李俞辰,王永朋,戴家興,吳培,史懷璋
缺血性卒中病理生理過程中主要涉及的因素有氧化應(yīng)激、鈣超載、自噬和細(xì)胞凋亡等[1-3]。而神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi)線粒體的形態(tài)學(xué)變化在以上致病因素中均有著不容忽視的作用[3-4]。
線粒體是哺乳動(dòng)物細(xì)胞內(nèi)重要的細(xì)胞器,主要功能有產(chǎn)生能量,調(diào)節(jié)Ca2+穩(wěn)態(tài),參與氧化磷酸化、神經(jīng)突觸的形成及細(xì)胞凋亡等[5-6]。作為高度動(dòng)態(tài)的細(xì)胞器,在不同的細(xì)胞活動(dòng)和外界刺激下,線粒體數(shù)量、分布及形態(tài)會(huì)發(fā)生頻繁的變化,目前研究證實(shí)線粒體的這些動(dòng)態(tài)變化主要是通過自身分裂、融合的形態(tài)學(xué)變化而實(shí)現(xiàn)的[7]。近年來,線粒體形態(tài)學(xué)在神經(jīng)系統(tǒng)疾病中的相關(guān)研究逐漸增多。為此,本文就線粒體的分裂、融合,特別是其在缺血性卒中病理生理過程中的功能做一綜述。
1898年,德國(guó)科學(xué)家卡爾·本達(dá)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)的一些結(jié)構(gòu)時(shí)而呈線狀時(shí)而呈顆粒狀,并將其命名為線粒體。之后的研究逐步揭示,線粒體是一個(gè)動(dòng)態(tài)、巨大的管網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),并處于不斷的重組中,具有高度的可塑性[8]。一般情況下,由于線粒體分裂與融合活動(dòng)是同時(shí)進(jìn)行且速度基本相同從而能保持相對(duì)穩(wěn)定的形態(tài)和功能[7]。而病理?xiàng)l件下,這一動(dòng)態(tài)平衡將被破壞,當(dāng)分裂、融合中一方活性被抑制時(shí),另一方活性將顯著增強(qiáng),致使線粒體形態(tài)學(xué)平衡被破壞,并進(jìn)一步導(dǎo)致線粒體的功能障礙,如能量生成障礙、活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)產(chǎn)生增加和細(xì)胞凋亡異常增強(qiáng)等[9-10]。
分裂與融合各自的功能具有既互補(bǔ)又獨(dú)立的特性,并受到多種蛋白質(zhì)的精細(xì)調(diào)節(jié)[6],其中分裂可以增加線粒體的數(shù)量和分布,對(duì)于調(diào)控細(xì)胞不同部位的鈣離子水平、膜電位的維持及神經(jīng)元細(xì)胞器的運(yùn)輸?shù)扔兄匾饬x[11],調(diào)節(jié)分裂活動(dòng)的蛋白質(zhì)主要有:Drp1和Fis1等[12]。而融合則可促進(jìn)各類細(xì)胞內(nèi)信號(hào)的傳遞、膜電位的傳導(dǎo)及線粒體脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)的互補(bǔ)修復(fù)等[13-14],調(diào)節(jié)融合活動(dòng)的蛋白質(zhì)主要有:Mfn1、Mfn2、Opa1及Ugo1等[15]。除以上提到的蛋白外,Bcl-2蛋白家族,如Bax、Bcl-2及Bif-1也參與線粒體分裂、融合的調(diào)節(jié)。Wang[16]和Grohm[4]等已證實(shí),Bcl-2蛋白家族主要通過與Drp1等分裂、融合蛋白的協(xié)同作用,對(duì)線粒體的形態(tài)產(chǎn)生影響。
人類神經(jīng)元能量需求高,并承擔(dān)著興奮的產(chǎn)生與傳導(dǎo),遞質(zhì)的釋放與結(jié)合,以及穩(wěn)定機(jī)體內(nèi)環(huán)境等多種功能,而線粒體作為與細(xì)胞功能息息相關(guān)的細(xì)胞器,對(duì)神經(jīng)元尤為重要,特別在各類神經(jīng)系統(tǒng)疾病中,線粒體將參與整個(gè)損傷、應(yīng)激及修復(fù)過程中[17]。
急性缺血性卒中損傷不僅能同時(shí)上調(diào)神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡和自噬,還可誘導(dǎo)氧化應(yīng)激反應(yīng)產(chǎn)生大量的ROS,而且通過對(duì)Ca2+分布的影響造成線粒體內(nèi)鈣超載[18],但有研究認(rèn)為線粒體的分裂增加可能是上述損傷機(jī)制的上游事件[19]。經(jīng)Lackner等[20]證實(shí),促進(jìn)線粒體融合或抑制線粒體分裂可以減輕腦缺血再灌注后神經(jīng)元細(xì)胞的損傷,在大鼠大腦中動(dòng)脈栓塞模型(middle cerebral artery occlusion,MCAO)的相關(guān)實(shí)驗(yàn)中,抑制線粒體分裂,可使腦組織的梗死面積明顯減小[17,21]。綜上可知,線粒體形態(tài)學(xué)異常在缺血性卒中的病理生理過程中具有關(guān)鍵性作用。
2.1 線粒體分裂、融合與氧化應(yīng)激 線粒體是細(xì)胞內(nèi)氧化還原反應(yīng)和氧消耗的主要場(chǎng)所,并且是ROS的主要來源及作用位點(diǎn)[22]。氧化應(yīng)激反應(yīng)是指機(jī)體和細(xì)胞內(nèi)ROS產(chǎn)生和消除失衡。過量的ROS將造成DNA、蛋白質(zhì)的合成障礙,脂質(zhì)過氧化乃至細(xì)胞凋亡[23]。線粒體分裂、融合與氧化應(yīng)激及其所致的細(xì)胞凋亡關(guān)系密切。正常機(jī)體中,線粒體內(nèi)含有多種抗氧化酶類,其中超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD),特別是錳超氧化物歧化酶(manganese superoxide dismutase,Mn-SOD),能夠大量地消除ROS,對(duì)抗氧化應(yīng)激損傷[12]。
體外的糖氧剝奪模型(oxygen-glucose deprivation,OGD)和體內(nèi)的腦組織缺血再灌注實(shí)驗(yàn)(ischemia/reperfusion,I/R)都是用來模擬人類缺血性卒中的病理生理過程,且有關(guān)二者的研究均證實(shí),無論是氧化應(yīng)激反應(yīng)本身還是線粒體分裂活動(dòng)增加,均可使ROS產(chǎn)生增多,SOD含量降低,進(jìn)一步惡化氧化應(yīng)激所造成的損傷甚至引起細(xì)胞凋亡[19,24]。Tian等[25]通過使用Drp1的選擇性抑制劑Mdivi1作用于體外的OGD和再灌注模型,可以顯著地降低線粒體內(nèi)ROS水平,減輕氧化應(yīng)激損傷,在ROS介導(dǎo)的線粒體凋亡途徑中起到保護(hù)作用。由此可見,急性卒中后,線粒體的分裂活動(dòng)增強(qiáng),與氧化應(yīng)激損傷之間有密切的聯(lián)系,并且二者可協(xié)同作用,造成細(xì)胞凋亡及組織損傷。
2.2 線粒體分裂、融合與鈣超載 1981年有研究就已發(fā)現(xiàn)Ca2+可誘導(dǎo)線粒體出現(xiàn)片段化現(xiàn)象。隨后的研究證實(shí),Ca2+可通過介導(dǎo)Drp1的磷酸化和去磷酸化作用來影響線粒體的分裂、融合平衡,其中細(xì)胞內(nèi)的Ca2+可激活鈣調(diào)神經(jīng)磷酸酶(calcineurin,CN),也稱蛋白磷酸酶2B(protein phosphatase 2B,PP2B),引起Drp1的磷酸化及向線粒體外膜的聚集,促進(jìn)線粒體的分裂,間接影響細(xì)胞的存亡[26-27]。另外,某些促細(xì)胞凋亡刺激,如過氧化氫(hydrogen peroxide,H2O2)和花生四烯酸等,可導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)Ca2+自內(nèi)質(zhì)網(wǎng)(endoplasmic reticulum,ER)向線粒體釋放,引發(fā)線粒體內(nèi)鈣超載和Caspase介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡級(jí)聯(lián)程序[28]。Han等[29]對(duì)神經(jīng)元的研究發(fā)現(xiàn),Ca2+可以通過電壓依賴性鈣離子通道(voltage-dependent calcium channels,VDCC)進(jìn)入細(xì)胞,然后激活Ca2+/鈣調(diào)蛋白依賴性蛋白激酶Iα,誘導(dǎo)線粒體活動(dòng)停止和分裂增加。
在PC12細(xì)胞的OGD模型中,Ca2+顯像和免疫熒光掃描結(jié)果顯示,通過使用Drp1選擇性抑制劑抑制線粒體分裂后,雖然細(xì)胞質(zhì)中Ca2+水平無明顯變化,但可以顯著降低ER中Ca2+的釋放和線粒體中Ca2+的攝取,一定程度上防止了鈣超載損傷的出現(xiàn)[25]。但先前Szabadkai等[30]研究顯示Drp1促進(jìn)線粒體分裂的同時(shí),可影響線粒體內(nèi)Ca2+的升高,并減輕鈣離子介導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。因此Ca2+分布與線粒體形態(tài)之間的相互關(guān)系還有待進(jìn)一步研究確認(rèn)。
此外Ca2+信號(hào)還可以通過其他機(jī)制調(diào)節(jié)線粒體的分裂、融合,例如新近發(fā)現(xiàn)的Miro三磷酸鳥苷(guanosine triphosphate,GTP)酶類(主要是Miro1和Miro2),正常情況下,Miro1/2能促進(jìn)線粒體的融合,但在高Ca2+濃度的情況下則會(huì)加快線粒體分裂[15]。
2.3 線粒體分裂、融合與細(xì)胞凋亡 缺血性卒中的多種致病機(jī)制最終都能引起細(xì)胞的凋亡,并且這種增強(qiáng)的凋亡變化與線粒體分裂、融合失衡密切相關(guān)[31-32]。體內(nèi)外試驗(yàn)均證實(shí),急性腦缺血再灌注損傷中,線粒體分裂的增加可以促進(jìn)細(xì)胞色素C(cytochrome C,Cyt-C)的活化、釋放及細(xì)胞凋亡[33]。在神經(jīng)元凋亡機(jī)制的研究中,Cyt-C的活化被認(rèn)為是線粒體凋亡途徑和Caspase介導(dǎo)凋亡途徑的關(guān)鍵一步,Cyt-C是呼吸鏈的重要組成部分,胞質(zhì)內(nèi)Cyt-C水平的升高,會(huì)促進(jìn)凋亡小體的形成[凋亡蛋白酶活化因子1,caspase-9酶原和三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)等組成],進(jìn)而導(dǎo)致線粒體呼吸活性的喪失和后續(xù)的級(jí)聯(lián)凋亡反應(yīng)[34]。
調(diào)控Cyt-C釋放的因素很多,目前研究較多的是Bax蛋白和線粒體分裂、融合蛋白如Opa1、Drp1等。Bax蛋白除可促進(jìn)Cyt-C釋放啟動(dòng)凋亡反應(yīng)外,在細(xì)胞受到損傷刺激時(shí),還可與增加的Drp1蛋白協(xié)同作用于線粒體外膜,促進(jìn)線粒體分裂,間接啟動(dòng)凋亡[4]。Bax和Drp1蛋白還可使線粒體外膜的通透性增加,促進(jìn)Cyt-C的釋放[24]。使用Opa1si RNA抑制Opa1表達(dá)可引起線粒體的片段化,并能觀察到Cyt-C釋放和細(xì)胞凋亡增加[35],相反,通過Drp1抑制劑(Mdivi1)可以降低線粒體的片段化,減少細(xì)胞色素C的釋放、凋亡蛋白的活化及細(xì)胞凋亡[7,36],其他分裂、融合蛋白的實(shí)驗(yàn)結(jié)果同樣支持類似的結(jié)論。另外,線粒體分裂、融合失衡也與上述鈣超載,氧化應(yīng)激相互促進(jìn),導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。凋亡早期線粒體就已發(fā)生顯著的片段化,線粒體的分裂、融合蛋白參與細(xì)胞凋亡,調(diào)控凋亡的分子也能夠改變線粒體的形態(tài)[32]。
2.4 線粒體分裂融合與線粒體自噬 自噬在急性缺血性卒中的早期就已出現(xiàn),其具體功能還存在爭(zhēng)議。一方面,自噬是細(xì)胞自體修復(fù)的重要過程,可以維持細(xì)胞內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài)而使細(xì)胞避免受到進(jìn)一步損傷[37];另一方面,有的研究顯示,缺血缺氧損害后,自噬又可與凋亡信號(hào)產(chǎn)生交互協(xié)同作用,這一作用能加重海馬區(qū)神經(jīng)元細(xì)胞損傷甚至導(dǎo)致細(xì)胞死亡[2]。
線粒體同樣存在自噬,即受損或過剩線粒體的選擇性清除過程,并受胞內(nèi)各種因素的精密調(diào)節(jié),是細(xì)胞清除損傷線粒體和維持自身穩(wěn)態(tài)的一種重要調(diào)節(jié)機(jī)制[38]。線粒體分裂增加使線粒體數(shù)量增多,可以促進(jìn)線粒體自噬,而自噬的激活又能增強(qiáng)線粒體的分裂,無論是過度的自噬還是線粒體分裂都可進(jìn)一步加重細(xì)胞損傷。
Drp1磷酸化對(duì)線粒體的分裂和自噬有顯著促進(jìn)作用,在有關(guān)小鼠線栓法大鼠大腦中動(dòng)脈阻斷(middle cerebral artery occlusion,MCAO)實(shí)驗(yàn)中,研究者可以檢測(cè)到Drp1磷酸化作用逐漸增強(qiáng)并在模型成功后14 d達(dá)到高峰[31],也就代表著線粒體自噬在這期間也存在活性增強(qiáng)的過程。Cavallucci等[39]用哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)抑制劑雷帕霉素作用于腦損傷的體外模型,可以得到線粒體自噬和分裂都增強(qiáng)的結(jié)果,并高度懷疑是自噬誘導(dǎo)線粒體分裂的增強(qiáng),但卒中時(shí)線粒體形態(tài)變化與自噬的確切關(guān)系還有待證實(shí)。
急性缺血性卒中的缺血半暗帶,一直是醫(yī)生治療和改善患者預(yù)后的關(guān)鍵[18]。不斷積累的科研成果,使醫(yī)生對(duì)線粒體三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的認(rèn)識(shí)逐漸深入,線粒體分裂融合是細(xì)胞內(nèi)獨(dú)特而復(fù)雜的過程,其在卒中病理生理過程中發(fā)揮著重要作用,眾多研究也通過使用Mdivi1等抑制劑來降低線粒體分裂水平,多數(shù)得到了如Cyt-C釋放減少、氧化應(yīng)激損傷減輕和細(xì)胞凋亡緩解等良好效果。然而,其具體機(jī)制目前尚不能確切闡明,特別是其在出血性卒中領(lǐng)域的研究目前還很少。因此,未來需要醫(yī)學(xué)研究人員對(duì)線粒體分裂融合機(jī)制進(jìn)行深入的研究,以期為今后各類疾病的治療提供新的靶點(diǎn)。
1 Chen T, Liu W, Chao X, et al. Neuroprotective effect of osthole against oxygen and glucose deprivation in rat cortical neurons:Involvement of mitogen-activated protein kinase pathway[J]. Neuroscience, 2011,183:203-211.
2 Koike M, Shibata M, Tadakoshi M, et al. Inhibition of autophagy prevents hippocampal pyramidal neuron death after hypoxic-ischemic injure[J]. Am J Pathol,2008, 172:454-469.
3 Zhang L, He Z, Zhang Q, et al. Exercise pretreatment promotes mitochondrial dynamic protein OPA1 expression after cerebral ischemia in rats[J]. Int J Mol Sci, 2014, 15:4453-4463.
4 Grohm J, Kim SW, Mamrak U, et al. Inhibition of Drp1 provides neuroprotection in vitro and in vivo[J]. Cell Death Differ, 2012, 19:1446-1458.
5 Nunnari J, Suomalainen A. Mitochondria:in sickness and in health[J]. Cell, 2012, 148:1145-1159.
6 Cheng A, Hou Y, Mattson MP. Mitochondria and neuroplasticity[J]. ASN Neuro, 2010, 2:e00045.
7 Chen H, Chan DC. Emerging functions of mammalian mitochondrial fusion and fission[J]. Hum Mol Genet,2005, 14:R283-289.
8 Rizzuto R, Pinton P, Carrington W, et al. Close contacts with the endoplasmic reticulum as determinants of mitochondrial Ca2+responses[J]. Science, 1998,280:1763-1766.
9 Westermann B. Mitochondrial fusion and fi ssion in cell life and death[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2010, 11:872-884.
10 Anne Stetler R, Leak RK, Gao Y, et al. The dynamics of the mitochondrial organelle as a potential therapeutic target[J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2013, 33:22-32.
11 Chen H, McCaffery JM, Chan DC. Mitochondrial fusion protects against neurodegeneration in the cerebellum[J]. Cell, 2007, 130:548-562.
12 王穎, 余劍波. 線粒體抗氧化應(yīng)激系統(tǒng)與融合-分裂研究進(jìn)展[J]. 臨床麻醉雜志, 2014, 30:618-619.
13 Benard G, Bellance N, James D, et al. Mitochondrial bioenergetics and structural network organization[J]. J Cell Sci, 2007, 120:838-848.
14 Jezek P, Plecita-Hlavata L. Mitochondrial reticulum network dynamics in relation to oxidative stress, redox regulation, and hypoxia[J]. Int J Biochem Cell Biol,2009, 41:1790-1804.
15 趙光舉, 盧中秋, 姚詠明. 哺乳動(dòng)物細(xì)胞線粒體融合-分裂與鈣離子信號(hào)的關(guān)系[J]. 生理科學(xué)進(jìn)展, 2010, 41:171-176.
16 Wang DB, Uo T, Kinoshita C, et al. Bax interacting factor-1 promotes survival and mitochondrial elongation in neurons[J]. J Neurosci, 2014, 34:2674-2683.
17 Candelario-Jalil E. Injury and repair mechanisms in ischemic stroke:considerations for the development of novel neurotherapeutics[J]. Curr Opin Investig Drugs,2009, 10:644-654.
18 Pamenter ME, Perkins GA, McGinness AK, et al.Autophagy and apoptosis are differentially induced in neurons and astrocytes treated with an in vitro mimic of the ischemic penumbra[J]. PLoS One, 2012, 7:e51469.
19 Owens K, Park JH, Gourley S, Jones H, et al.Mitochondrial dynamics:cell-type and hippocampal region specific changes following global cerebral ischemia[J]. J Bioenerg Biomembr, 2015, 47:13-31.
20 Lackner LL, Nunnari JM. The molecular mechanism and cellular functions of mitochondrial division[J].Biochim Biophys Acta, 2009, 1792:1138-1144.
21 Zhao YX, Cui M, Chen SF, et al. Amelioration of ischemic mitochondrial injury and Bax-dependent outer membrane permeabilization by Mdivi-1[J]. CNS Neurosci Ther, 2014, 20:528-538.
22 Murphy MP. How mitochondrial produce reactive oxygen species[J]. Biochem J, 2009, 417:1-13.
23 Galley HF. Oxidative stress and mitochondrial dysfunction in sepsis[J]. Br J Anaesth, 2011, 107:57-64.
24 Park J, Lee J, Choi C. Mitochondrial network determines intercellular ROS dynamics and sensitivity to oxidative stress through switching intermitochondrial messengers[J]. PLos One, 2011, 6:e23211.
25 Tian Y, Li B, Shi WZ. Dynamin-related protein 1 inhibitors protect against ischemic toxicity through attenuating mitochondrial Ca2+uptake from endoplasmic reticulum store in PC12 cells[J]. Int J Mol Sci, 2014, 15:3172-3185.
26 Cereghetti GM, Stangherlin A, de Brito OM, et a1. Dephosphorylation by calcineurin regulates translocation of Drpl to mitochondria[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105:15803-15808.
27 Cribbs JT, Strack S. Reversible phosphorylation of Drpl by cyclic AMP-dependent protein kinase and calcineurin regulates mitochondria1 fission and cell death[J]. EMBO Rep, 2007, 8:939-944.
28 Rizzuto R, Pinton P, Ferrari D. Calcium and apoptosis:Facts and hypotheses[J]. Oncogene, 2003,22:8619-8627.
29 Han XJ, Lu YF, Li SA, et a1. CaM kinase I alphainduced phosphorylation of Drpl regulates mitochondrial morphology[J]. J Cell Biol, 2008,182:573-585.
30 Szabadkai G, Simoni AM, Chami M, et al. Drp-1-dependent division of the mitochondrial network blocks intraorganellar Ca2+waves and protects against Ca2+-mediated apoptosis[J]. Mol Cell, 2004, 16:59-68.
31 Liu W, Tian F, Kurata T, et al. Dynamic changes of mitochondrial fusion and fission proteins after transient cerebral ischemia in mice[J]. J Neurosci Res,2012, 90:1183-1189.
32 蔣春筍, 肖偉明, 陳佺. 線粒體分裂、融合與細(xì)胞凋亡[J].生物物理學(xué)報(bào), 2007, 4:256-264.
33 Youle RJ, Karbowski M. Mitochondrial fission in apoptosis[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2005, 6:657-663.
34 Zhang N, Wang S, Li Y, et al. A selective inhibitor of DRP1, mdivi1, acts against cerebral ischemia/reperfusion injury via an anti-apoptotic pathway in rats[J]. Neurosci Lett, 2013, 535:104-109.
35 Green DR, Kroemer G. The pathophysiology of mitochondria cell death[J]. Science, 2004, 305:626-629.36 張寧, 王士雷, 李淑虹. 線粒體分裂蛋白抑制劑在大鼠腦缺血再灌注損傷中的作用及其機(jī)制(英文)[J]. 現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2013, 13, 3410-3414.
37 Erlich S, Alexandrovich A, Shohami E, et al. Rapamycin is a neuroprotective treatment for traumatic brain injury[J]. Neurobiol Dis, 2007, 26:86-93.
38 Bauvy C, Gane P, Arico S, et al. Autophagy delays sulindac sulfide-induced apoptosis in the human intestinal colon cancer cell line HT-29[J]. Exp Cell Res,2001, 268:139-149.
39 Cavallucci V, Bisicchia E, Cencioni MT, et al. Acute focal brain damage alters mitochondrial dynamics and autophagy in axotomized neurons[J]. Cell Death Dis,2014, 5:e1545.