDNA最常用的方法有磁珠法(例如:BeaverBeadsTMCirculating DNA 試劑盒)、硅膠膜離心柱吸附法(例如:TIANamp Genomic DNA試劑盒)等方法。磁珠法充分發(fā)揮了納米與生物技術(shù)的優(yōu)點,利用磁場分離的原理,即磁珠可以特異性的吸附DNA,在外加磁場的作用下,能夠從液體中分離出DNA的方法;優(yōu)點是提取DNA濃度高、純度好,同時省時、快速。硅膠模離心柱吸附法是利用一種特殊的硅基質(zhì)膜吸附材料,選擇性的吸附DNA片段,而RNA、蛋白質(zhì)等物質(zhì)被過濾,最后用洗脫液將DNA片段從濾膜上洗脫下來的方法;優(yōu)點是簡化了核酸的純化過程、操作簡便。我們的研究結(jié)果表明,與硅膠膜離心柱吸附法(TIANamp Genomic DNA試劑盒)相比,用磁珠法(BeaverBeadsTMCirculating DNA 試劑盒)可獲得較高濃度的cfmtDNA,快捷簡便。

      綜上所述,在進行卵泡液中cfmtDNA的提取時,可選用兩步離心法來處理樣本;同時,可以將處理好的樣本凍于-80℃冰箱,待樣本量合適時統(tǒng)一處理。比較硅膠膜離心柱吸附法,磁珠法有助于減少提取過程中的損耗,獲得更多的cfDNA。線粒體編碼的基因ND1和hmito3均可用于cfmtDNA的定量分析,可根據(jù)需要選擇。

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