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      外加CO2對鹽藻生長及碳酸酐酶活性的影響

      2018-03-27 01:11:53穆富香楊代宇白飛妮楊海波詹世平
      水產(chǎn)科學(xué) 2018年2期
      關(guān)鍵詞:碳酸酐酶微藻培養(yǎng)液

      穆富香,楊代宇,白飛妮,汪 瑩,楊海波,于 媛,詹世平

      (大連大學(xué) 環(huán)境與化學(xué)工程學(xué)院,遼寧 大連 116622)

      溫室效應(yīng)是21世紀(jì)人類面臨的最嚴(yán)峻的環(huán)境危機(jī)之一,人類燃燒化石燃料所產(chǎn)生的CO2是引起全球溫室效應(yīng)的最主要物質(zhì)[1]。目前,全球每年排放CO2超過2.5×1010t,中國已達(dá)6×109t,居世界第一位[2],因此,研究CO2的轉(zhuǎn)化和利用具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。

      鹽藻(Dunaliellasalina)光合作用強(qiáng)、生長速度快、適應(yīng)范圍廣,細(xì)胞內(nèi)不僅含有包括人體必需8種氨基酸在內(nèi)的18種氨基酸,同時(shí)含有豐富的蛋白質(zhì)、多糖以及較多的Ca、P、Zn等礦物質(zhì)。在適當(dāng)條件下,累積油脂可達(dá)細(xì)胞干質(zhì)量的40%~50%,合成的β-胡蘿卜素可達(dá)細(xì)胞干質(zhì)量的10%,因此,鹽藻不僅用作魚、蝦、貝等幼體的餌料,而且在食品、醫(yī)療保健、液體燃料、環(huán)境保護(hù)等領(lǐng)域具有重要的應(yīng)用價(jià)值[3-4]。

      1 材料與方法

      1.1 藻種來源

      試驗(yàn)所用鹽藻藻種為大連大學(xué)環(huán)境與化學(xué)工程學(xué)院海洋微藻課題組保存的藻種。

      1.2 儀器和藥品

      EL204電子天平[梅特勒—托利多儀器(上海)有限公司],80-2離心沉淀機(jī)(上海榮泰生化工程有限公司),LD5-2A臺式離心機(jī)(北京醫(yī)用離心機(jī)廠),UV-5200型紫外可見分光光度計(jì)(上海元析儀器有限公司),HH-S恒溫水浴鍋(江蘇金壇市醫(yī)療儀器廠),pHS-2C型精密酸度計(jì)(上海精密科學(xué)儀器有限公司),WY100Y手持式鹽度計(jì)[麥科儀(北京)科技有限公司]等;無水乙醇(天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司),巴比妥(上海篤瑪生物科技有限公司),巴比妥鈉(上海篤瑪生物科技有限公司),均為分析純。

      1.3 試驗(yàn)方法

      1.3.1 微藻培養(yǎng)及CO2通入

      取5 L錐形瓶,分別加入2700 mL滅菌海水(加入氯化鈉調(diào)節(jié)鹽度為65,pH 8.10)和900 mL處在對數(shù)生長期的鹽藻藻液(A650nm=0.106),按1‰的比例加入2.7 mL的康維方營養(yǎng)液[8]。在25 ℃、1800 lx、光暗比為12∶12的條件下培養(yǎng)鹽藻。每天光照階段開始和光照階段結(jié)束時(shí)各搖瓶1次。

      根據(jù)亨利定律,25 ℃時(shí)CO2在純水中的溶解度為1.24×10-5mol/L,pH 5.67[9]。為研究海水中CO2溶解度最大時(shí)鹽藻生長及碳酸酐酶活性變化趨勢,以此為依據(jù)每天在光照階段開始前向鹽藻培養(yǎng)體系中通入CO2至pH恒定不變(測得此時(shí)pH 6.00,表明CO2飽和)。

      試驗(yàn)開始時(shí),每天在光照階段開始前向鹽藻培養(yǎng)液中通入CO2至pH 6.00,開始12 h光照,再繼續(xù)12 h黑暗,直至培養(yǎng)結(jié)束。以未加CO2的滅菌海水中接種的鹽藻培養(yǎng)液為對照。每組試驗(yàn)培養(yǎng)3個(gè)平行樣。

      1.3.2 測定指標(biāo)

      為探究鹽藻對CO2的利用程度及其對鹽藻生長和碳酸酐酶活性的影響,每天分別在光照階段結(jié)束時(shí)取樣測定培養(yǎng)液pH、吸光度、鹽藻細(xì)胞葉綠素含量和碳酸酐酶活性;在黑暗階段結(jié)束時(shí)取樣測定pH和吸光度。

      pH測定:每次取培養(yǎng)藻液30 mL,用pHS-2C型精密酸度計(jì)測定pH值。平行3次。

      生物量測定:試驗(yàn)開始前,先用UV-5200型紫外可見分光光度計(jì)進(jìn)行全波長掃描,確定鹽藻培養(yǎng)液的最大吸收波長為650 nm。試驗(yàn)過程中,每次取培養(yǎng)藻液10 mL,于650 nm波長測定藻液的吸光值,以間接反映鹽藻細(xì)胞的生長。平行測定3次。

      葉綠素含量的測定:參照文獻(xiàn)[10]的方法,每日取光照階段結(jié)束時(shí)的鹽藻培養(yǎng)液500 mL,3000 r/min離心3 min,棄上清液,收集藻泥,分成3份,1份用于測定葉綠素,另外2份用于測定細(xì)胞內(nèi)、外的碳酸酐酶活性。將用于測定葉綠素的藻泥用去離子水清洗3次后按質(zhì)量平均分成3份,用85%的乙醇提取葉綠素,并測定提取液在波長649 nm和665 nm處的吸光度值。按照公式(1)、(2)分別計(jì)算待測液中葉綠素a和葉綠素b的質(zhì)量濃度,按照公式(3)計(jì)算鹽藻細(xì)胞內(nèi)的葉綠素含量。

      Ca=13.95A665-6.88A649

      (1)

      Cb=24.96A649-7.32A665

      (2)

      式中,Ca、Cb分別為待測液中葉綠素a、葉綠素b的質(zhì)量濃度(mg/L),A649、A665分別為649 nm、665 nm處的吸光度值。

      葉綠素含量(濕質(zhì)量)/mg·g-1=CV/m

      (3)

      式中,C為葉綠素質(zhì)量濃度(mg/L),V為藻液體積(L),m為藻泥濕質(zhì)量(g)。

      細(xì)胞內(nèi)外碳酸酐酶活性的測定:參照文獻(xiàn)[11]測定碳酸酐酶活性。取上述操作中獲得的另外2份藻泥,首先將其中的1份按質(zhì)量平均分成3份,立即懸浮于pH為8.30的12 mL巴比妥—巴比妥鈉緩沖溶液中,再加入6 mL在4 ℃冷藏的CO2飽和蒸餾水,用pH計(jì)測量反應(yīng)體系中pH的變化,記錄pH從8.30降至7.30時(shí)所用的時(shí)間,測定細(xì)胞外碳酸酐酶活性。將另外一份藻泥凍融3次破碎細(xì)胞后,再按質(zhì)量平均分成3份,重復(fù)胞外碳酸酐酶測定過程,用于測定細(xì)胞總的碳酸酐酶活性。按照下式計(jì)算碳酸酐酶比活性。

      碳酸酐酶比活性(濕質(zhì)量)/EU·g-1=10×(t0/t1-1)/m

      (4)

      式中,t0為反應(yīng)體系未加藻泥時(shí)pH下降所用的時(shí)間(min),t1是反應(yīng)體系中加入藻泥后pH下降所用的時(shí)間(min),m為藻泥濕質(zhì)量(g)。

      細(xì)胞內(nèi)碳酸酐酶比活性(濕質(zhì)量)/EU·g-1=細(xì)胞總碳酸酐酶比活性-細(xì)胞外碳酸酐酶比活性

      (5)

      1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與方法

      試驗(yàn)數(shù)據(jù)用Excel統(tǒng)計(jì)、處理,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。在采用SPSS 18.0軟件進(jìn)行單因素方差分析的基礎(chǔ)上進(jìn)行Duncan多重比較,顯著水平為P<0.05。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 外加CO2對鹽藻培養(yǎng)體系pH的影響

      按照1.3.1,在滅菌海水中接種處于對數(shù)生長期的鹽藻藻液(A650 nm=0.106),分別測定光照階段結(jié)束和黑暗階段結(jié)束時(shí)培養(yǎng)液的pH,并與未通入CO2的對照組比較,結(jié)果見表1。

      由表1可見,未通入CO2的對照組鹽藻培養(yǎng)液,在整個(gè)培養(yǎng)過程中,光照階段結(jié)束時(shí)和黑暗階段結(jié)束時(shí)的pH均在8.10~8.20,說明鹽藻通過光合作用吸收的CO2和通過呼吸作用釋放的CO2基本處于平衡狀態(tài)。而每天光照階段開始前通入CO2至pH 6.00的鹽藻培養(yǎng)液,第1 d光照階段結(jié)束時(shí)的pH為6.26,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,pH緩慢增大。培養(yǎng)3 d后,pH顯著增加(P<0.05),至培養(yǎng)結(jié)束時(shí)pH約7.04。黑暗階段結(jié)束時(shí)培養(yǎng)液的pH變化與光照階段結(jié)束時(shí)的pH變化趨勢基本一致,且同一天內(nèi)黑暗階段結(jié)束時(shí)的pH比光照階段結(jié)束時(shí)的pH稍有增加。

      表1 外加CO2對鹽藻培養(yǎng)體系pH的影響(平均值±標(biāo)準(zhǔn)差)

      注:各組數(shù)據(jù)之間,同一字母表示差異不顯著(P>0.05),不同字母間表示差異顯著(P<0.05).

      光合作用包括光反應(yīng)和暗反應(yīng)兩個(gè)過程。前者是在葉綠素類囊體膜上高效吸收和傳遞光能,并將其轉(zhuǎn)化為生物能和還原勢能;后者是利用光反應(yīng)轉(zhuǎn)化的生物能及還原勢能固定CO2,并產(chǎn)生碳水化合物[12]。光反應(yīng)必須在光照條件下進(jìn)行,暗反應(yīng)是否有光均可進(jìn)行。

      在前3 d培養(yǎng)時(shí)間內(nèi),生物量增加少,光反應(yīng)較弱,轉(zhuǎn)化的生物能和還原勢能少,導(dǎo)致暗反應(yīng)對CO2的利用少,故培養(yǎng)液的pH上升得少。隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,鹽藻生物量逐漸增多,光反應(yīng)增強(qiáng),為暗反應(yīng)提供了更多的生物能和還原勢能,使其對CO2的利用增強(qiáng),進(jìn)而pH增加明顯。

      由于光合作用的限速步驟是暗反應(yīng)過程的固碳反應(yīng),光反應(yīng)過程通過快速反應(yīng)獲得生物能和還原勢能,而暗反應(yīng)過程通過相對的慢速反應(yīng)固定CO2并釋放生物能。因此,在黑暗過程中CO2被繼續(xù)吸收和轉(zhuǎn)化,使培養(yǎng)液的pH繼續(xù)有所升高。

      2.2 外加CO2對鹽藻生長的影響

      碳是構(gòu)成微藻細(xì)胞組分的重要元素,試驗(yàn)中培養(yǎng)鹽藻所用的康維方營養(yǎng)液中不含有碳元素,鹽藻通過光合作用的暗反應(yīng)過程利用外環(huán)境提供的CO2轉(zhuǎn)化為碳水化合物,促進(jìn)生長繁殖。外加CO2至pH 6.00達(dá)到飽和時(shí)鹽藻培養(yǎng)液的吸光度值隨培養(yǎng)時(shí)間的變化趨勢見圖1。

      圖1 外加CO2對鹽藻生長的影響

      由圖1可見,在通入CO2培養(yǎng)的第1 d內(nèi),鹽藻細(xì)胞處于適應(yīng)階段,吸光度基本沒有增加;2~5 d,培養(yǎng)液的吸光度基本上均呈直線上升,表明鹽藻細(xì)胞處于指數(shù)生長期。未通入CO2時(shí),在培養(yǎng)的前2 d,鹽藻細(xì)胞處于適應(yīng)階段,吸光度基本沒有增加,3~5 d,培養(yǎng)液的吸光度基本上均呈直線上升,鹽藻細(xì)胞處于指數(shù)生長期。培養(yǎng)至第6 d時(shí),兩種體系的鹽藻培養(yǎng)液均進(jìn)入穩(wěn)定期,但通入CO2的吸光度值顯著高于未通入CO2的吸光度值。

      培養(yǎng)1 d后,后一天光照階段結(jié)束時(shí)的吸光度值顯著高于前一天光照階段結(jié)束時(shí)的吸光度值,而同一天黑暗階段(比光照階段推遲12 h)結(jié)束時(shí)的吸光度值僅比光照階段結(jié)束時(shí)的吸光度值略有增加,表明鹽藻主要在光照階段通過光合作用的暗反應(yīng)將CO2固定并轉(zhuǎn)化為細(xì)胞組分,促進(jìn)細(xì)胞分裂和繁殖,增加生物量。這一變化過程與表1中光照階段結(jié)束和黑暗階段結(jié)束時(shí)的pH變化趨勢相一致。

      2.3 外加CO2對鹽藻葉綠素含量的影響

      葉綠素是光合作用的主要色素,在光合作用的光吸收中起核心作用,其含量高低一方面反映微藻光合作用能力的強(qiáng)弱,另一方面可以用來估算浮游植物的生物量[13]。鹽藻中主要含有葉綠素a和葉綠素b[10],試驗(yàn)中測定其含量隨培養(yǎng)時(shí)間的變化,結(jié)果見圖2。

      由圖2可見,隨培養(yǎng)時(shí)間延長,通入CO2和未通入CO2的培養(yǎng)體系中鹽藻細(xì)胞的葉綠素含量均逐漸增加,但通入CO2的鹽藻細(xì)胞中的葉綠素a和葉綠素b含量分別顯著高于未通入CO2的對照組的葉綠素a、b的含量。這與圖1中吸光度增加的趨勢一致。表明CO2的通入,能夠促進(jìn)鹽藻細(xì)胞產(chǎn)生更多的葉綠素進(jìn)行光合作用吸收轉(zhuǎn)化CO2,加快細(xì)胞生長。通入CO2體系和對照體系在同一培養(yǎng)時(shí)間時(shí)葉綠素a含量顯著大于葉綠素b含量。葉綠素a主要吸收紅光,而葉綠素b主要吸收藍(lán)紫光,說明鹽藻細(xì)胞更傾向于吸收紅光。

      圖2 外加CO2對鹽藻葉綠素含量的影響

      2.4 外加 CO2對鹽藻碳酸酐酶活性的影響

      自然海域的海水中CO2濃度約為10 μmol/L[14],為了適應(yīng)水中低CO2環(huán)境并保持較高的光合作用,藻類自身形成了提高CO2濃度的特有途徑,即藻類的CO2濃縮機(jī)制。碳酸酐酶是CO2濃縮機(jī)制的重要組成部分之一,在藻類光合作用中起著重要作用[15]。除對照組的胞內(nèi)碳酸酐酶比活性在培養(yǎng)前3 d基本不變、之后顯著增加外,通入CO2體系的胞內(nèi)、外碳酸酐酶比活性和對照組的胞外碳酸酐酶比活性均隨培養(yǎng)時(shí)間延長而逐漸增多;同一培養(yǎng)時(shí)間兩體系的胞外碳酸酐酶比活性分別高于各自的胞內(nèi)碳酸酐酶比活性。此外,通入CO2的鹽藻培養(yǎng)液中,細(xì)胞內(nèi)、外的碳酸酐酶比活性均顯著高于未通入CO2的對照組中相應(yīng)的碳酸酐酶比活性(圖3)。

      圖3 外加CO2對鹽藻碳酸酐酶的影響

      由表1可知,未通入CO2的對照組鹽藻培養(yǎng)液的pH一直為8.10~8.20,而通入CO2的鹽藻培養(yǎng)液,在每天光照階段開始前通入CO2至溶液pH為6.00,光照階段結(jié)束時(shí)的pH隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,從第1 d的6.26逐漸上升至培養(yǎng)結(jié)束時(shí)的7.04。參考碳酸和HCO3-在水溶液中的分布系數(shù)計(jì)算公式(6)~(7)[16],計(jì)算鹽藻培養(yǎng)液pH在6.00、6.26、7.04、8.20時(shí)碳酸、HCO3-的分布系數(shù),結(jié)果見表2。

      (6)

      (7)

      式中,Ka1=4.5×10-7,Ka2=4.7×10-11。

      表2 不同pH時(shí)碳酸和的分布系數(shù)

      3 討 論

      CO2是微藻光合自養(yǎng)的唯一碳源,但不同微藻所需的最適CO2含量不同,改變其含量會影響微藻生長和細(xì)胞組分的變化[17]。De Morais等[18]發(fā)現(xiàn),凱氏小球藻(Chlorellakessleri)、斜生柵藻(Scenedesmusobliquus)、螺旋藻屬(Spirulina)和普通小球藻(C.vulgaris)4種微藻均在CO2含量為6%時(shí)生長最好;Tang等[19]的研究表明,斜生柵藻在10%的CO2含量下生長最好。范金鳳等[20]研究結(jié)果顯示,二形柵藻(S.dimorphus)可在10%~20%的CO2含量下生長,且CO2含量為10%時(shí)二形柵藻生長最好,此時(shí)pH為6.0~7.0。本試驗(yàn)中外加CO2至飽和時(shí),鹽藻培養(yǎng)液的pH由最初的6.0升至培養(yǎng)結(jié)束7.0,與范金鳳等[20]通入10% CO2的培養(yǎng)液的pH范圍一致,所得結(jié)果也一致,表明鹽藻能夠利用的CO2含量約為10%。

      火電廠煙道氣中的CO2一般為10%~20%[28],因此在鹽藻培養(yǎng)液中通入CO2至飽和,不僅可轉(zhuǎn)化吸收煙道氣中的CO2,為降低大氣中CO2的含量探究有效的利用途徑,而且能提高鹽藻生長速率,進(jìn)而產(chǎn)生更多的生物量用在水產(chǎn)餌料、醫(yī)療保健、食品添加劑、精細(xì)化工品和液體燃料等領(lǐng)域。因此,利用鹽藻轉(zhuǎn)化吸收CO2無論從環(huán)境保護(hù)還是資源利用角度均有重要應(yīng)用價(jià)值。

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