周圣驕, 宋志遠(yuǎn), 聶志奎*
(1.江西新瑞豐生化有限公司,江西新干 331300;2.江西省植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑工程研究中心,江西新干 331300)
?
福林試劑法快速檢測(cè)藤倉(cāng)赤霉發(fā)酵液中赤霉酸含量
周圣驕1,2, 宋志遠(yuǎn)1, 聶志奎1,2*
(1.江西新瑞豐生化有限公司,江西新干 331300;2.江西省植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑工程研究中心,江西新干 331300)
[目的]優(yōu)化福林試劑法的反應(yīng)條件。[方法]以從紫外誘變樣品中篩選獲得的1株高產(chǎn)藤倉(cāng)赤霉菌(G.fujikuroi) F12為研究對(duì)象,采用福林試劑法,通過(guò)溶液吸光值的變化定量檢測(cè)藤倉(cāng)赤霉菌發(fā)酵液中赤霉酸(GA3)的產(chǎn)量。[結(jié)果]當(dāng)福林試劑的用量為1.5 mL、鹽酸用量為3.0 mL、加熱時(shí)間為20 min時(shí),所得溶液吸光值穩(wěn)定性最好,在4 h以內(nèi)基本保持不變。[結(jié)論]福林試劑法操作簡(jiǎn)便、檢測(cè)快速準(zhǔn)確,可用于藤倉(cāng)赤霉菌發(fā)酵液中GA3的快速檢測(cè)。
赤霉酸;福林試劑;快速檢測(cè)法;藤倉(cāng)赤霉菌;吸光值
赤霉酸(GA3)屬于生物體內(nèi)的一類(lèi)四環(huán)二萜類(lèi)化合物,是一種天然的植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,與生長(zhǎng)素、細(xì)胞分裂素、脫落酸、乙烯共稱(chēng)為植物的五大內(nèi)源激素[1-2]。由于GA3在植物生長(zhǎng)周期全過(guò)程中可促進(jìn)與調(diào)節(jié)各種發(fā)育過(guò)程,如種子萌發(fā)、莖的伸長(zhǎng)、性別表達(dá)和果實(shí)形成等[3-6],它被廣泛應(yīng)用于農(nóng)業(yè)、林業(yè)、釀造業(yè)等各個(gè)行業(yè),具有很大的經(jīng)濟(jì)效益和市場(chǎng)前景。
GA3的化學(xué)結(jié)構(gòu)復(fù)雜,雖然利用化學(xué)合成法也能生產(chǎn)GA3,但是存在步驟繁瑣、副產(chǎn)物多、分離困難等問(wèn)題,導(dǎo)致GA3價(jià)格非常高[7]。目前,GA3的工業(yè)化生產(chǎn)還是依賴于高產(chǎn)藤倉(cāng)赤霉菌(G.fujikuroi)作為發(fā)酵菌種的液體深層發(fā)酵法[8]。但GA3的工業(yè)化發(fā)酵產(chǎn)量較低,導(dǎo)致GA3一直無(wú)法進(jìn)行大規(guī)模應(yīng)用。為了進(jìn)一步提高GA3產(chǎn)量,大量的研究工作都圍繞著赤霉菌的誘變和篩選進(jìn)行。但是誘變篩菌操作繁瑣,誘變得到的菌株數(shù)量非常多,如果僅僅依靠液相色譜法進(jìn)行含量測(cè)定,每天只能測(cè)定70多個(gè)菌,工作量極大[9-10]。目前,關(guān)于福林試劑法快速檢測(cè)GA3含量的研究已有報(bào)道[11-13],而且效果較好,可以對(duì)赤霉菌發(fā)酵液中的GA3進(jìn)行較精確的測(cè)量。該方法比較簡(jiǎn)單,在酶標(biāo)儀的操作下1 d可對(duì)上千個(gè)樣品進(jìn)行快速測(cè)定,從而節(jié)省大量時(shí)間。由于福林試劑與濃鹽酸的用量以及加熱時(shí)間不僅影響反應(yīng)后的吸光值,同時(shí)還影響吸光值的穩(wěn)定性,筆者采用福林試劑法快速檢測(cè)藤倉(cāng)赤霉菌發(fā)酵液中GA3含量,對(duì)該方法進(jìn)行了進(jìn)一步優(yōu)化,旨在為突變菌株的大規(guī)模篩選奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料
1.1.1 出發(fā)菌株。藤倉(cāng)赤霉菌F12,為江西新瑞豐生化有限公司實(shí)驗(yàn)室紫外誘變篩選獲得。
1.1.2 試劑。GA3標(biāo)準(zhǔn)品、福林試劑、無(wú)水乙醇(分析純)、37%濃鹽酸均購(gòu)自Sigma試劑公司。
1.1.3 培養(yǎng)基。種子培養(yǎng)基:30.00 g/L葡萄糖,5.50 g/L酵母粉,0.20 g/L磷酸二氫鉀,0.20 g/L硫酸鎂,pH自然,115 ℃下滅菌30 min。發(fā)酵培養(yǎng)基:60.00 g/L葡萄糖,5.50 g/L酵母粉,0.20 g/L磷酸二氫鉀,0.20 g/L硫酸鎂,100 μL微量元素(0.10 g/L CaCl2,0.10 g/L FeCl3, 0.05 g/L MnCl2),pH自然,115 ℃下滅菌30 min。
1.2 方法
1.2.1 發(fā)酵樣品處理。取3.0 mL發(fā)酵后菌液,先用濾紙過(guò)濾得到較澄清的濾液,然后用0.22 μm濾頭對(duì)濾液進(jìn)行過(guò)膜處理,得到澄清樣品,再進(jìn)行高效液相色譜(HPLC)分析。
1.2.2 HPLC測(cè)定GA3含量。標(biāo)準(zhǔn)C18液相色譜柱250.0 mm×4.6 mm;紫外檢測(cè)波長(zhǎng)210 nm;流速1 mL/min;進(jìn)樣量10 μL;流動(dòng)相為100%甲醇與0.05%磷酸;柱溫28 ℃。
1.2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立。將GA3標(biāo)準(zhǔn)品溶解于色譜純乙醇,配制成0.20 g/L的標(biāo)準(zhǔn)液,分別取0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mL的標(biāo)準(zhǔn)液于玻璃試管中,蒸發(fā)乙醇溶劑,再加入1.5 mL福林試劑與3.0 mL鹽酸,沸水浴反應(yīng)20 min,冷卻,定容至10.0 mL,680 nm波長(zhǎng)處比色。
1.2.4 赤霉素發(fā)酵液的測(cè)定。過(guò)膜樣品稀釋一定倍數(shù)后,取2.0 mL置于玻璃試管中,滴入0.5 mol的鹽酸調(diào)節(jié)pH為1~2,再加入2.0 mL乙酸乙酯,充分振蕩后靜置分層,取上層乙酸乙酯萃取液0.5 mL,加入試管中,先蒸去溶劑,再加入1.5 mL福林試劑與3.0 mL濃鹽酸,沸水浴20 min,冷卻,定容至10.0 mL,680 nm波長(zhǎng)處比色,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線查出相應(yīng)GA3微克數(shù)(G)。
1.2.5 發(fā)酵液GA3含量測(cè)定計(jì)算方法。
式中,0.88表示水、乙酸乙酯比例為1∶2時(shí)乙酸乙酯對(duì)赤霉素的抽提率。
1.2.6 不同批次的GA3發(fā)酵液福林試劑法與HPLC檢測(cè)比對(duì)分析。對(duì)不同批次的GA3發(fā)酵液進(jìn)行處理后, 分別采用福林試劑法和HPLC檢測(cè),對(duì)2種檢測(cè)方法進(jìn)行比較分析。
2.1 福林試劑用量對(duì)吸光值的影響 取0.5mLGA3標(biāo)準(zhǔn)品,分別加入3.0mL濃鹽酸與不同量福林試劑,反應(yīng)后測(cè)量吸光值。由表1可知,溶液反應(yīng)后,吸光值隨著福林試劑用量的增大先變大后變小,顏色先加深后變淺,推測(cè)原因是福林試劑把GA3降解物反應(yīng)完全后,剩余的福林試劑稀釋了反應(yīng)溶液,從而導(dǎo)致吸光值的降低、顏色的變淺。當(dāng)福林試劑的添加量為1.5mL時(shí)吸光值最大,因此,福林試劑的用量選擇1.5mL。
表1 福林試劑用量對(duì)吸光值的影響
Table1EffectofamountofFolin-Ciocalteu’sphenolreagentonabsorbance
福林試劑用量DosageofFolin?Ciocalteu’sphenolreagent∥mL吸光值A(chǔ)bsorbance顏色變化Changeincolor1.00.7832黃色轉(zhuǎn)為淺綠色1.50.9423黃色轉(zhuǎn)為墨綠色2.00.8777黃色轉(zhuǎn)為墨綠色2.50.7458黃色轉(zhuǎn)為淺綠色3.00.7251黃色轉(zhuǎn)為淺綠色3.50.6905黃色轉(zhuǎn)為淺綠色
2.2 鹽酸用量對(duì)吸光值的影響 取0.5 mL GA3標(biāo)準(zhǔn)品,分別加入不同量濃鹽酸與1.5 mL福林試劑,反應(yīng)后測(cè)量吸光值。由表2可知,隨著濃鹽酸加入量的增大,吸光值先增加后不變,顏色變化由淺到深。推測(cè)原因是鹽酸的量比較少時(shí)未和GA3完全反應(yīng),隨著濃鹽酸用量的增大,GA3逐漸被降解,吸光值逐漸增大,當(dāng)GA3全部被鹽酸降解后吸光值基本保持不變。當(dāng)濃鹽酸用量增加到3.0 mL左右,吸光值變化非常緩慢,所以濃鹽酸的用量選擇3.0 mL。
表2 鹽酸用量對(duì)吸光值的影響
2.3 加熱時(shí)間對(duì)吸光值的影響 0.4 mL GA3標(biāo)準(zhǔn)樣品加入1.5 mL福林試劑和3.0 mL濃鹽酸后,必須經(jīng)過(guò)沸水浴才能使反應(yīng)完全進(jìn)行,因此,確定最佳的反應(yīng)時(shí)間對(duì)體系的穩(wěn)定性非常重要。由圖1可知,吸光值隨著加熱時(shí)間的延長(zhǎng)先變大后保持不變,推測(cè)原因,溶液反應(yīng)是在20 min時(shí)才基本結(jié)束,此時(shí)吸光值保持不變,所以選擇加熱時(shí)間為20 min。
圖1 加熱時(shí)間對(duì)吸光值的影響Fig.1 Effect of heating time on absorbance
2.4 穩(wěn)定性驗(yàn)證 確定了最佳鹽酸與福林試劑的添加量以及加熱時(shí)間后,對(duì)溶液的吸光值的穩(wěn)定性進(jìn)行考察。0.4與0.6 mL標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)過(guò)顯色反應(yīng)后,在室溫下放置,每隔一段時(shí)間測(cè)量吸光值,發(fā)現(xiàn)當(dāng)取1.5 mL福林試劑與3.0 mL濃鹽酸時(shí),溶液的穩(wěn)定性在4 h以內(nèi)較好,吸光值基本保持不變(表3)。
表3 穩(wěn)定性測(cè)試結(jié)果
2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線 由圖2可知,當(dāng)GA3質(zhì)量在40~240 μg時(shí),
圖2 GA3標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 The standard curve of GA3
吸光值基本上呈線性關(guān)系,在該濃度范圍內(nèi)得到吸光值與GA3的線性方程為:y=0.003 23x+0.550 22,R=0.990 1。
2.6 福林試劑法與HPLC檢測(cè)結(jié)果比較 由表4可知,福林試劑法與HPLC測(cè)試結(jié)果比較相似,說(shuō)明福林試劑法可用于發(fā)酵液中GA3的檢測(cè)。
表4 福林試劑法與HPLC測(cè)試結(jié)果比較
Table 4 The comparison of determination results by Folin-ciocalteu′s phenol reagent method and HPLC
樣品SamplesGA3含量GA3content∥mol/L福林試劑法Folin?ciocalteu′sphenolreagentmethod液相色譜法HPLC14203982443415347345444984895556521
通過(guò)對(duì)福林試劑法快速檢測(cè)藤倉(cāng)赤霉菌發(fā)酵液中GA3進(jìn)行探討,優(yōu)化了影響吸光值的3個(gè)因素,提高了系統(tǒng)的穩(wěn)定性,并在此基礎(chǔ)上對(duì)福林試劑法和HPLC進(jìn)行了對(duì)比分析,從實(shí)踐上驗(yàn)證了福林試劑法檢測(cè)GA3的可行性。與HPLC相比,福林試劑法操作簡(jiǎn)單、檢測(cè)快速準(zhǔn)確,大大降低了篩菌過(guò)程的工作量,對(duì)赤霉菌誘變育種工作中高產(chǎn)菌株的快速檢測(cè)以及GA3發(fā)酵過(guò)程的簡(jiǎn)易監(jiān)測(cè)有重要作用。
[1] MUGE G,SELMA A T.Extractive fermentation of gibberellic acid with free and immobilizedGibberellafujikuroi[J].Prep Biochem Biotechnol,2014,44(1):80-89.
[2] BALLINGLL A M.The use of hormone herbicides for resistance management and control of difficult weeds in cereal crops in the UK (with special reference to Scotland)[J].Julius Kühn Archiv,2014,443:268-272.
[3] B?MKE C,TUDZYNSKI B,BRAKHAGE A,et al.Diversity,regulation,and evolution of the gibberellin biosynthetic pathway in fungi compared to plants and bacteria[J].Phytochemistry,2009,70(15/16):1876-1893.
[4] MCSTEEN P,ZHAO Y.Plant hormones and signaling:Common themes and new developments[J].Dev Cell,2008,14:467-473.
[5] ARSHAD M,FRANKENBERGER W T.Microbial production of plant hormones[J].Plant & soil,1991,133(1):1-8.
[6] LU Q,ZHANG W,JIA G,et al.Simultaneous determination of plant hormones in peach based on dispersive liquid-liquid microextraction coupled with liquid chromatography-ion trap mass spectrometry[J].Journal of chromatography B:Analytical technologies in the biomedical & life sciences,2015,992:8-13.
[7] MANDER L N.Twenty years of gibberellin research[J].Nat Prod Rep,2003,20(1):49-69.
[8] ELEAZAR M E S,DENDOOVEN L,MAGANA I P,et al.Optimization of gibberellic acid production by immobilizedGibberellafujikuroi,mycelium in fluidized bioreactors[J].Journal of biotechnology,2000,76:147-155.
[9] TORRES K B,BRüCKNER B,MEIER B.Obtaining mutants for protoplast fusion of gibberellin-formingGibberellafujikuroistrains[J].Applied biochemistry & biotechnology,1992,33(2):83-95.
[10] 王衛(wèi),黎繼烈,黃衛(wèi)文,等.利用特比萘芬抗性篩選赤霉素高產(chǎn)菌株及相關(guān)發(fā)酵特性的研究[J].微生物學(xué)通報(bào),2014,41(9):1837-1842.
[11] 印天壽,陳世勇,于群英,等.赤霉素的快速分光光度測(cè)定法的研究[J].分析化學(xué),1990,18(10):966-969.
[12] 陳玉鑾,王占文,孫思祥.赤霉素的磷鉬雜多酸光度測(cè)定法研究[J].南京化工學(xué)院學(xué)報(bào),1993,15(1):51-54.
[13] 羅國(guó)安,顧覺(jué)奮.熒光分光光度法測(cè)定赤霉素的含量[D].上海:復(fù)旦大學(xué)出版社,1984:187-188.
Quick Detection of Gibberellins in Gibberella fujikuroi Fermentation Broth Using Folin-Ciocalteu’s Phenol Reagent
ZHOU Sheng-jiao1,2, SONG Zhi-yuan1, NIE Zhi-kui1,2*
(1. Jiangxi New Reyphon Biochemical Co. Ltd., Xingan, Jiangxi 331300; 2. Jiangxi Plant Growth Regulator Engineering Research Center, Xingan, Jiangxi 331300)
[Objective] The aim was to optimize reaction conditions of Folin-Ciocalteu’s phenol reagent. [Method] With high-yieldGibberellafujikuroiF12 as the research strain which was isolated from large quantities of UV mutation samples, Folin-Ciocalteu’s phenol reagent method was used to quickly detect the gibberellin acid (GA3) yield inGibberellafujikuroifermentation broth by the change of absorbance. [Result] When 1.5 mL Folin-Ciocalteu’s phenol reagent, 3.0 mL hydrochloric acid as well as 20 min heating time was selected, the final solution absorbance had the best stability and still remained basically unchanged within 4 h. [Conclusion] The optimized method can quickly and accurately detect the GA3yield inGibberellafujikuroifermentation broth.
GA3; Folin’s reagent; Quick detection;Gibberellafujikuroi; Absorbance
周圣驕(1979- ),男,湖北京山人,工程師,從事微生物代謝工程研究。*通訊作者,工程師,博士,從事微生物代謝工程研究。
2016-08-10
S 13
A
0517-6611(2016)28-0017-02