全 靜,王 春,李寶林,劉靳波
(1.西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科,四川瀘州 646000;2.四川省瀘州市中醫(yī)醫(yī)院檢驗(yàn)科 646000)
核仁磷酸蛋白(nucleophosmin,NPM)主要定位于細(xì)胞的核仁顆粒區(qū),屬核質(zhì)穿梭蛋白,它廣泛存在于各種組織細(xì)胞中,結(jié)構(gòu)高度保守,是一種重要的伴侶分子[1]。A型突變(NPM mutant A,NPM mA)是NPM最為常見的突變類型,占75%~80%[2]。白血病是一組造血干細(xì)胞的惡性克隆增殖性疾病,在治療上具有明顯的異質(zhì)性,NPM突變?cè)谂R床上與白血病發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[3]。研究表明,突變后的NPM蛋白可攜帶抑癌蛋白p19ARF[4]、NF-kappa B[5]、c-myc[6]等核內(nèi)蛋白發(fā)生胞質(zhì)移位,通過(guò)影響其穩(wěn)定性從而促進(jìn)白血病細(xì)胞的惡性增殖。白血病發(fā)生、發(fā)展中存在蛋白激酶B(protein kinase B,AKT) 信號(hào)通路的過(guò)度激活,與白血病細(xì)胞存活、轉(zhuǎn)化和黏附等生物學(xué)功能密切相關(guān)[7]。本研究旨在探討外源性NPM mA與AKT的相互關(guān)系,以及NPM mA對(duì)AKT的亞細(xì)胞定位的影響,并進(jìn)一步觀察NPM mA與AKT對(duì)白血病細(xì)胞增殖的意義,從而深入認(rèn)識(shí)NPM突變蛋白在白血病發(fā)生、發(fā)展中的機(jī)制。
1.1質(zhì)粒與細(xì)胞 MSCV-IRES-GFP、MSCV-Flag-NPM wt和MSCV-Flag-NPM mA質(zhì)粒由美國(guó)圣猶大兒童研究醫(yī)院惠贈(zèng),HA-AKT、pEnvelope 和 pHelp質(zhì)粒由美國(guó)安德森癌癥研究中心惠贈(zèng),人慢性粒細(xì)胞白血病細(xì)胞株K562和人胚腎HEK293T細(xì)胞株購(gòu)于中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。
1.2藥品與試劑 胎牛血清(FBS,上海普飛生物技術(shù)有限公司);RPMI 1640、DMEM培養(yǎng)基(Gibco-BRL公司);LipofectamineTM2000(Invitrogen公司);兔抗人NPM mA單克隆抗體(Abcam公司);小鼠抗人NPM單克隆抗體、Protein A/G beads(Santa Cruz公司);小鼠抗Flag標(biāo)簽抗體、小鼠抗HA標(biāo)簽抗體、兔抗人AKT單克隆抗體(Cell Signal Technology公司);小鼠抗人β-actin單克隆抗體、FITC標(biāo)記山羊抗兔IgG、Alexa Fluor?594山羊抗鼠IgG、山羊抗兔二抗、山羊抗鼠二抗(北京中杉金橋公司);苯甲基磺酰氟(PMSF)蛋白酶抑制劑(德國(guó)Roche公司);AKT抑制劑(AKT inhibitor Ⅳ,AKT Ⅳ;Calbiochem公司);CCK8試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司)。
1.3方法
1.3.1細(xì)胞培養(yǎng) HEK293T細(xì)胞用含10% FBS的DMEM培養(yǎng)基,K562細(xì)胞用含10% FBS的RPMI 1640培養(yǎng)基,培養(yǎng)于5% CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.3.2細(xì)胞轉(zhuǎn)染 已知NPM1基因是雜合性突變,人K562和HEK293T細(xì)胞株均存在野生型NPM蛋白,不存在NPM mA。本研究中K562細(xì)胞設(shè)立空載體轉(zhuǎn)染對(duì)照組(K562 c1)、野生組(K562 wt)和突變組(K562 mA)。采用LipofectamineTM2000轉(zhuǎn)染試劑將空載體MSCV-IRES-GFP(vector)和實(shí)驗(yàn)質(zhì)粒MSCV-Flag-NPM wt(Flag-NPM wt)、MSCV-Flag-NPM mA(Flag-NPM mA)連同 pEnvelope及pHelper輔助載體分別共轉(zhuǎn)染HEK293T 細(xì)胞。培養(yǎng)6 h后更換含有10% FBS 的DMEM培養(yǎng)基,于24、48 h收集上清液,經(jīng)0.45 μm 濾器過(guò)濾收獲病毒液。將K562細(xì)胞接種于6孔板,加入制備好的病毒液,同時(shí)加入終濃度為8 mg/mL 的聚凝胺,擴(kuò)大培養(yǎng)進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.3.3Western blot 收集細(xì)胞,用含100 mmol/L PMSF的細(xì)胞裂解液[10 mmol/L Tris鹽酸(pH 7.4),5 mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),150 mmol/L NaCl,1%曲拉通X-100(Triton X-100),250 mmol/L原釩酸鹽,20 mmol/L b-甘油磷酸]充分裂解提取細(xì)胞總蛋白。取60 μg蛋白用12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離,通過(guò)濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移到聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上,5%脫脂奶粉常溫封閉2 h后加一抗(1∶2 000稀釋)4 ℃孵育過(guò)夜,Tris鹽酸吐溫緩沖液(TBST) 洗滌10 min×2次,Tris鹽酸緩沖液(TBS)洗滌10 min,加二抗(1∶1 000稀釋)室溫孵育1 h ,洗滌后用化學(xué)發(fā)光顯色試劑進(jìn)行顯色。實(shí)驗(yàn)設(shè)β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)為內(nèi)參,結(jié)果采用Quantity One軟件進(jìn)行分析。
1.3.4免疫共沉淀(Co-IP) 收集細(xì)胞,提取總蛋白,將細(xì)胞裂解液用E1A試劑[0.1% NP-40,50 mmol/L HEPES(pH 7.5),250 mmol/L NaCl,5 mmol/L EDTA]定至1 mL體積,加入1 μg抗AKT的單克隆抗體,4 ℃緩慢旋轉(zhuǎn)孵育過(guò)夜。次日加入50 μL Ptotein A/G 磁珠(beads),4 ℃緩慢旋轉(zhuǎn)孵育4 h,3 000 r/min離心2 min,將beads離心至管底后棄上清。用E1A試劑反復(fù)清洗beads,3 000 r/min離心2 min去除上清液,再用30 μL 2倍濃度的上樣緩沖液重懸,95 ℃煮沸5 min使蛋白復(fù)合物變性,13 000 r/min離心2 min取上清進(jìn)行SDS-PAGE。
1.3.5免疫熒光 取轉(zhuǎn)染后的HEK293T細(xì)胞制備成1×106的單細(xì)胞懸液,取100 μL 接種于12孔板中的滅菌蓋玻片上,于5% CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h 后棄去培養(yǎng)液,用PBS輕輕洗3次,4%多聚甲醛固定20 min,PBS洗3次。0.1% Triton X-100透膜10 min,用10%山羊血清室溫封閉30 min,加封閉液稀釋的單克隆一抗(1∶100) 置4 ℃冰箱過(guò)夜。PBS洗3次,加入熒光標(biāo)記的二抗(1∶200),37 ℃避光孵育1 h,PBS洗3次后4′6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)避光染色5 min,最后用甘油封片。熒光顯微鏡下觀察熒光信號(hào)的分布情況。
1.3.6CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞增殖能力 收集轉(zhuǎn)染后的各組K562細(xì)胞,分別用低劑量AKT Ⅳ或者等劑量二甲基亞砜(DMSO)處理白血病細(xì)胞,制成細(xì)胞懸液接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,5% CO2的37 ℃恒溫培養(yǎng)箱孵育,培養(yǎng)0、12、24、36、48、60、72 h每孔加入10 μL CCK-8(5 mg/mL)溶液,繼續(xù)培養(yǎng)1 h,在A450 nm波長(zhǎng)處測(cè)量各孔的光密度(OD)值。以O(shè)D值為縱坐標(biāo),時(shí)間為橫坐標(biāo)用SigmaPlot12.0軟件繪制生長(zhǎng)曲線。
2.1K562細(xì)胞中NPM mA與AKT的相互關(guān)系 分別轉(zhuǎn)染vector、Flag-NPM wt、Flag-NPM mA于K562細(xì)胞中,采用Co-IP檢測(cè)NPM mA與AKT的結(jié)合作用。用抗AKT的單克隆抗體沉淀蛋白復(fù)合物后電泳轉(zhuǎn)膜,用Flag抗體進(jìn)行免疫印跡分析。Western blot結(jié)果表明,K562 mA組在相對(duì)分子量32×103附近檢測(cè)到NPM mA蛋白,見圖1。上述結(jié)果提示K562細(xì)胞中NPM mA蛋白能與AKT結(jié)合。
Western blot檢測(cè)Co-IP蛋白復(fù)合物中的flag-NPM mA蛋白,WCE:全細(xì)胞裂解液
圖1外源性NPM、NPM mA與AKT的相互作用
2.2外源性NPM mA對(duì)AKT亞細(xì)胞定位的影響 在HEK293T細(xì)胞中分別轉(zhuǎn)染HA-AKT和Flag-NPM mA,熒光染色后觀察目標(biāo)蛋白在細(xì)胞中的分布情況。結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染HA-AKT的293T細(xì)胞,細(xì)胞核和細(xì)胞漿可見很強(qiáng)的HA-AKT特異性熒光,轉(zhuǎn)染Flag-NPM mA的293T細(xì)胞在細(xì)胞核和細(xì)胞漿均可見熒光信號(hào),而熒光信號(hào)主要集中于細(xì)胞胞質(zhì)區(qū)域,見圖2A。此外,共同轉(zhuǎn)染Flag-NPM mA和HA-AKT到HEK293T細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)帶紅色熒光的NPM mA主要分布于細(xì)胞胞質(zhì)區(qū)域,而帶綠色熒光的AKT蛋白也在細(xì)胞的胞質(zhì)區(qū)域累積,提示移位到胞質(zhì)的NPM突變蛋白可能與AKT蛋白共同定位于胞質(zhì)中,見圖2B。
A:HEK293T細(xì)胞中Flag-NPM mA和HA-AKT蛋白的亞細(xì)胞定位;B:共同轉(zhuǎn)染后Flag-NPM mA和AKT蛋白的亞細(xì)胞定位;HA-AKT、Flag-NPM mA呈紅色熒光,AKT呈綠色熒光,細(xì)胞核DAPI染色呈藍(lán)色熒光,MERGE為融合圖像
圖2外源性NPM mA與AKT的亞細(xì)胞定位(×400)
A: CCK-8法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后各組K562細(xì)胞的體外增殖能力,Western blot圖為轉(zhuǎn)染后K562細(xì)胞中NPM和NPM mA的表達(dá)情況;a:P<0.01,與K562 c1組和K562 wt組比較;B:CCK-8法檢測(cè)AKT Ⅳ處理后各組K562細(xì)胞的體外增殖能力;b:P<0.01,與K562 c1+AKT Ⅳ組和K562 wt+AKT Ⅳ組比較
圖3過(guò)表達(dá)NPM mA聯(lián)合AKT Ⅳ對(duì)K562細(xì)胞體外增殖的影響
2.3外源性NPM mA與AKT對(duì)白血病細(xì)胞增殖的意義 圖3A中結(jié)果顯示,K562 mA組和K562 wt組與 K562 c1組相比NPM表達(dá)量上升,僅K562 mA組表達(dá)NPM mA。CCK-8法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后K562細(xì)胞不同時(shí)間的生長(zhǎng)曲線變化情況。結(jié)果顯示,72 h后K562 mA組相對(duì)于K562 c1組和K562 mA組細(xì)胞體外增殖能力明顯增強(qiáng)(P<0.01),見圖3A。觀察AKT Ⅳ處理后各組細(xì)胞的體外增殖能力,結(jié)果發(fā)現(xiàn),48 h后K562 wt組和K562 c1組體外增殖能力明顯被抑制,K562 mA組細(xì)胞仍能維持生長(zhǎng),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義意義(P<0.01),見圖3B。
NPM基因突變對(duì)白血病細(xì)胞的惡性轉(zhuǎn)化具有重要調(diào)控作用[8]。NAKAGAWA等[9]提出,NPM C末端色氨酸對(duì)NPM的核仁定位起主要作用,突變的NPM C末端存在額外的NES核輸出序列,可導(dǎo)致NPM移位到細(xì)胞胞質(zhì)。NPM突變并胞質(zhì)移位后,ARF/p53的穩(wěn)定性降低,癌蛋白c-myc活性增強(qiáng)從而導(dǎo)致細(xì)胞惡性增殖[10-11]。目前的機(jī)制研究多集中于NPM突變后對(duì)核仁蛋白活性的改變,聚積在胞質(zhì)中的NPM對(duì)胞質(zhì)蛋白的影響少有報(bào)道。AKT是調(diào)節(jié)造血的中央樞紐,可以通過(guò)多種途徑影響白血病細(xì)胞的增殖與凋亡。既往研究發(fā)現(xiàn),OCI/AML3細(xì)胞中天然攜帶的NPM mA能夠與AKT相互結(jié)合,并可能參與調(diào)控細(xì)胞的增殖[12]。本研究進(jìn)一步探討外源性的NPM mA與AKT的相互作用,觀察外源性NPM mA對(duì)AKT的亞細(xì)胞定位的影響,進(jìn)一步檢測(cè)外源性NPM mA與AKT對(duì)白血病細(xì)胞增殖的意義。
采用Co-IP檢測(cè)NPM mA與AKT的結(jié)合作用,結(jié)果顯示,K562 mA組在相對(duì)分子質(zhì)量32×103附近檢測(cè)到了NPM mA的蛋白條帶,說(shuō)明NPM mA能與AKT結(jié)合。FALINI等[13]將突變的NPM轉(zhuǎn)染到NIH3T3細(xì)胞發(fā)現(xiàn),突變的NPM蛋白主要聚集在胞質(zhì)中。本研究熒光染色結(jié)果顯示,NPM mA主要集中分布于胞質(zhì),此結(jié)果與FALINI等[13]研究一致。而AKT彌散分布于細(xì)胞中,當(dāng)共同轉(zhuǎn)染NPM mA和AKT到HEK293T細(xì)胞后,AKT的定位發(fā)生改變,由彌散分布轉(zhuǎn)移至細(xì)胞胞質(zhì)。此結(jié)果說(shuō)明,NPM發(fā)生突變后,突變的NPM蛋白可能攜帶AKT發(fā)生了轉(zhuǎn)移并最終改變了AKT的亞細(xì)胞定位。
為了觀察外源性NPM mA與AKT對(duì)白血病細(xì)胞生物學(xué)效應(yīng)的影響,本研究選擇不攜帶NPM 突變基因的K562 細(xì)胞作為研究載體,通過(guò)慢病毒轉(zhuǎn)染使K562細(xì)胞表達(dá) NPM mA 蛋白。CCK-8法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后K562細(xì)胞的體外增殖能力,結(jié)果發(fā)現(xiàn)K562 mA組細(xì)胞相對(duì)于K562 c1組和K562 wt組細(xì)胞體外增殖能力明顯增強(qiáng),此結(jié)果在本課題組以往的研究中亦有闡述[14]。AKT Ⅳ可抑制AKT的磷酸化激活。本研究中,采用低劑量AKT Ⅳ處理48 h后,K562 wt組和K562 c1組體外增殖能力被明顯抑制,K562 mA組細(xì)胞仍能維持生長(zhǎng),提示NPM mA能通過(guò)AKT調(diào)控K562細(xì)胞的體外惡性增殖。
綜上所述,本研究證實(shí)外源性的NPM mA能夠與AKT結(jié)合并改變AKT的亞細(xì)胞定位,且NPM mA能通過(guò)AKT調(diào)控K562細(xì)胞的體外惡性增殖。進(jìn)一步研究將繼續(xù)探討胞質(zhì)NPM mA對(duì)AKT活性的調(diào)控方式及對(duì)AKT下游信號(hào)分子的影響,而NPM mA對(duì)胞質(zhì)中其他蛋白活性的影響亦是值得研究的方向。深入探討NPM突變蛋白在白血病發(fā)生、發(fā)展中的機(jī)制,將為闡明白血病的致病機(jī)制提供新的理論依據(jù)。
[1]FALINI B,BOLLI N,LISO A,et al.Altered nucleophosmin transport in acute myeloid leukaemia with mutated NPM1:molecular basis and clinical implications[J].Leukemia,2009,23(10):1731-1743.
[2]RAU R,BROWN P.Nucleophosmin(NPM1) mutations in adult and childhood acute myeloid leukaemia:towards definition of a new leukaemia entity[J].Hematol Oncol,2009,27(4):171-181.
[3]SCHNITTGER S,KERN W,TSCHULIK C,et al.Minimal residual disease levels assessed by NPM1 mutation-specific RQ-PCR provide important prognostic information in AML[J].Blood,2009,114(11):2220-2231.
[4]CHENG K,GRISENDI S,CLOHESSY J G,et al.The leukemia-associated cytoplasmic nucleophosmin mutant is an oncogene with paradoxical functions:Arf inactivation and induction of cellular senescence[J].Oncogene,2007,26(53):7391-7400.
[5]CILLONI D,MESSA F,ROSSO V,et al.Increase sensitivity to chemotherapeutical agents and cytoplasmatic interaction between NPM leukemic mutant and NF-kappaB in AML carrying NPM1 mutations[J].Leukemia,2008,22(6):1234-1240.
[6]LI Z L,BOONE D,HANN S R.Nucleophosmin interacts directly with c-Myc and controls c-Myc-induced hyperproliferation and transformation[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(48):18794-18799.
[7]PANDURANGAN A K.Potential targets for prevention of colorectal cancer:a focus on PI3K/Akt/mTOR and Wnt pathways[J].Asian Pac J Cancer Prev,2013,14(4):2201-2205.
[8]BACHER U,BADBARAN A,FEHSE B,et al.Quantitative monitoring of NPM1 mutations provides a valid minimal residual disease parameter following allogeneic stem cell transplantation[J].Exp Hematol,2009,37(1):135-142.
[9]NAKAGAWA M,KAMEOKA Y,SUZUKI R.Nucleophosmin in acute myelogenous leukemia[J].N Engl J Med,2005,352(17):1819-1820.
[10]DEN B W,KUO M L,WILLIAMS R T,et al.Myeloid leukemia-associated nucleophosmin mutants perturb p53-dependent and Independent activities of the Arf tumor suppressor protein[J].Cell Cycle,2005,4(11):1593-1598.
[11]BONETTI P,DAVOLI T,SIRONI C,et al.Nucleophosmin and its AML-associated mutant regulate c-Myc turnover through Fbw7 gammol/La[J].J Cell Biol,2008,182(1):19-26.
[12]全靜,張帥帥,鮮敬榮,等.胞質(zhì)NPM1突變蛋白與AKT的相互作用及其對(duì)急性髓系白血病細(xì)胞增殖的調(diào)控[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2014,36(22):2267-2271.
[13]FALINI B,BOLLI N,SHAN J,et al.Both carboxy-terminus NES motif and mutated tryptophan(s) are crucial for aberrant nuclear export of nucleophosmin leukemic mutants in NPMc+AML[J].Blood,2006,107(11):4514-4523.
[14]覃鳳嫻,邵會(huì)媛,張伶,等.過(guò)表達(dá)突變的NPM1 基因?qū)HP-1 白血病細(xì)胞增殖和凋亡的影響[J].基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床,2012,32(3):251-256.