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    澳洲堅果果皮不同溶劑提取物的含量和抗氧化活性

    2017-02-27 11:25:26林文秋楊為海鄒明宏
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年1期
    關(guān)鍵詞:多酚抗氧化活性黃酮

    林文秋+楊為海+鄒明宏

    摘要:以成熟的澳洲堅果為試驗材料,分別選用水和體積分?jǐn)?shù)70%甲醇、70%乙醇與70%丙酮4種溶劑對澳洲堅果的新鮮果皮進(jìn)行浸提,測定各溶劑提取物的總酚、總黃酮與單寧含量及其抗氧化活性。結(jié)果表明,不同溶劑對澳洲堅果果皮中總酚、總黃酮與單寧含量以及DPPH、ABTS自由基清除能力與總抗氧化能力方面存在明顯差異,以體積分?jǐn)?shù)70%丙酮提取物的總酚、總黃酮與單寧含量最高,分別為(6.63±0.15) mg/g(FW)、(8.65±0.32) mg/g(FW)、(8.80±0.31) mg/g(FW)。其次是70%甲醇、70%乙醇;水提取物的含量最低。相關(guān)性分析表明,提取物中的總酚含量與其抗氧化能力顯著相關(guān)。可見,提取劑的性質(zhì)明顯影響其提取物的酚類物質(zhì)含量與抗氧化活性。

    關(guān)鍵詞:澳洲堅果果皮;溶劑提取物;多酚;黃酮;抗氧化活性

    中圖分類號: S667.901 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號:1002-1302(2017)01-0171-04

    澳洲堅果(Macadamia spp.)別稱夏威夷果,原產(chǎn)于澳洲,屬于山龍眼科(Proteaceae)澳洲堅果屬(Macadamia F. Mull)常綠喬木果樹,被譽為世界“干果之王”,以富含多種不飽和脂肪酸為主要特點,還含有蛋白質(zhì)、礦質(zhì)元素和維生素等,具有較高的營養(yǎng)價值和保健功效。 作為一種新興的高檔堅果類果品,澳洲堅果在國際市場上供不應(yīng)求,具有廣闊的市場前景。近年來,中國澳洲堅果產(chǎn)業(yè)得到迅猛發(fā)展,目前種植規(guī)模已達(dá)652 km2,年產(chǎn)帶殼果約9 700 t[1]。

    澳洲堅果果實主要由果皮、種殼和果仁組成,其初加工的主要副產(chǎn)物為約占果實鮮質(zhì)量的1/2的果皮和約占帶殼果干質(zhì)量的2/3種殼。當(dāng)前國內(nèi)外對澳洲堅果果仁的營養(yǎng)成分[2-5]與保健價值[6-7]、種殼的功能性組分[8-10]及開發(fā)利用[11-13]等方面的研究報道較多,但對果皮內(nèi)含物的研究僅見于不同種質(zhì)果皮的粗蛋白、可溶性糖、單寧及礦質(zhì)元素含量的測定與分析[14-15],至今尚未見有果皮酚類物質(zhì)及其抗氧化活性研究的報道。本試驗采用水和體積分?jǐn)?shù)70%甲醇、70%乙醇與70%丙酮4種溶劑浸提澳洲堅果果皮,研究不同溶劑提取物的總酚和總黃酮含量及其抗氧化活性的差異,旨在探討適宜獲得澳洲堅果果皮中天然抗氧化物質(zhì)的提取溶劑,為開發(fā)和利用澳洲堅果果皮這一副產(chǎn)物資源提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    供試澳洲堅果果皮為已成熟的澳洲堅果新鮮果實,采自中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院南亞熱帶作物研究所種質(zhì)資源圃,分離出果皮,于-80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    主要儀器有紫外可見分光光度計UV-1200,上海美譜達(dá)儀器有限公司;電子分析天平ML204,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;高速冷凍離心機(jī)Heraeus Multifuge X1R,德國Thermo Fisher Scientific公司。

    主要試劑包括Folin-Cioealteu試劑、沒食子酸、蕓香苷、Trolox(水溶性維生素E類似物)、DPPH、ABTS、TPTZ,均購自美國Sigma-Aldrich公司。

    1.2 方法

    1.2.1 提取物制備 準(zhǔn)確稱取澳洲堅果果皮1.0 g,放入研缽中,液氮研磨成粉末,轉(zhuǎn)移至15 mL離心管中,分別以體積分?jǐn)?shù)為70%甲醇、70%乙醇、70%丙酮和水,料液比為 1 g ∶10 mL,充分混勻后置于37 ℃水浴中浸提1 h,4 ℃ 離心(2 200 g)20 min,取上清備用。

    1.2.2 總酚含量測定 總酚含量的測定采用改良Folin-Cioealteu 法[16]。取0.5 mL樣品溶液與2.5 mL 10% Folin-Cioealteu反應(yīng)液于15 mL試管中,充分混勻,避光孵育5 min后與2.0 mL 20% Na2CO3溶液充分混勻,30 ℃水浴避光反應(yīng)1 h,于765 nm下測定吸光度,重復(fù)3次。以沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品制作標(biāo)準(zhǔn)曲線計算總酚含量(mg/g,F(xiàn)W)。

    1.2.3 總黃酮含量測定 總黃酮含量的測定參照Benamar等的方法[17]。取0.5 mL樣品溶液與0.5 mL 5% NaNO2溶液于15 mL試管中,充分混勻,反應(yīng)5 min后加入0.5 mL 10% AlCl3搖勻,靜置6 min;再加入1.5 mL 1.0 mol/L NaOH,于40 ℃水浴中避光反應(yīng)15 min后,于510 nm下測定吸光度,重復(fù)3次。以蕓香苷標(biāo)準(zhǔn)品制作標(biāo)準(zhǔn)曲線計算總黃酮的含量(mg/g,F(xiàn)W)。

    1.2.4 單寧含量的測定 單寧含量的測定參照等的方法。取2 mL樣品溶液加入含有25 mL蒸餾水和2.5 Folin-Donis試劑的容量瓶中,加入1mol/L的碳酸鈉溶液,劇烈振蕩,于30 ℃恒溫箱中放置1.5 h后,于680 nm下測定吸光度,重復(fù)3次。以單寧標(biāo)樣繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線計算單寧含量(mg/g,F(xiàn)W)。

    1.2.5 抗氧化活性測定 DPPH自由基清除能力的測定。參照Vieira等的方法[18],利用60 mL甲醇和40 mL乙酸鈉緩沖液(0.1 mol/L,pH值5.5)現(xiàn)配DPPH溶液(50 μmol/L)。取 2.9 mL DPPH溶液,于517 nm下測定其初始吸光度(D0);取2.9 mL DPPH溶液和0.1 mL樣品溶液充分混勻后,于 30 ℃ 水浴中避光反應(yīng)15 min,測定其吸光度(D15)。以甲醇-乙酸鈉緩沖液為空白調(diào)0,重復(fù)測定3次。樣品的DPPH自由基清除率按[100%-(D15/D0)× 100%]計算,用Trolox為標(biāo)準(zhǔn)物制作標(biāo)準(zhǔn)曲線計算其抗氧化活性。

    ABTS自由基清除能力的測定。參照Re等的方法[19],將現(xiàn)配的ABTS反應(yīng)液(7 mmol/L)用80%乙醇稀釋至734 nm的吸光度為0.70±0.02,作為其初始吸光度(D0);取0.1 mL樣品溶液與2.9 mL稀釋了的ABTS反應(yīng)液混勻,于30 ℃水浴中避光反應(yīng)7 min,測定其吸光度(D7)。以80%乙醇為空白調(diào)0,重復(fù)測定3次。樣品的ABTS自由基清除率按[100%-(D7/D0)× 100%]計算,以Trolox為標(biāo)準(zhǔn)物制作標(biāo)準(zhǔn)曲線計算其抗氧化能力。

    總抗氧化能力的測定。參照Benzie等的FRAP法[20],將乙酸鈉緩沖液(0.3 mol/L,pH值3.6)、TPTZ(10 mmol/L)與FeCl3·6H2(20 mmol/L)按體積比10 ∶1 ∶1現(xiàn)配FRAP試劑,取0.15 mL樣品溶液和2.85 mL FRAP反應(yīng)液混勻,于 37 ℃ 水浴中避光反應(yīng)20 min后,于593 nm下測定其吸光度,重復(fù)測定3次。以FeSO4為標(biāo)準(zhǔn)物制作標(biāo)準(zhǔn)曲線計算其總抗氧化能力。

    1.2.6 統(tǒng)計分析 用SPSS 17.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理與統(tǒng)計分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 澳洲堅果果皮不同溶劑提取物的總酚、總黃酮與單寧含量

    水和體積分?jǐn)?shù)70%甲醇、70%乙醇、70%丙酮為提取溶劑,測定澳洲堅果果皮的總酚(沒食子酸等效物)、總黃酮(蕓香苷等效物)和單寧(單寧酸等效物)的含量(表1)。由表1可知,不同溶劑提取的總酚、總黃酮、單寧含量均具有一定差異,其中體積分?jǐn)?shù)為70%丙酮的提取效果最佳,其次是體積分?jǐn)?shù)為70%的甲醇和70%的乙醇,水提取效果最差。70%丙酮提取液總酚含量(6.63 mg/g,F(xiàn)W)、總黃酮含量(8.65 mg/g,F(xiàn)W)、單寧含量(8.80 mg/g,F(xiàn)W)顯著高于70%乙醇(4.70、4.45、5.18 mg/g,F(xiàn)W )、70%甲醇(4.39、3.9、5.19 mg/g,F(xiàn)W)和水(2.28、2.74、2.31 mg/g,F(xiàn)W)。比較而言,體積分?jǐn)?shù)70%丙酮提取液的總酚、總黃酮與單寧含量分別約是體積分?jǐn)?shù)70%甲醇與70%乙醇提取液的1.5、2.0、1.7倍,說明對澳洲堅果果皮中的總酚、總黃酮與單寧這3種物質(zhì),體積分?jǐn)?shù)為70%丙酮的提取效果最好。

    2.2 澳洲堅果果皮不同溶劑提取物的抗氧化活性

    2.2.1 總抗氧化能力FRAP FRAP法是一種快速簡便、重復(fù)性好的測定總抗氧化能力的方法,待測生物活性物質(zhì)將Fe3+還原為Fe2+的能力越大,其抗氧化活性越強。本研究是以Fe2+當(dāng)量計算澳洲堅果果皮提取物的總抗氧化能力,結(jié)果見圖1。圖1表明,不同溶劑提取液的總抗氧化能力具有顯著差異,總抗氧化能力大小排序為70%丙酮>70%乙醇>70%甲醇>水,總抗氧化能力依次為(191.43±6.72)、(109.86±6.33)、(100.58±7.27)、(62.54±0.98) μmol/g。其中,70%丙酮提取液的總抗氧化能力顯著高于醇提取液和水。體積分?jǐn)?shù)70%丙酮提取液的總抗氧化能力約是醇提取液的1.9倍和水提取液的3.1倍。

    2.2.2 DPPH自由基清除能力差異 DPPH法常用于抗氧

    化劑清除自由基能力的評價。本研究中,以標(biāo)準(zhǔn)抗氧化劑Trolox為等效物來衡量澳洲堅果果皮4種溶劑提取物的 DPPH 自由基清除能力,結(jié)果如圖2所示。圖2表明,不同溶劑提取液對DPPH自由基清除能力不同,其對DPPH自由基清除能力順序為70%甲醇提取溶劑[(104.67±2.54) μmol/g,F(xiàn)W ]> 70%丙酮提取溶劑[(51.30±1.99) μmol/g,F(xiàn)W ]> 70%乙醇提取溶劑[(35.61±5.85) μmol/g,F(xiàn)W ]> 水[(34.19±0.40) μmol/g,F(xiàn)W]。4種溶劑中體積分?jǐn)?shù)70%甲醇提取溶劑的DPPH自由基清除能力顯著高于其他3種,而70%丙酮、70%乙醇和水3種溶劑的DPPH自由基清除能力差異不顯著,說明70%甲醇是澳洲堅果DPPH自由基清除能力的最佳提取溶劑。

    2.2.3 ABTS自由基清除作用 與DPPH自由基類似,ABTS+與抗氧化劑反應(yīng)后溶液發(fā)生褪色,溶液褪色越明顯,則表明所檢測物質(zhì)的抗氧化能力越強。本研究以Trolox為標(biāo)準(zhǔn)計算澳洲堅果果皮4種溶劑提取物的ABTS自由基清除能力,結(jié)果見圖3。由圖3可知,不同溶劑提取液對ABTS自由基的清除能力不同,其對ABTS自由基清除能力的強弱順序依次為70%丙酮[(136.31±6.09) μmol/g,F(xiàn)W]>70%甲醇[(100.79±0.93) μmol/g,F(xiàn)W ]>70%乙醇[(81.13±3.35) μmol/g,F(xiàn)W]>水[(60.35±0.67) μmol/g,F(xiàn)W]。4種溶劑中,體積分?jǐn)?shù)70%丙酮提取溶劑的ABTS自由基清除能力顯著高于其他3種,70%甲醇、70%乙醇提取溶劑ABTS自由基清除能力差異不顯著,說明70%丙酮是澳洲堅果ABTS自由基清除能力的最佳提取溶劑。

    2.3 澳洲堅果果皮總酚含量與抗氧化能力的相關(guān)性分析

    相關(guān)性分析(表2)表明,總酚含量與單寧含量呈極顯著正相關(guān)(r=0.901),與總黃酮含量不相關(guān),由此說明單寧類化合物是澳洲堅果果皮酚類物質(zhì)的主要組成部分。此外,總酚與DPPH、ABTS、FRAP清除率呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.901、0.978、0.921;單寧含量和DPPH、ABTS、FRAP清除率呈極顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.972、0.919、0.998;而總黃酮含量與DPPH、ABTS、FRAP清除率不相關(guān),說明酚類物質(zhì)在澳洲堅果果皮抗氧化能力方面發(fā)揮著重要作用??偡雍亢涂寡趸钚詼y定的3個指標(biāo)均有顯著相關(guān)性,表明DPPH、ABTS、FRAP清除率均適用于澳洲堅果進(jìn)行抗氧化能力的分析。

    3 結(jié)論與討論

    澳洲堅果果皮是澳洲堅果初加工后遺留的副產(chǎn)物,在整個果實中占較大比重。目前,國內(nèi)外澳洲堅果加工企業(yè)對果皮的回收利用還不夠重視,造成資源浪費,而且對環(huán)境還有一定的污染。對山核桃[21-22]、柑橘[23]、荔枝[24]等研究表明,果皮含有很多天然抗氧化成分,具有抗氧化、抗致突變、抗衰老、抗炎和抑菌等活性。植物多酚類物質(zhì)是天然的抗氧化劑,可有效地協(xié)助維持體內(nèi)自由基代謝的平衡,減少或防止相關(guān)疾病的發(fā)生[25]。雖然張明楷等報道了澳洲堅果果皮富含單寧物質(zhì)[14],但對果皮的抗氧化活性尚未有研究。本研究結(jié)果表明,澳洲堅果果皮提取物含有較豐富的酚類與黃酮類化合物,對DPPH與ABTS自由基具有較強的清除能力,且具有較高的總抗氧化能力,表明澳洲堅果果皮提取物具有較好的抗氧化活性,可在防衰老、抗炎癥等方面發(fā)揮作用。然而,對于澳洲堅果果皮提取物中的活性成分及其作用機(jī)理,還有待于進(jìn)一步研究。

    不同溶劑制備的提取物中多酚類含量及其抗氧化活性顯著不同,這可能與提取劑的極性有關(guān)[26]。以水、甲醇、乙醇、丙酮為提取溶劑,提取石榴皮[27]、紫蘇草[28]、板栗[29]、高粱[30]、棗果渣[31]的抗氧化活性物質(zhì)并對其抗氧化活性能力的分析發(fā)現(xiàn),丙酮溶劑提取物的抗氧化活性顯著高于其他3種溶劑,其次是甲醇和乙醇,水最低。而菠蘿[32]、紅薯葉[33]和翠云草[34]的抗氧化研究中發(fā)現(xiàn),甲醇提取溶劑的抗氧化效果最好。本研究中利用不同極性的溶劑提取澳洲堅果果皮中抗氧化物質(zhì),所獲提取物中的總酚、總黃酮與單寧含量也顯著不同,以致不同溶劑提取物清除DPPH和ABTS自由基能力以及總抗氧化能力存在顯著差異。其中,丙酮溶劑提取物的抗氧化能力顯著高于水、甲醇和乙醇。綜合分析4種提取溶劑抗氧化物的FRAP、ABTS和DPPH自由基清除能力可知,4種溶劑提取物均具有一定抗氧化能力,其中丙酮溶劑提取物抗氧化能力最高,其次是甲醇和乙醇,水提取物的抗氧化能力最低。綜上所述,體積分?jǐn)?shù)70%丙酮溶劑為提取澳洲堅果果皮中的抗氧化物質(zhì)最佳溶劑。

    通過DPPH、ABTS和FRAP等方法對澳洲堅果果皮抗氧化活性測定發(fā)現(xiàn),總酚含量與3種測定指標(biāo)均具有顯著相關(guān)性,該結(jié)果也客觀反映了3種方法測定澳洲堅果果皮抗氧化活性的準(zhǔn)確性。

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