黃 波 王曉東 郎賢平
(遼寧醫(yī)學院附屬第一醫(yī)院胸外科,遼寧 錦州 121000)
小細胞肺癌(SCLC)是一種特殊類型的肺癌,占肺癌的15%~20%。SCLC侵襲性強,生長迅速且早期容易出現(xiàn)遠處轉(zhuǎn)移〔1〕。雖然SCLC對化療和放療敏感,但它容易復發(fā)和耐藥。因此尋找SCLC的相關(guān)基因尤顯重要。富含AT-序列結(jié)合蛋白1(SATB1)是一種核基質(zhì)結(jié)合區(qū)結(jié)合蛋白,參與染色質(zhì)合成和組織特異性基因表達〔2〕。 SATB1主要表達在胸腺細胞其調(diào)控T細胞的發(fā)育與成熟〔3〕。 有報道顯示SATB1與乳腺癌的轉(zhuǎn)移及預后不良有一定的相關(guān)性〔4〕。RNA干擾SATB1可引起侵襲性較強的癌細胞超過1 000個基因的表達改變,并能有效地抑制細胞的增殖,侵襲,腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移。SATB1-RNAi技術(shù)已證實其對于肝癌細胞、胃癌細胞等腫瘤細胞的侵襲能力均有一定的抑制作用〔5~9〕,而在SCLC細胞中SATB1基因的干擾RNA的效果尚缺乏報道。本研究將針對SATB1-siRNA對SCLC的作用進行初步探討。
1.1材料 人SCLC細胞株NCI-H446由中國科學院細胞庫引進。新生小牛血清購于杭州四季青公司,RPMI-1640培養(yǎng)基和lipofect2000購于美國invitrogen公司。pRNAT-U6.1/Neo購于上海閃晶生物公司,大小6.4 kb。攜帶有綠色熒光蛋白報告基因,其兩端分別帶有BamH I和EcoR I.酶切位點。菌株JM109、DH5α均購于大連寶生物公司。引物設計、合成以及測序由大連寶生物公司完成。SATB1-siRNA-1,SATB1-siRNA-2為RNA干擾序列,SATB1-siRNA-N為無意義干擾序列。
1.2siRNA載體構(gòu)建 將合成的SATB1基因的siRNA引物si-1正義鏈:5'-GATCCCCGGATTTGGAAGAGAGTGTCTTCAAGAGAGACACTCTCTTCCAAATCCTTTTTGGAAA- 3';反義鏈:5'-AGCTTTTCCAAAAAGGATTTGGAAGAGAGTGTCTCTCTT GAAGACACTCTCTTCCAAATCCGGG-3';si-2正義鏈:5'-GATCCCCGTCCACCTTGTCTTCTCTCTTCAAGAGAGAGAGAAGACAAG GTGGACTTTTTGGAA A-3'反義鏈:5'-AGCTTTTCCAAAAAGTCCACCTTGTCTTCTCTCTCTCTTGAAGAGAGAAGACAAGGTGGAC GGG-3';si-N正義鏈:5'-GATCCGCGAGACCTCAGTATGTTACCTGTGAAGTAACATACCACAGATGGGGCTGAGGTCTCGCTTTTTTG-3'。退火并將退火產(chǎn)物與RNAi-Ready pSIREN-DNR載體4℃過夜充分連接。熱轉(zhuǎn)化至DH5α中,分別命名為SATB1-siRNA-1,SATB1-siRNA-2,SATB1-siRNA-N,涂布平板后,37℃過夜培養(yǎng)。從轉(zhuǎn)化平板上挑取陽性單菌落,進行擴增,檢測陽性克隆,并測序。
1.3細胞轉(zhuǎn)染 轉(zhuǎn)染前1 d,NCI-H446細胞用胰酶消化,接種于6 孔板,加入含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基,當細胞達到60%~70%融合時,準備轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染當天更換為無胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基,每個培養(yǎng)孔1 000 μl。取lipofect2000 10 μl,按照轉(zhuǎn)染試劑∶DNA(μg)為10∶2 的比例加入構(gòu)建成功的載體DNA,混勻后室溫孵育30 min,加入到6孔板中培養(yǎng),6 h后加入100 μl胎牛血清。轉(zhuǎn)染48 h后,熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染情況。轉(zhuǎn)染成功后檢測各項指標。
1.4Western印跡鑒定沉默效果 收取部分細胞,加入預冷裂解緩沖液,剪碎,超聲勻漿,低溫超速離心。吸取上清液,Lowry法測定蛋白濃度,SDS-PAGE凝膠90 V 電泳3 h 后轉(zhuǎn)印。洗膜后1%BSA封閉非特異性抗原2 h。緩沖液洗膜,與一抗(1∶250)4℃孵育過夜。洗膜后與堿性磷酸酶標記二抗(1∶200)室溫下孵育2 h。NBT/BCIP顯色,以NC膜上出現(xiàn)清晰的棕褐色條帶為陽性,終止顯色,漂洗并干燥后避光保存。
1.5細胞增殖能力的檢測(MTT法) 用0.25%的胰蛋白酶消化轉(zhuǎn)染后24 h的4組細胞(未轉(zhuǎn)染組、SATB1-siRNA-1組、SATB1-siRNA-2組及SATB1-siRNA-N組),以含有10%胎牛血清的1640培養(yǎng)液配置成單細胞懸液。以每孔2×103個細胞接種于96孔板中,每孔體積0.2 ml,每組細胞接種6個孔,并以培養(yǎng)液為空白對照,以接種后24、48、72、96 h為4個觀察時間點,共鋪4塊板。置37℃,5%CO2孵箱中培養(yǎng)。24 h后取出其中一塊板,每孔加入5 mg/ml的MTT 20 μl, 37℃,5%CO2條件下繼續(xù)培養(yǎng)4 h。棄上清后每孔加入150 μl DMSO,并震蕩10 min使MTT充分溶解。用490 nm波長的酶標儀,測定各孔的吸光度值(OD值)。
1.6轉(zhuǎn)染后細胞侵襲能力的檢測 將轉(zhuǎn)染后24 h四組細胞進行如下操作:水化后的Transwell小室放入24孔培養(yǎng)板中,在小室外加含15%胎牛血清1640培養(yǎng)液500 μl,在小室內(nèi)加入200 μl腫瘤細胞懸液,細胞數(shù)為5×103,培養(yǎng)液為含2%胎牛血清1640培養(yǎng)液,每組重復6個樣本。常規(guī)培養(yǎng)24 h,取出Transwell小室,PBS淋洗,用棉簽小心擦去微孔膜上層細胞,HE溶液染色。在顯微鏡下計數(shù)移至微孔膜下層的細胞數(shù),每個樣本計數(shù)10個視野。
1.7流式細胞儀分析細胞凋亡 將轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1、SATB1-siRNA-2及SATB1-siRNA-N 48 h的NCI-H446細胞未轉(zhuǎn)染的NCI-H446細胞在孵育24 h后收集,70%冰乙醇固定1 h,冷PBS洗2次,計數(shù)約1×104個細胞,重懸于200 μl binding Buffer,10 μl PI(50 mg/ml),輕輕混勻,室溫避光處放置15 min,1 h內(nèi)上流式細胞儀檢測。
1.8統(tǒng)計學方法 采用SPSS17.0軟件行t檢驗及χ2檢驗。
2.1轉(zhuǎn)染結(jié)果判定 因構(gòu)建的siRNA載體含有綠色熒光蛋白,轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1、SATB1-siRNA-2、 SATB1-siRNA-N后,熒光顯微鏡觀察細胞核膜及胞質(zhì)內(nèi)可見綠色的熒光(圖1,圖2),未轉(zhuǎn)染組無熒光表達,表明成功將質(zhì)粒轉(zhuǎn)入NCI-H446細胞。轉(zhuǎn)染質(zhì)粒后NCI-H446細胞略腫脹,部分細胞變圓,死亡,而轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1、SATB1-siRNA-2后細胞的數(shù)量明顯少于轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-N和空白對照組。
圖1 轉(zhuǎn)染siRNA-1的NCI-H446細胞(×100)
2.2SATB1-siRNA對SATB1蛋白表達的影響 Western印跡檢測SATB1蛋白表達水平,可見 86 kD處一條特異條帶。凝膠成像系統(tǒng)灰度掃描 SATB1現(xiàn)色條帶,轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2組與轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-N和空白對照組相比,SATB1蛋白表達量明顯下降(圖3)。
圖2 轉(zhuǎn)染siRNA-1的NCI-H446細胞(×100)
1為空白對照組,2為轉(zhuǎn)染siRNA-1組,3為轉(zhuǎn)染siRNA-N組,4為轉(zhuǎn)染siRNA-2組
2.3轉(zhuǎn)染前后細胞增殖能力的改變 轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2的NCI-H446細胞的增殖(17.27±1.19和15.96±1.85)與轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA -N和空白對照組細胞相比較明顯受到抑制(9.07±1.36和11.81±1.65)。但轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-N和空白對照組細胞之間以及轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2組細胞沒有顯著的區(qū)別。見表1。
表1 不同組細胞吸光度值±s,n=5)
2.4轉(zhuǎn)染前后細胞凋亡改變 細胞凋亡率SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2轉(zhuǎn)染的細胞均顯著高于轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA -N和空白對照組細胞。
2.5轉(zhuǎn)染后細胞侵襲能力的檢測 轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2組在膜上的細胞數(shù)量(47±4和39±7)明顯少于轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA -N和空白對照組細胞數(shù)量(78±3和75±6,P<0.05)。但轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA -N和空白對照組細胞之間以及轉(zhuǎn)染SATB1-siRNA-1和SATB1-siRNA-2組細胞沒有顯著的區(qū)別(P>0.05)。
SCLC約占全部肺癌20%~25%,其惡性程度高、發(fā)展迅速、早期可有遠處廣泛的轉(zhuǎn)移。SCLC對放化療敏感,近期療效好,但90%以上的患者治療后出現(xiàn)耐藥進而導致復發(fā)和轉(zhuǎn)移,而目前發(fā)現(xiàn)的與SCLC發(fā)生、發(fā)展相關(guān)的基因較為罕見〔10〕。尋找新的SCLC轉(zhuǎn)移相關(guān)基因,并確定其在SCLC中的作用,對于SCLC的診斷和治療均具有一定的意義。
SATB1是一種組織特異性表達的核基質(zhì)結(jié)合區(qū)結(jié)合蛋白(MBP),定位于3號染色體短臂2區(qū)3帶,全長763個氨基酸。早期研究顯示,SATB1參與胸腺細胞發(fā)育、T細胞的成熟和染色體高級結(jié)構(gòu)的形成。2008年,Han等在《Nature》上首次揭示了SATB1和腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移的關(guān)系,Han等在對細胞株和乳腺癌樣本的檢測中發(fā)現(xiàn),SATB1表達水平與乳腺癌細胞的侵襲性密切相關(guān)〔4〕。在隨后的體外實驗中,Han等應用了RNA干擾的方法來下調(diào)SATB1的表達,結(jié)果使高轉(zhuǎn)移性細胞株MDA-MB-231和BT549的侵襲力大大下降。相反異位SATB1表達卻使非侵襲性細胞株SKBR3獲得了侵襲力。這些都提示,SATB1是乳腺癌細胞獲得和維持侵襲力、乳腺癌發(fā)生轉(zhuǎn)移的關(guān)鍵因素。肝癌、直腸癌、胃癌等多種腫瘤細胞的研究同樣顯示SATB1的過度激活及表達可導致腫瘤細胞的無限生長,抑制凋亡〔9,11,12〕。
本研究結(jié)果提示SATB1可能會成為治療SCLC一個理想的目標基因。轉(zhuǎn)移是實體瘤發(fā)展的最終步驟,是癌癥患者死亡的最常見的原因??刂颇[瘤細胞的侵襲和遷移,可以提高癌癥患者的存活率,而SATB1在腫瘤的浸潤和遷移過程中起著重要的作用,本研究結(jié)果與該方面其他腫瘤的研究基本相一致。本研究結(jié)果還表明,轉(zhuǎn)染SATB1的siRNA后,SCLC細胞的增殖能力明顯下降。關(guān)于SATB1影響SCLC的增殖和侵襲的機制為何? 該方面的研究相對較少,但乳腺癌方面的研究顯示,SATB1改變了涉及腫瘤發(fā)生的多個方面的1 000余個基因的表達。在與轉(zhuǎn)移相關(guān)的基因方面,SATB1上調(diào)了許多促轉(zhuǎn)移基因,包括在轉(zhuǎn)移和血管發(fā)生中起作用的metastasin(S100A4)和VEGFB,降解細胞外基質(zhì)和促進腫瘤侵襲的基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)2、3和9,刺激侵襲的轉(zhuǎn)化生長因子β1(TGFB1),以及血管發(fā)生和骨轉(zhuǎn)移的結(jié)締組織生長因子(CTGF)。相反,SATB1下調(diào)了轉(zhuǎn)移抑制基因BRMS1、KAI1(CD82)、KISS1和NME1(NM23)。SATB1這種核基質(zhì)結(jié)合蛋白擔任了基因組組織者的角色,它顯著地改變了乳腺癌細胞的基因表達譜,誘導其出現(xiàn)侵襲性表型,從而促進腫瘤生長和轉(zhuǎn)移。將進一步研究其在SCLC細胞的具體機制。
總之,本研究顯示SATB1可調(diào)節(jié)的SCLC細胞的增殖、侵襲和凋亡,這可能會為因SATB1異常而引起的SCLC以及其他癌癥提供重要線索。
4 參考文獻
1黃 波,王曉東,郞賢平.ABCE1基因?qū)π〖毎伟┰鲋?、侵襲、遷移能力的影響〔J〕.中國老年學雜志,2013;33(1):119-21.
2Nakayama Y,Mian IS,Kohwi-Shigematsu T,etal.A nuclear targeting determinant for SATB1,a genome organizer in the T cell lineage〔J〕.Cell Cycle,2005;4(8):1099-106.
3Nie H,Yao X,Maika SD,etal.SATB1 is required for CD8 coreceptor reversal〔J〕.Mol Immunol,2008;46(1):207-11.
4Han HJ,Russo J,Kohwi Y,etal.SATB1 reprogrames gene expression to promote breast tumour growth and metastasis〔J〕.Nature,2008;452(7184):187-93.
5Cheng C,Lu X,Wang G,etal.Expression of SATB1 and heparanase in gastric cancer and its relationship to clinicopathologic features〔J〕.Acta,2010;118(11):855-63.
6Lu X,Cheng C,Zhu S,etal.SATB1 is an independent prognostic marker for gastric cancer in a Chinese population〔J〕.Oncol Rep,2010;24(4):981-7.
7Tu W,Luo M,Wang Z,etal.Upregulation of SATB1 promotes tumor growth and metastasis in liver cancer〔J〕.Liver Int,2012;32(7):1064-78.
8Chu SH,Ma YB,Feng DF,etal.Upregulation of SATB1 is associated with the development and progression of glioma〔J〕.J Transl Med,2012;10(1):149.
9Nodin B,Johannesson H,Wangefjord S,etal.Molecular correlates and prognostic significance of SATB1 expression in colorectal cancer〔J〕.Diagn Pathol,2012;7(1):115.
10Bo Huang,Ying Gao,Dali Tian.A Small interfering ABCE1-targeting RNA inhibited the proliferation,invasiveness of small cell lung cancer〔J〕.Int J Molecul Med,2010;25(4):687-93.
11Meng WJ,Yan H,Zhou B,etal.Correlation of SATB1 overexpression with the progression of human rectal cancer〔J〕.Int J Colorectal Dis,2012;27(2):143-50.
12Zheng J.Is SATB1 a master regulator in breast cancer growth and metastasis〔J〕? Womens Health(Lond Engl),2008;4(4):329-32.