盧 芳,周艷芳△,彭新生,張琛琛,梁嘉強(qiáng)
(廣東醫(yī)科大學(xué):1.病理生理學(xué)教研室;2.藥劑學(xué)教研室,東莞 523808)
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cell,BMSCs)易于分離培養(yǎng)且免疫排斥弱,被廣泛應(yīng)用于干細(xì)胞移植治療等組織工程學(xué)研究[1],然而移植的外源性BMSCs在體內(nèi)損傷部位存活率低、生物分布十分有限,極大地阻礙了其臨床應(yīng)用,因此提高干細(xì)胞移植效率是目前迫切需要解決的問題之一。組蛋白去乙酰化酶(histone deacetylases,HDAC)通過去乙?;揎?,在染色質(zhì)重構(gòu),基因轉(zhuǎn)錄及蛋白質(zhì)功能調(diào)控中起重要作用。最近研究表明,HDAC6參與腦損傷的發(fā)生、發(fā)展,而HDAC6抑制劑tubacin不僅參與腦損傷后抗炎抗凋亡、促進(jìn)神經(jīng)再生等保護(hù)機(jī)制,還可誘發(fā)干細(xì)胞激活并向受損區(qū)域遷移,促進(jìn)腦缺血區(qū)域神經(jīng)和血管新生[2-3]。本研究利用AFM對tubacin處理后的BMSC形貌和表面超微結(jié)構(gòu)進(jìn)行觀察,以期更深入地了解tubacin對BMSC形態(tài)結(jié)構(gòu)的改變及其與細(xì)胞遷移之間的關(guān)系。
1.1材料
1.1.1實(shí)驗(yàn)動物 幼年雄性清潔級SD大鼠2只,體質(zhì)量約80~100 g,用于BMSCs原代培養(yǎng)(由南方醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供)。第4代細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。
1.1.2主要試劑及儀器 原子力顯微鏡(AFM,NanoScope-V,Veeco instruments,美國),倒置熒光顯微鏡(Olympus,日本),細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo Scientific,美國),DMEM/F12液體培養(yǎng)基,胎牛血清,胰蛋白酶(Gibco,美國),tubacin(Sigma,美國),戊二醛(南京森貝伽生物科技有限公司)。
1.2方法
1.2.1BMSCs的分離及培養(yǎng) 大鼠頸椎脫臼處死,浸泡于75%乙醇消毒20 min。無菌操作原則下迅速剝離雙側(cè)脛骨及股骨,清除殘余肌肉和結(jié)締組織,保持骨膜及干骺端完整。無菌磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗3遍后剪去雙側(cè)干骺端,用5 mL一次性注射器抽取DMEM培養(yǎng)基反復(fù)沖洗骨髓腔,盡量將骨髓組織全部沖出。隨后將骨髓組織沖洗液移入15 mL離心管,1 000 r/min離心10 min,棄上清。加入含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)液5 mL,輕輕吹打混勻后接種于細(xì)胞培養(yǎng)瓶內(nèi),置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。48 h后首次全量換液,保留貼壁細(xì)胞,之后隔天換液,當(dāng)貼壁細(xì)胞達(dá)到80%~90%融合時,用0.25%胰酶消化,1 000 r/min離心5 min后按1∶2比例進(jìn)行傳代培養(yǎng)。
1.2.2四甲基偶氮唑藍(lán)(MTT)法檢測tubacin對BMSCs活力的影響 取指數(shù)生長期的BMSCs,0.25%胰酶消化離心收集細(xì)胞,用含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基稀釋成2×104/mL的細(xì)胞懸液,96孔培養(yǎng)板內(nèi)每孔加入100 μL細(xì)胞懸液,計(jì)數(shù)每孔約含細(xì)胞2 000個,設(shè)置調(diào)零組,對照組,不同濃度(0.25、0.50、0.75、1.00、2.00 μmol/L tubacin)藥物處理組,每組各設(shè)5個復(fù)孔。待細(xì)胞貼壁后吸出培養(yǎng)基,各組添加含不同濃度tubacin的培養(yǎng)基200 μL,陰性對照組添加相同體積的無血清培養(yǎng)基,置于培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,每孔加入20 μL濃度5 g/L 的MTT溶液繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸去上清,每孔加200 μL二甲基亞砜(DMSO),結(jié)晶溶解后在波長490 nm的酶標(biāo)免疫檢測儀上測定各孔光吸收(A)值。按照公式計(jì)算細(xì)胞存活率:細(xì)胞存活率(%)=[(As-Ab)/(Ac-Ab)]×100%,As:實(shí)驗(yàn)孔吸光度值;Ac:對照孔吸光度值;Ab:空白孔吸光度值。
1.2.3AFM樣品制備與成像 收集生長良好的第4代BMSCs,調(diào)整密度至2×105/mL接種于35 mm的細(xì)胞培養(yǎng)皿,待細(xì)胞貼壁后各組分別加入含不同濃度tubacin的培養(yǎng)基,24 h后棄去培養(yǎng)基,PBS洗2次后用1%戊二醛固定細(xì)胞10 min,隨后PBS洗3次,最后三蒸水洗滌2次,室溫自然晾干。AFM在空氣中采用接觸模式對樣品進(jìn)行觀察,ScanAsyst成像,Scanasyst-Air型探針,設(shè)置256個采樣點(diǎn),掃描速率為0.7 Hz。AFM圖像全部經(jīng)過自帶軟件(Nanoscope Analysis)平滑處理,以消除掃描方向上的低頻背景噪音。AFM力譜用于分析力曲線計(jì)算楊氏模量,所有力曲線都在同一加載速率測得。
2.1BMSCs的原代培養(yǎng)及形態(tài)學(xué)觀察 骨髓細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶后,細(xì)胞呈圓形,大小不一,胞體透亮懸浮于培養(yǎng)液中,首次換液后觀察到部分細(xì)胞開始貼壁,呈圓形、梭形或多角形,以后貼壁細(xì)胞逐漸增多,6 d左右細(xì)胞融合80%~90%。消化傳代12 h后大部分細(xì)胞貼壁,鏡下觀察BMSCs多呈長梭形或星形,細(xì)胞質(zhì)豐富,核大而清晰,折光性好。細(xì)胞生長旺盛,每5天可傳代1次,經(jīng)過第1、2次傳代后,細(xì)胞呈放射狀或漩渦狀同向排列,形態(tài)趨于一致,見圖1。
A:原代培養(yǎng)第4天;B:原代培養(yǎng)第6天;C:第3代細(xì)胞;D:第4代細(xì)胞
圖1不同時期的BMSC形態(tài)學(xué)觀察(×40)
圖2 不同濃度tubacin作用于BMSC 24 h后的細(xì)胞存活率
A、D:對照組;B、E:0.25 μmol/L tubacin組;C、F:0.50 μmol/L tubacin組
圖3 BMSC的二維、三維形貌圖
A、D:對照組;B、E:0.25 μmol/L tubacin組;C、F:0.50 μmol/L tubacin組
圖4 BMSC高度直徑圖
A、D、G:對照組;B、E、H:0.25 μmol/L tubacin組;C、F、I:0.50 μmol/L tubacin組
圖5 BMSC超微結(jié)構(gòu)及膜表面粒徑分布圖
2.2MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果 與對照組相比,tubacin處理24 h后細(xì)胞存活率顯著提高,以0.50 μmol/L tubacin組作用最為明顯,存活率高達(dá)180%,當(dāng)tubacin濃度提高到1.00 μmol/L以上時,細(xì)胞存活率下降,結(jié)果差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。MTT結(jié)果表明,低濃度tubacin具有促BMSC增殖作用,因此,本實(shí)驗(yàn)選擇0.25 μmol/L和0.50 μmol/L的tubacin作下一步細(xì)胞預(yù)處理,見圖2。
2.3BMSC的AFM觀察 AFM不僅有納米級的高分辨率,而且能在高分辨率基礎(chǔ)上觀察樣品的三維結(jié)構(gòu)。應(yīng)用AFM獲得低濃度tubacin 預(yù)處理細(xì)胞的二維和三維圖像,見圖3。根據(jù)隆起的邊緣可清楚辨別細(xì)胞位置和細(xì)胞質(zhì)界限,BMSC以梭形為主,胞核大而清晰,絲狀偽足形成毗鄰細(xì)胞之間的網(wǎng)狀連接。圖4顯示對照組細(xì)胞直徑為43.7 μm,高度在20~100 nm之間,0.25 μmol/L tubacin處理組細(xì)胞直徑為70.4 μm,高度在50~200 nm之間,0.50 μmol/L tubacin處理組細(xì)胞直徑為81.4 μmol/L,高度在80~200 nm之間。結(jié)果顯示,隨著tubacin濃度的增加,細(xì)胞變得更狹長,擁有更長而豐富的偽足。圖5A~F為BMSC膜表面5 μm×5 μm的超微結(jié)構(gòu)圖。對照組細(xì)胞膜表面粗糙不平整,有明顯孔洞和凹陷,表面顆粒分布不均,堆積松散,高度多集中在50~200 nm(圖5G)。隨著tubacin濃度的增加,細(xì)胞表面更為光滑,顆粒分布均勻,大小在10~600 nm(圖5H、I),表面顆粒連接緊密,或成團(tuán)聚集(圖5B),或呈條索狀排列(圖5C)。各實(shí)驗(yàn)組分別選取10個1 μm×1 μm的膜表面超微結(jié)構(gòu)區(qū)域,用NanoScope Analysis軟件進(jìn)行測量,得到各組細(xì)胞膜表面粗糙度,結(jié)果顯示tubacin處理組的細(xì)胞膜表面均方根粗糙度(Rq)及平均粗糙度(Ra)較對照組明顯降低,見表1、圖6。AFM可測量力-距離曲線用于分析各實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞膜的機(jī)械性能,本實(shí)驗(yàn)測量的區(qū)域?yàn)? μm×1 μm,每個區(qū)域測量256條力曲線,每個細(xì)胞測量5個不同區(qū)域,各組分別測量10個細(xì)胞并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。楊氏模量反映細(xì)胞膜表面的剛性,楊氏模量越大,細(xì)胞越不易發(fā)生形變。圖6為各組細(xì)胞楊氏模量對比,隨著tubacin濃度的增加,楊氏模量逐漸增大,說明與對照組相比,tubacin處理后細(xì)胞骨架排列更為緊密,抗形變能力增強(qiáng),可承受更多的機(jī)械應(yīng)力。
表1 各組BMSC膜表面Rq及Ra統(tǒng)計(jì)
a:P<0.05,與對照組比較
a:P<0.05,與對照組比較
圖6 BMSCs膜表面粗糙度
A:對照組;B:0.25 μmol/L tubacin組;C:0.50 μmol/L tubacin組
圖7楊氏模量統(tǒng)計(jì)分布圖
近年來,大量研究證實(shí)HDAC在細(xì)胞增殖分化中發(fā)揮重要作用[4-5],HDAC6是HDACs家族中最獨(dú)特的成員,擁有2個鋅指催化結(jié)構(gòu)域,可特異性催化非組蛋白底物,參與調(diào)節(jié)眾多生理病理進(jìn)程。在胞內(nèi),HDAC6通過與α微管蛋白(α-tubulin)、皮層肌動蛋白(cortactin)、熱休克蛋白90(HSP90)等底物蛋白相互作用,參與調(diào)節(jié)細(xì)胞運(yùn)動[6]。
細(xì)胞的形貌結(jié)構(gòu)與其生理狀態(tài)和功能密切相關(guān),細(xì)胞膜上分布的糖類、蛋白質(zhì)和脂質(zhì)等各類生物大分子,不僅保持著細(xì)胞膜的完整性,還負(fù)責(zé)傳遞細(xì)胞信號,參與調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化及細(xì)胞間相互作用[7],膜結(jié)構(gòu)的改變被認(rèn)為與細(xì)胞遷移、黏附密切相關(guān)[8-9]。本研究中,經(jīng)tubacin處理的BMSC呈長梭形延伸鋪展,擁有更豐富的偽足,這既有利于細(xì)胞間的信息傳遞,又能增加細(xì)胞與基底接觸面積,從而增強(qiáng)細(xì)胞的運(yùn)動能力[10]。膜表面粗糙度也是細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的重要參數(shù),它被證實(shí)與細(xì)胞骨架的完整性有關(guān)[11]。本研究中,tubacin處理后的細(xì)胞膜表面顆粒高度增加,粗糙度下降,這可能是細(xì)胞膜表面蛋白質(zhì)等大分子增加和細(xì)胞內(nèi)部骨架重新排列共同作用的結(jié)果。
細(xì)胞遷移是一個高度復(fù)雜的過程,首先細(xì)胞運(yùn)動前端向遷移方向伸出偽足,與基質(zhì)黏附并向前移動,同時細(xì)胞后緣回縮,與基質(zhì)分離,這幾個步驟循環(huán)重復(fù),同時細(xì)胞內(nèi)部不斷進(jìn)行骨架重排,結(jié)構(gòu)不斷發(fā)生變化[12-13]。細(xì)胞硬度可直接反應(yīng)細(xì)胞骨架的構(gòu)成,硬度高的細(xì)胞內(nèi)部骨架排列更為緊密,在遷移過程中可承受更大外力并保持細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)的有序性[14]。此外,增加硬度還能為細(xì)胞運(yùn)動時的伸展、回縮提供更強(qiáng)大驅(qū)動力,幫助維持運(yùn)動方向,增強(qiáng)細(xì)胞遷移能力[15]。AFM力學(xué)檢測結(jié)果表明tubacin處理組細(xì)胞楊氏模量更大,硬度增加,機(jī)械性能增強(qiáng),有助于提升細(xì)胞遷移效率。
本研究結(jié)果提示,低濃度tubacin可促進(jìn)BMSC增殖,引起細(xì)胞形貌及膜表面超微結(jié)構(gòu)改變,增強(qiáng)細(xì)胞機(jī)械性能,有助于提高細(xì)胞移植治療效率。本課題組將進(jìn)一步檢測低濃度tubacin對BMSC遷移、黏附能力的影響及其潛在作用機(jī)制,為干細(xì)胞移植療法提供新思路。
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