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    基于大體積循環(huán)進(jìn)樣的低豐度蛋白質(zhì)富集

    2014-12-26 01:58:22張權(quán)青高小迪張維冰張慶合
    色譜 2014年11期
    關(guān)鍵詞:豬肝餾分組分

    張權(quán)青, 張 磊, 高小迪, 張維冰, 張慶合*

    (1. 中國(guó)計(jì)量科學(xué)研究院,北京100029;2. 華東理工大學(xué),上海市功能性材料化學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200237)

    生物蛋白質(zhì)在大小、相對(duì)豐度、酸堿度和疏水性等方面具有很大的差異。就相對(duì)含量而言,血液中的高豐度與低豐度蛋白質(zhì)含量甚至相差達(dá)11 個(gè)數(shù)量級(jí),這也導(dǎo)致一些低豐度蛋白質(zhì)很難被分析檢測(cè)和研究。對(duì)生物功能產(chǎn)生重要影響的修飾蛋白質(zhì)、與重大疾病相關(guān)的蛋白質(zhì)在體液或組織中的含量通常很低,也使對(duì)低豐度蛋白質(zhì)檢測(cè)方法的研究成為生物分析領(lǐng)域的一個(gè)重要研究課題。

    對(duì)蛋白質(zhì)樣品中低豐度組分的檢測(cè)通常需采用預(yù)富集的方法,通過(guò)提高其相對(duì)含量來(lái)有效地提高檢測(cè)靈敏度和檢測(cè)精度。常用的蛋白質(zhì)富集技術(shù)主要有固相金屬離子親和色譜法(IMAC)[1-3]、分子印跡技術(shù)[4]、親和色譜技術(shù)[5]、特殊選擇性材料富集[6,7]、循環(huán)進(jìn)樣[8,9]等。固相金屬離子親和色譜法[10]是最常用的蛋白質(zhì)富集方法之一,錢小紅等[11]利用二氧化鈦對(duì)騰沖嗜熱厭氧菌磷酸化蛋白質(zhì)進(jìn)行富集研究,鑒定到25 個(gè)磷酸化蛋白質(zhì);梁鑫淼等[12]利用氧化鋁進(jìn)行糖肽的選擇性富集,從辣根過(guò)氧化物酶解液中獲得16 個(gè)糖肽,從IgG 酶解液中獲得12 個(gè)糖肽。通過(guò)蛋白質(zhì)印跡聚合物材料去除樣品中的高含量蛋白質(zhì),可以有效避免其對(duì)低豐度蛋白質(zhì)檢測(cè)的影響,能夠?qū)⒅械秃康鞍踪|(zhì)的鑒定數(shù)量提高20%以上[13]。

    循環(huán)進(jìn)樣方式可以有效提高色譜分析的絕對(duì)上樣量。Lv 等[8]采用循環(huán)進(jìn)樣結(jié)合超高效液相色譜(UPLC)-四極桿飛行時(shí)間質(zhì)譜對(duì)白花前胡中的6種同分異構(gòu)體進(jìn)行了分離和鑒定。杜敏等[9]發(fā)展了一種基于微流控芯片的生物樣品循環(huán)給樣富集方法,大大提高了信號(hào)強(qiáng)度,降低了檢出限。本文發(fā)展了一種大體積循環(huán)進(jìn)樣的方法,通過(guò)增加進(jìn)樣量與進(jìn)樣次數(shù)提高蛋白質(zhì)樣品的富集效率。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 儀器與試劑

    依利特P1201 系列高效液相色譜系統(tǒng)(配UV1201 紫外-可見(jiàn)波長(zhǎng)檢測(cè)器,大連依利特分析儀器有限公司);超純水儀(德國(guó)Sartorius 公司);Heal Force Neofage 1600R 高速離心機(jī)(力康生物醫(yī)療科技控股有限公司)。

    甲醇、乙腈(色譜純,天津科密歐化學(xué)試劑有限公司);乙酸(色譜純)、乙酸銨(分析純)(上海凌峰化學(xué)試劑有限公司);三氟乙酸(色譜純,上海晶純?cè)噭┯邢薰荆?;液氮(普通氮?dú)?,上海松閔氣體技術(shù)有限公司)。

    1.2 豬肝蛋白質(zhì)的提取

    [14]的蛋白質(zhì)提取方法,取新鮮豬肝10 g,攪拌碾磨成泥漿,加入10 倍體積的5% (v/v)乙酸溶液,在4 ℃下攪拌過(guò)夜;在室溫下以10 000 g離心30 min 后取上清液;沉淀中加入等體積乙酸混合,相同條件下離心,合并上清液,得豬肝蛋白質(zhì)樣品。豬肝蛋白質(zhì)樣品用流動(dòng)相溶解后過(guò)0.45 μm油膜后備用。

    1.3 實(shí)驗(yàn)條件

    色譜柱:SinoChrom ODS-BP 色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm,大連依利特分析儀器公司);流動(dòng)相:A 為0.1%三氟乙酸(TFA)水溶液,B 為0.1%TFA 乙腈溶液。線性洗脫程序:0 ~10 min,5% B ~40% B;10 ~13 min,40%B ~100%B;13 ~20 min,100% B。流速:1.0 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng):210 nm;柱溫:室溫。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 豬肝蛋白質(zhì)分離條件的優(yōu)化

    210 nm 和280 nm 為生物蛋白質(zhì)樣品通常的檢測(cè)波長(zhǎng)。在相同分離條件下,210 nm 時(shí)的色譜峰信號(hào)響應(yīng)明顯強(qiáng)于280 nm,因此選擇210 nm 作為檢測(cè)波長(zhǎng)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    流動(dòng)相的種類與梯度條件對(duì)樣品的分離有著重要的影響。以SinoChrom ODS-BP 色譜柱進(jìn)行反相液相色譜分離流動(dòng)相條件優(yōu)化,在最佳色譜分離條件(見(jiàn)1.3 節(jié))下得到圖1 所示的分離結(jié)果。

    Fig.1 豬肝蛋白質(zhì)的反相液相色譜分離譜圖Fig.1 Chromatogram of pork liver separated by RPLC

    2.2 進(jìn)樣的重復(fù)性

    在大體積循環(huán)進(jìn)樣中,通過(guò)增加進(jìn)樣次數(shù)來(lái)增加樣品的絕對(duì)進(jìn)樣量。根據(jù)色譜基本原理,在線性色譜條件下,同一物質(zhì)在同樣的色譜分離條件下保留時(shí)間不變,因此在多次色譜實(shí)驗(yàn)中對(duì)相同保留時(shí)間段進(jìn)行收集,得到的餾分應(yīng)包含相同的組分。進(jìn)樣重復(fù)性的好壞,直接影響到組分收集的一致性。

    通過(guò)3 次重復(fù)進(jìn)樣,每次25 μL,考察在優(yōu)化的色譜分離條件下豬肝蛋白質(zhì)分離的重復(fù)性。圖1 中峰1(4.57 min)和峰2(9.88 min)峰高的RSD(n =3)分別為5.9%和5.5%,表明系統(tǒng)及所發(fā)展的方法具有良好的進(jìn)樣重復(fù)性。

    2.3 低豐度組分的選擇與富集效率的評(píng)價(jià)

    根據(jù)RPLC 的洗脫原理,不同極性組分主要依靠疏水性進(jìn)行分離。相對(duì)而言,在0 ~10 min 對(duì)應(yīng)的是強(qiáng)極性流動(dòng)相,其收集的餾分為弱保留組分;在10 ~13 min 對(duì)應(yīng)的流動(dòng)相極性逐漸減弱,將其收集的餾分定義為中等極性組分。根據(jù)色譜峰的信號(hào)強(qiáng)弱,選取保留時(shí)間為7 ~9 min、11 ~13 min 的中等極性組分及17 ~19 min 的較強(qiáng)保留組分作為研究對(duì)象評(píng)價(jià)方法。保留時(shí)間為9 ~11 min 時(shí),色譜峰的信號(hào)較強(qiáng),經(jīng)過(guò)循環(huán)進(jìn)樣富集后信號(hào)飽和,因此未選取此組分段進(jìn)行研究。

    采用大體積循環(huán)進(jìn)樣的方式,進(jìn)樣11 次,每次上樣量500 μL。依次收集選擇的保留時(shí)間段的組分,并將其分別合并后,氮?dú)獯蹈?,用流?dòng)相B 溶解定容,再次進(jìn)行色譜分離。

    圖2 中比較了經(jīng)過(guò)循環(huán)富集后17 ~19 min 的中等極性組分與原始圖譜的差別。圖3 和圖4 中分別比較了7 ~9 min、11 ~13 min 的中等極性組分與原始譜圖的差別。

    從圖2 ~圖4 可以看出,采用循環(huán)富集的方法可以將不同時(shí)間段餾分有效去除,而其他富集目標(biāo)組分的含量得到有效提高。顯然,這種方法可同時(shí)用于高豐度蛋白質(zhì)的去除以及低豐度蛋白質(zhì)的富集。

    在理想情況下,對(duì)于所收集到的餾分,其中每一種組分的絕對(duì)量為進(jìn)樣次數(shù)與進(jìn)樣體積以及其在原始樣品中濃度的乘積。對(duì)于17 ~19 min 餾分中的每一種組分而言,其在富集后再次溶解的50 μL 樣品中的濃度的理論值應(yīng)為其在原始樣品中濃度的110 倍。17 ~19 min 時(shí)間段的組分中,富集前因濃度太低譜圖中未出現(xiàn)色譜峰;經(jīng)過(guò)大體積的循環(huán)進(jìn)樣后,出現(xiàn)了新的色譜峰,其對(duì)應(yīng)的保留時(shí)間為18.07、18.29 和19.15 min。

    Fig.2 豬肝蛋白質(zhì)17 ~19 min 組分富集(a)前、(b)后的色譜圖Fig.2 Chromatograms of 17-19 min fraction of pork liver proteins (a)before and(b)after enrichment

    Fig.3 豬肝蛋白質(zhì)11 ~13 min 組分富集(a)前、(b)后的色譜圖Fig.3 Chromatograms of 11-13 min fraction of pork liver proteins (a)before and (b)after enrichment

    Fig.4 豬肝蛋白質(zhì)7 ~9 min 組分富集(a)前、(b)后的色譜圖Fig.4 Chromatograms of 7-9 min fraction of pork liver proteins (a)before and (b)after enrichment

    對(duì)于11 ~13 min 的餾分以及7 ~9 min 的餾分,用流動(dòng)相B 溶解至100 μL,其理論富集倍數(shù)皆為55,選擇在富集前只有微弱信號(hào)的8.81、8.92、11.38 與12.58 min 組分進(jìn)行研究,結(jié)果見(jiàn)表1??梢钥闯?,試驗(yàn)與理論富集倍數(shù)相近,說(shuō)明所發(fā)展的方法具有很好的穩(wěn)定性和重復(fù)性。

    對(duì)于不同的色譜峰,實(shí)際富集倍數(shù)有一些差別。可能是因?yàn)樵忌V圖中組分豐度很低,定量結(jié)果誤差較大,使得富集倍數(shù)的計(jì)算產(chǎn)生較大偏差,但這一現(xiàn)象并不影響所發(fā)展方法的實(shí)用性。

    表1 不同色譜峰的富集效果Table 1 Enrichment results of different chromatographic peaks

    3 結(jié)論

    本文發(fā)展了一種大體積循環(huán)進(jìn)樣的蛋白質(zhì)樣品富集分離處理方法,也可用于去除高豐度蛋白質(zhì)對(duì)低豐度蛋白質(zhì)檢測(cè)的干擾。通過(guò)增加蛋白質(zhì)樣品的上樣體積,提高低豐度蛋白質(zhì)的絕對(duì)含量;進(jìn)一步采用增加樣品進(jìn)樣循環(huán)次數(shù)的方法,提高蛋白質(zhì)的富集效率。實(shí)驗(yàn)與理論富集效率相近。所發(fā)展的方法為生物蛋白質(zhì)樣品研究提供了一種新的富集制備及檢測(cè)方法。

    參考文獻(xiàn):

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