趙美瞇,李 卓,邵冬雪,梁洪玥,晏 珊,封 瑞,孫雪菲,郭 鳳,郝麗英
(中國醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽110122)
鈣調(diào)蛋白鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體載體的構(gòu)建、表達(dá)純化及鑒定
趙美瞇,李卓,邵冬雪,梁洪玥,晏珊,封瑞,孫雪菲,郭鳳,郝麗英
(中國醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院藥物毒理學(xué)教研室,沈陽110122)
目的構(gòu)建鈣調(diào)蛋白3種鎂離子結(jié)合位點(diǎn)突變體的質(zhì)粒載體,并進(jìn)行表達(dá)純化及鑒定,為深入研究鈣調(diào)蛋白的生物學(xué)功能奠定基礎(chǔ)。方法利用鈣調(diào)蛋白cDNA進(jìn)行點(diǎn)突變,制備3種鎂離子結(jié)合位點(diǎn)突變的cDNA。將突變后的cDNA分別插入pGEX-6P-3載體,制備鈣調(diào)蛋白突變體載體質(zhì)粒。質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21感受態(tài)細(xì)胞,培養(yǎng)大腸桿菌,并誘導(dǎo)GST融合蛋白表達(dá)。利用Glutathione-Sepharose 4B珠子和PreScission蛋白酶分離純化蛋白。結(jié)果酶切鑒定和DNA測序證實(shí)成功構(gòu)建鈣調(diào)蛋白突變體質(zhì)粒;表達(dá)純化得到的鈣調(diào)蛋白突變體經(jīng)電泳圖鑒定純度較高,濃度約1.0 mg/mL。結(jié)論本研究成功構(gòu)建了鈣調(diào)蛋白鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體融合蛋白原核表達(dá)質(zhì)粒,分離純化可獲得較高濃度較高純度的鈣調(diào)蛋白突變體。
鈣調(diào)蛋白;突變體;融合蛋白;pGEX-6P-3
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鈣調(diào)蛋白(calmodulin,CaM)是一種廣泛存在于生物體的鈣結(jié)合蛋白。它與體內(nèi)多種蛋白相互作用產(chǎn)生各種生物學(xué)效應(yīng),是生命活動過程中不可缺少的細(xì)胞因子[1-2]。研究發(fā)現(xiàn)CaM不僅可與經(jīng)典的鈣離子通道蛋白相互作用,而且可與鉀離子通道[3]、鈉離子通道[4],以及非選擇性陽離子通道[5]直接作用,但其作用機(jī)制有待深入研究。本研究擬構(gòu)建新的CaM突變體,以便進(jìn)一步研究其生物學(xué)功能及其對各種離子通道的調(diào)節(jié)作用。
CaM由148個氨基酸組成,空間結(jié)構(gòu)呈啞鈴型,兩端(N-lobe,C-lobe)各有2個EF-hand結(jié)構(gòu)域,4個EF-hand都可以結(jié)合Ca2+。目前國內(nèi)外文獻(xiàn)中涉及的CaM突變體就是指CaM鈣結(jié)合位點(diǎn)突變體,即CaM的4個EF-hand上某些關(guān)鍵氨基酸殘基發(fā)生了突變,使得不能與Ca2+結(jié)合,導(dǎo)致其功能部分或全部喪失[6-7]。一般認(rèn)為Ca2+/CaM復(fù)合物具有重要的生理學(xué)功能,CaM鈣結(jié)合位點(diǎn)突變體被廣泛應(yīng)用于CaM作為Ca2+伴侶蛋白參與各種生物信息調(diào)節(jié)的機(jī)制研究中。
CaM也能結(jié)合Mg2+。CaM上4個EF-hand與Mg2+的解離常數(shù)約為1×10-2~1×10-4/mol,其中N-lobe上第1個EF-hand與Mg2+親和力最高,C-lobe上第2個EF-hand為其次,其余2個位點(diǎn)親和力很弱[8]。目前研究認(rèn)為,Mg2+/CaM復(fù)合物可引起CaM局部構(gòu)象改變,但其功能變化鮮見報(bào)道。為此,本研究設(shè)計(jì)了3個CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體:CaMN(D24N),即點(diǎn)突變CaM的N-lobe上鎂結(jié)合位點(diǎn);CaMC(D133N),即點(diǎn)突變CaM的C-lobe上鎂結(jié)合位點(diǎn);以及雙突變體CaMNC(D24N+D133N),即同時突變CaM的N-lobe和C-lobe上鎂結(jié)合位點(diǎn)。本實(shí)驗(yàn)擬構(gòu)建鈣調(diào)蛋白3種Mg2+結(jié)合位點(diǎn)突變體的質(zhì)粒載體并進(jìn)行表達(dá)純化及鑒定,為進(jìn)一步揭示Mg2+/CaM復(fù)合物的功能及體內(nèi)生物學(xué)意義奠定基礎(chǔ)。
1.1材料
pGEX-6P-3/CaMN、pGEX-6P-3/CaMC和pGEX-6P -3/CaMNC鈣調(diào)蛋白鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體的重組質(zhì)粒由武漢金開瑞生物工程有限公司合成提供。Escherichia coli BL21由北京全式金生物技術(shù)有限公司提供;胰化蛋白胨,酵母提取物由Oxoid公司提供;異丙基硫代-β-D半乳糖苷(isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside,IPTG),氨芐青霉素(ampicillin,AMP),溶菌酶,二硫蘇糖醇(DL-Dithiothreitol,DTT),月桂酰肌氨酸(N-lauroylsarcosine sodium salt)由Sigma公司提供;Triton X-100,十二烷基硫酸鈉(sodium dodecyl sulfate,SDS)由BIOSHARP公司提供;Glutathione-Sepharose 4B珠子(GS-4B珠子),PreScission蛋白酶由GE Healthcare公司提供;Bradford蛋白濃度測定試劑盒由碧云天公司提供。
1.2質(zhì)粒構(gòu)建
應(yīng)用點(diǎn)突變試劑盒制備鈣調(diào)蛋白鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體(CaMN、CaMC和CaMNC)編碼序列并克隆至載體pGEX-6P-3。
1.3質(zhì)粒轉(zhuǎn)化
采用42℃精確熱擊法將上述3種重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至Escherichia coli BL21感受態(tài)細(xì)胞,得到基因重組BL21大腸桿菌,具體操作參考文獻(xiàn)[9]。
1.4質(zhì)粒提取
第二,突出教學(xué)重點(diǎn),確保幼兒一日活動的高效性。幼兒園一日活動的內(nèi)容非常豐富,細(xì)節(jié)較多,因此,幼兒園應(yīng)在每一學(xué)期設(shè)置不同的重點(diǎn),扎實(shí)地展開幼兒的教學(xué)活動。在教學(xué)過程中要注重理論與實(shí)踐之間的結(jié)合,通過案例的示范、研究討論、實(shí)踐與反思等來提高教學(xué)活動的時效性。
采用堿裂解法和硅基質(zhì)膜材料特異性吸附DNA的方法從大腸桿菌中小量提取質(zhì)粒DNA。按照高純度質(zhì)粒小提試劑盒(DP107,北京天根生物工程有限公司)說明書進(jìn)行提取。
1.4.1提取質(zhì)粒的酶切鑒定:該重組質(zhì)粒具有SalⅠ和NotⅠ酶切位點(diǎn),選用這2個限制性內(nèi)切酶(NEB公司)進(jìn)行酶切鑒定。反應(yīng)體系:1 μL RE緩沖液,0.25 μL SalⅠ,0.25 μL NotⅠ,1 μL質(zhì)粒DNA,7.5 μL DEPC水,反應(yīng)總體系10μL。37℃培養(yǎng)箱孵育1 h后,1%瓊脂糖凝膠電泳,紫外成像。
1.4.2提取質(zhì)粒的DNA測序:應(yīng)用雙脫氧終止法進(jìn)行DNA測序,由武漢金開瑞生物工程有限公司完成。
1.5融合蛋白表達(dá)
重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化BL21大腸桿菌后保留菌種,取適量相對應(yīng)的菌種加入裝有400 mL LB(含AMP 50 μg/mL)培養(yǎng)液的錐形瓶中,利用振蕩水浴鍋在37℃、100 r/min條件下培養(yǎng)13~16 h。當(dāng)A600值達(dá)到0.6~1.0時,加入IPTG至1 mmol/L,繼續(xù)在37℃、110 r/min的條件下振搖培養(yǎng)4 h,誘導(dǎo)CaM突變體的融合蛋白表達(dá)。
1.6蛋白純化
將上述菌液離心后棄上清,用PBS重懸沉淀菌體,加入溶菌酶至0.2 mg/mL,DTT至10 mol/L,冰浴30 min后低溫超聲波破碎細(xì)菌。超聲破碎后菌液低溫高速離心取上清,加入相應(yīng)量的GS-4B珠子,4℃緩慢旋轉(zhuǎn)孵育過夜。次日清晨,用Tris緩沖液(pH 8.0)清洗后,加入1% PreScission蛋白酶,室溫最大速度旋轉(zhuǎn)酶切蛋白5 h,使得融合蛋白GST與目的蛋白分離。600 r/min離心3 min,上清即為提純的CaM突變體蛋白。部分純化蛋白用于純度鑒定和濃度測定,其余-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.6.1純化蛋白的純度鑒定:利用15% SDS-PAGE電泳檢測純化蛋白的相對分子量和純度。
2.1重組質(zhì)粒的酶切鑒定
用1%瓊脂糖電泳鑒定插入CaM突變體的pGEX-6P-3載體的質(zhì)粒。質(zhì)粒pGEX-6P-3經(jīng)SalⅠ和NotⅠ雙酶切分別插入3種鈣調(diào)蛋白鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體,即pGEX-6P-3/CaMN、pGEX-6P-3/CaMC和pGEX-6P-3/CaMNC。質(zhì)粒pGEX-6P-3約為4 900 bp,SalⅠ和NotⅠ之間的堿基全長為18 bp,CaM突變體約為467 bp,所以CaM突變體重組質(zhì)粒的長度約5 349 bp。重組質(zhì)粒用SalⅠ和NotⅠ雙酶切后應(yīng)該得到1個大分子量DNA片段(約4 882 bp,pGEX-6P-3載體)和1個小分子量DNA片段(約467 bp,CaM突變體)。電泳結(jié)果顯示,3種CaM突變體重組質(zhì)粒酶切后,在分子量約5 000 bp和500 bp處均有一明顯的條帶(圖1),與預(yù)期結(jié)果相符,表明CaM突變體重組質(zhì)粒構(gòu)建成功。
2.2CaM突變體的DNA測序
為鑒定CaM突變體,測序結(jié)果用GeneTool軟件與野生型CaM[homo sapiens calmodulin 2(phosphorylase kinase,delta),CALM2]比對。CaMN測序結(jié)果顯示:基因序列的第70位堿基由G突變成了A;CaMC測序結(jié)果顯示:基因序列的第397位堿基由G突變成了A;CaMNC測序結(jié)果顯示:基因序列的第70位和第397位堿基同時由G突變成了A,見圖2A。根據(jù)測得的CaM堿基序列及3個堿基決定1個氨基酸的原則,獲得CaM氨基酸順序。CaMN突變體氨基酸序列與野生型相比,第24個氨基酸殘基由D突變成了N;CaMC突變體氨基酸序列與野生型相比,第133個氨基酸殘基由D突變成了N;CaMNC突變體氨基酸序列與野生型相比,第24和第133位氨基酸殘基均由D突變成了N,見圖2B。該結(jié)果與設(shè)計(jì)的突變位點(diǎn)一致,進(jìn)一步表明CaM突變體重組質(zhì)粒構(gòu)建成功。
2.3純化后CaM突變體的純度鑒定
圖1 CaM突變體重組質(zhì)粒的酶切鑒定圖Fig.1 Enzyme digestion analysis of CaM mutants recombinant plasmids
圖2 CaM突變體測序結(jié)果及相對應(yīng)氨基酸序列圖Fig.2 DNA sequence identification of CaM mutants and their amino acids
CaM由148個氨基酸組成,表觀分子量約為16.7×103。點(diǎn)突變后的3種CaM突變體表觀分子量仍為16.7×103。SDS-PAGE蛋白電泳結(jié)果顯示(圖3),在Marker 15×103條帶的稍微偏上處CaM、CaMN、CaMC和CaMNC4個泳道分別出現(xiàn)1條粗蛋白條帶,即分別為CaM及其突變體蛋白,與預(yù)期結(jié)果一致。電泳結(jié)果顯示附近基本無雜帶,提示純化后CaM突變體的蛋白純度較高。
2.4純化后CaM突變體的濃度測定
采用Bradford蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度,將各樣品稀釋4倍后用酶標(biāo)儀在波長595 nm處測得OD595值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線公式,計(jì)算所得純化后CaM突變體(CaMN、CaMC和CaMNC)的蛋白濃度依次為1.0、0.9、1.2 mg/mL。與同一方法提純的野生型CaM的濃度(1.0 mg/mL)無明顯區(qū)別。
圖3 純化后CaM突變體變性凝膠電泳圖Fig.3 SDS-PAGE of purified CaM and its mutants
為深入研究CaM的生物學(xué)功能,了解與其他蛋白的相互作用,本實(shí)驗(yàn)應(yīng)用了蛋白重組技術(shù);首次設(shè)計(jì)了CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體;應(yīng)用大腸桿菌原核表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)GST融合蛋白;采用GS-4B珠子和PreScission蛋白酶分離純化突變體蛋白,為后續(xù)開展體外蛋白結(jié)合實(shí)驗(yàn)等工作提供保障。本實(shí)驗(yàn)選用表達(dá)重組蛋白的首選表達(dá)系統(tǒng)——大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng),具有遺傳背景清楚、培養(yǎng)操作簡單、轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)導(dǎo)效率高、生長繁殖快、成本低廉,可以快速大量地生產(chǎn)目的蛋白等優(yōu)點(diǎn)。本實(shí)驗(yàn)表達(dá)載體選用融合表達(dá)載體中的GST(谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶)系統(tǒng)。因?yàn)镃aM分子量較小,以融合蛋白形式表達(dá),可增強(qiáng)mRNA及表達(dá)產(chǎn)物穩(wěn)定性,并生產(chǎn)出可溶性蛋白;同時采用該表達(dá)載體簡化了蛋白分離純化步驟。
本實(shí)驗(yàn)用pGEX-6P-3/CaMN、pGEX-6P-3/CaMC和pGEX-6P-3/CaMNC重組質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21感受態(tài)細(xì)胞,可穩(wěn)定地表達(dá)GST-CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體融合蛋白,且表達(dá)突變體的基因性狀穩(wěn)定。GS -4B珠子可穩(wěn)定結(jié)合GST-CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體融合蛋白,經(jīng)PreScission蛋白酶特異性酶切,可獲得較純CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體蛋白。本實(shí)驗(yàn)提取的重組質(zhì)粒,用雙酶切鑒定轉(zhuǎn)化成功,測序CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體基因正確。分離純化所得蛋白,經(jīng)SDSPAGE電泳鑒定為目的蛋白(CaMN、CaMC和CaMNC),且純度較高;Bradford法測定蛋白濃度較高。以上結(jié)果提示,采用本實(shí)驗(yàn)方法可穩(wěn)定可靠獲得較高純度較高濃度的CaM鎂結(jié)合位點(diǎn)突變體,從而為深入研究CaM突變體的生物學(xué)特性及其功能奠定了基礎(chǔ)。
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(編輯武玉欣)
Vector Construction,protein Expression,purification and Identification of Calmodulin Mg2+Binding Site Mutants
ZHAO Meimi,LI Zhuo,SHAO Dongxue,LIANG Hongyue,YAN Shan,F(xiàn)ENG Rui,SUN Xuefei,GUO Feng,HAO Liying
(Department of Pharmaceutical Toxicology,School of Pharmacy,China Medical University,Shenyang 110122,China)
Objective To construct plasmid vectors of calmodulin(CaM)Mg2+binding site mutants,and to express,purify and identify the mutant proteins.Methods Three kinds of cDNAs coding for the mutated CaM were cloned into pGEX-6P-3 plasmid vectors.These recombinant plasmids were transfected into Escherichia coli BL21 to express GST fusion proteins of CaM mutants.The fusion proteins were purified with Glutathione-Sepharose 4B beads and PreScission protease.Results Both enzyme digestion analysis and DNA sequence identification proved the successful construction of the CaM mutant plasmids.SDS-PAGE results showed the high purity of each CaM mutant protein.The concentrations of three CaM mutants were around 1.0 mg/mL.Conclusion Prokayotic expression vectors of CaMMg2+binding site mutants were successfully developed,and the eligible CaM mutant proteins were obtained.This study provided an important basis for further study on CaM's biological function.
calmodulin;mutant;fusion protein;pGEX-6P-3
R96
B
0258-4646(2016)05-0394-04
10.12007/j.issn.0258-4646.2016.05.003
國家自然科學(xué)基金(31471091,31500930);醫(yī)學(xué)電生理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室開放基金(KeyME-2014-03)
趙美瞇(1978-),女,講師,博士.
郝麗英,E-mail:lyhao@mail.cmu.edu.cn
2015-09-02
網(wǎng)絡(luò)出版時間: