劉亞坤,黃林靜,趙 珊,林 偉,何金波,應 磊,游 昕,王萬鐵△
(1.溫州醫(yī)科大學缺血/再灌注損傷研究所,浙江 溫州 325035;2.解放軍第四五四醫(yī)院胸心外科,江蘇 南京 210002)
全身炎性反應綜合征(systemic inflammatory response syndrome,SIRS)是由炎癥介質激活中性粒細胞、血小板、內(nèi)皮細胞等釋放多種毒性物質造成組織損傷而導致的全身性炎癥反應。中西醫(yī)結合是現(xiàn)代治療SIRS的重要措施,血必凈注射液(Xuebijing injection,XBJI),其成分為紅花 、赤芍 、川芎、丹參 、當歸等中藥材提取物的有效成份組成,生藥濃度為0.5g/ml,單味中藥的濃度為0.1 g/ml,其提取物的有效成分包括紅花黃色素A濃度>0.5 mg/ml,芍藥苷濃度>1 mg/ml,阿魏酸濃度>0.01 mg/ml。主要成分為紅花黃色素A,具有活血化瘀、疏通經(jīng)絡、潰散毒邪的作用,可以拮抗內(nèi)毒素并抑制內(nèi)源性炎性介質失控釋放。臨床研究證明[1],XBJI能改善多種原因導致的SIRS癥狀,能有效調控炎性反應過程。然而,有關XBJI改善SIRS的機制尚未明確,并且XBJI在心臟疾病方面的研究相對較少,我們的實驗在臨床療效的基礎上,進一步研究XBJI對缺氧/復氧大鼠心肌炎性反應的抑制作用,并探討其機制。
本實驗利用易于控制的langendorff離體心臟灌流裝置,進行了大鼠離體心臟灌流實驗,用以模擬臨床的體外循環(huán)。通過觀察XBJI對缺氧/復氧大鼠心肌白介素 1β(interleukin-1β,IL-1β)、核因子-κ Вp65(nuclear factor kappa B p65 ,NF-κ Вp65)、Toll樣受體 4(toll like receptor 4,TLR4)表達的影響,探討 XBJI抑制炎性反應的可能機制,從而為臨床應用XBJI防治心肌缺血/再灌注損傷提供更多的實驗依據(jù)和理論基礎。
SPF級健康雄性SD大鼠,體重(280±30)g,由溫州醫(yī)科大學實驗動物中心提供[動物使用許可證號為SYXK(浙)2010-0150]。
血必凈注射液(天津紅日藥業(yè)股份有限公司,批號:Z20040033);大鼠白介素-1β(IL-1β)ELISA 試劑盒(上海西唐生物科技有限公司);DNA Ladder(上海捷瑞公司),RT-PCR引物(上海生工生物工程技術服務有限公司),RT-PCR試劑盒(美國Fermentas公司),Trizol試劑(美國Invitrogen公司),瓊脂糖(德國Biowest公司);X線膠片(柯達公司),顯影定影試劑盒(南京凱基生物公司),增強化學發(fā)光試劑盒(美國Millipore公司),彩色預染蛋白Marker(美國Fermentas公司),封閉用奶粉(美國BD公司),PVDF膜(美國Millipore公司),BCA蛋白定量試劑盒(碧云天生物技術研究所),小鼠抗鼠 TLR4單克隆抗體(sc-293072,Santa Cruz),辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗小鼠二抗(碧云天生物技術研究所),兔抗鼠NF-κ Вp65 多克隆抗體(ab7970,abcam),辣根過氧化物酶(HRP)標記的羊抗兔二抗(ab6721,abcam),兔抗鼠GAPDH多克隆抗體(中國杭州賢至生物科技有限公司),其余為市售分析純。
SD大鼠36只隨機分為6組(n=6):正常組(N組)、平衡灌注組(BP組)、模型組(M 組)、小劑量XBJI組(XBJIL組,按照每100ml改良ThomasⅡ停搏液中加入2 ml XBJI配置而成,2 ml/100ml)、中劑量XBJI組(XBJIM組,按照每100ml改良ThomasⅡ停搏液中加入4 ml XBJI配置而成,4 ml/100ml)、大劑量XBJI組(XBJIH組,按照每100ml改良ThomasⅡ停搏液中加入8 ml XBJI配置而成,8 ml/100ml)。
將心臟懸掛在langendorff離體心臟灌流裝置(ML870B2,ADInstruments,Australia),經(jīng)主動脈進行逆行灌注[2],采用恒溫恒壓灌流,灌注液溫度為(37±0.5)℃。K-H緩沖液成分(g/L):NaCl 6.9251、KCl 0.3578 、CaCl20.2775、NaHCO32.1003、KH2PO40.1633、MgSO4?7H2O 0.2958、Glucose 2.1997。灌注壓 100mmHg,灌注液通有95%O2+5%CO2混合氣體,并且預充30min,pH(7.40±0.05)。N組開胸取出心臟后,直接保存心肌組織以備后續(xù)指標檢測;BP組在建立langendorff離體心臟灌注模型的基礎上,平衡灌注20min后,將心臟保存;M組在建立langendorff離體心臟灌注模型的基礎上,平衡灌注20min后,持續(xù)灌注改良ThomasⅡ停搏液3 min,使心臟完全停搏。改良ThomasⅡ停搏液成分(g/L):NaCl 6.4284、KCl 1.1928 、CaCl20.1332 、NaHCO30.08401 、MgCl2?6H2O 3.2528。繼而停灌30min,然后再復灌K-H緩沖液使其復跳并持續(xù)灌注120min;XBJIL組、XBJIM組、XBJIH組分別在改良ThomasⅡ停搏液中按比例加入XBJI 2 ml/100ml、4 ml/100ml、8 ml/100ml,其他處理與M組相同。
1.5.1 ELISA方法檢測心肌組織中IL-1β的濃度取低溫保存的心肌組織100mg置于研缽中,加液氮研成粉末后,加入1 ml生理鹽水,充分勻漿,取上清液,BCA 法進行蛋白定量,大鼠白介素-1β(IL-1β)ELISA試劑盒進行IL-1β濃度檢測。酶標儀測出OD值,然后計算出總蛋白濃度、IL-1β濃度,以IL-1β濃度與總蛋白濃度比值表示IL-1β的相對濃度。
1.5.2 Western blot 檢測心肌組織中 NF-κ Вp65 及TLR4蛋白的表達 參考文獻[3]的方法進行心肌組織蛋白的提取。配置10%SDS-PAGE分離膠和3%濃縮膠,每孔加入20μg蛋白樣品,置入電泳緩沖液中,90V電泳約20min,120V電泳約60min。采用濕式電轉移法將蛋白轉印至PVDF膜,用5%脫脂奶粉于室溫下封閉90min,分別加入Ⅰ抗NF-κ Вp65抗體(1∶1000)、TLR4 抗體(1∶1000)及GAPDH 抗體(1∶1000)。4℃反鋪法孵育過夜。再加入相應的Ⅱ抗,室溫孵育1 h,化學發(fā)光顯色,X射線底片曝光。結果用Quantity One凝膠軟件分析系統(tǒng)對條帶進行分析。
1.5.3 RT-PCR方法檢測心肌組織中NF-κ Вp65及TLR4 mRNA的表達 Trizol法抽提總 RNA,取總RNA 1μl用蛋白核酸儀(美國 Thermo公司)進行RNA濃度的檢測,記錄RNA濃度及A260/A280比值判斷純度(A260/A280值在1.8~2.0之間視為純度較高,否則,重新提取 RNA),將各組RNA濃度用DEPC水調至2 ug/ul。按照逆轉錄試劑盒說明書進行逆轉錄,合成cDNA,再按照PCR試劑盒說明書進行 cDNA 擴增。NF-κ Вp65 上游引物:5′-GATAAAAT CCTCGGGGTCCTAC-3′,下游引物 :5′-GCTGCTATGTGTAGAGGTGTCG-3′,擴增片段長度:299 bp。β-actin 內(nèi)參上游引物 :5′-TCAGGTCATCACTATCGGCAAT-3′,下游引物:5′-AAAGAAAGGGTGTAAAACGCA-3′,擴增片段長度:432 bp。PCR反應條件為:94℃預變性3 min,94℃變性 30s,59.3℃退火 30s,72℃延伸1 min,72℃后延伸 5 min,循環(huán)次數(shù)27次。TLR4上游引物 :5′-CATCCAAAGGAATACTGCAACA-3′,下游引物:5′-GTTTCTCACCCAGTCCTCATTC-3′,擴增片段長度:398 bp。GAPDH 內(nèi)參上游引物:5′-CAGTGCCAGCCTCGTCTCAT-3′,下游引物:5′-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3′,擴增片段長度 :595 bp。PCR反應條件為:94℃預變性3 min,94℃變性30s,58℃退火30s,72℃延伸1 min,72℃后延伸5 min,循環(huán)次數(shù)28次。PCR產(chǎn)物通過1.5%瓊脂糖凝膠電泳、溴化乙啶染色后,用凝膠成像儀記錄。用Quantity One凝膠軟件分析系統(tǒng)分析灰度值。
1.5.4 組織學觀察心肌結構的變化 各組最后停灌后,迅速從心尖部同一部位取材,用10%的甲醛溶液(福爾馬林)固定,石蠟包埋,切片,HE染色,光鏡下觀察心肌組織結構、心肌細胞的改變及炎性細胞的浸潤情況,并拍片。
XBJI可降低缺氧/復氧心肌中IL-1β的濃度,以XBJIM為佳(表1)。
XBJI可降低缺氧/復氧心肌NF-κ Вp65及 TLR4蛋白的表達,以XBJIM最佳(表2,圖1)。
Tab.1 Change of IL-1β concentration inmyocardial tissue of each group(,n=6)
Tab.1 Change of IL-1β concentration inmyocardial tissue of each group(,n=6)
N:Normal group;BP:Balanced perfusion group;M:Model group;XBJIL:Low dose XBJI group;XBJIM:Middle dose XBJI group;XBJIH:High dose XBJI group;XBJI:Xuebijing injection*P<0.05 vs N group;#P<0.05 vs BP group;△△P<0.01 vs M group;▲P<0.05 vs XBJILgroup;○P<0.05 vs XBJIMgroup
Group IL-1β 9.5517±2.1026*#XBJIL 5.5499±0.7935△△XBJIM 5.3018±0.5051△△XBJIH 7.9382±1.8726▲○6.9601±2.7438 BP 6.7603±2.3801 M N
Tab.2 Expression of NF-κ В p65 protein ,and TLR4 protein in myocardial tissue of each group(,n=6)
Tab.2 Expression of NF-κ В p65 protein ,and TLR4 protein in myocardial tissue of each group(,n=6)
N:Normal group;BP:Balanced perfusion group;M:Model group;XBJIL:Low dose XBJI group;XBJIM:Middle dose XBJI group;XBJIH:High dose XBJI group;XBJI:Xuebijing injection*P<0.05,**P<0.01 vs N group;#P<0.05,##P<0.01 vs BP group;△P<0.05,△△P<0.01 vs M group;▲P<0.05 vs XBJILgroup
Group NF-κ Вp65 TLR40.0931±0.0436 0.1756±0.0606 BP 0.1631±0.0455 0.2747±0.0535**M 0.4007±0.1487**##0.4273±0.1023**##XBJIL 0.2623±0.0814**#△△ 0.3469±0.0675**△XBJIM 0.1691±0.0308△△▲ 0.2588±0.0122*△△▲XBJIH 0.2003±0.0451*△△ 0.3022±0.0292**△△N
Fig.1 Expression of NF-κB p65 protein and TLR4 protein in each group of rat myocardial tissues
XBJI可使缺氧/復氧心肌組織 NF-κ В p65及TLR4 mRNA的表達減少,且以XBJIM減少最多(表3,圖 2)。
Tab.3 Expression of NF-κ Вp65mRNA and TLR4mRNA inmyocardial tissue of each group(,n=6)
Tab.3 Expression of NF-κ Вp65mRNA and TLR4mRNA inmyocardial tissue of each group(,n=6)
N:Normal group;BP:Balanced perfusion group;M:Model group;XBJIL:Low dose XBJI group;XBJIM:Middle dose XBJI group;XBJIH:High dose XBJI group;XBJI:Xuebijing injection;NF-κ β :Nuclear factor kappaβ ;TLR4:Toll like receptor 4**P<0.01 vs N group;#P<0.05 ,##P<0.01 vs BP group;△P<0.05,△△P<0.01 vs M group
Group NF-κ В p65 TLR40.384±0.201**## 0.316±0.059**#XBJIL 0.296±0.102**## 0.227±0.043**△XBJIM 0.193±0.020△△ 0.178±0.055△△XBJIH 0.219±0.030△△ 0.196±0.085△△0.092±0.023 0.131±0.046 BP 0.142±0.020 0.166±0.036 M N
Fig.2 Expression of NF-κB p65 mRNA and TLR4 mRNA in rat myocardial tissues in every group
IL-1β濃度與NF-κ Вp65 蛋白 、TLR4 蛋白之間呈正相關(P>0.05);IL-1β濃度與NF-κ Вp65 mRNA、TLR4 mRNA之間呈顯著正相關(P<0.05);NF-κ В p65 蛋白與 TLR4 蛋白 、NF-κ Вp65 mRNA、TLR4 mRNA之間呈顯著正相關(P<0.01);TLR4蛋白與NF-κ Вp65 mRNA 、TLR4 mRNA 之間呈顯著正相關(P <0.01);NF-κ Вp65 mRNA 與TLR4 mRNA 之間呈顯著正相關(P<0.01)。
N組與BP組心肌細胞排列整齊,形態(tài)正常,細胞核居中,心肌纖維正常,未見炎性細胞浸潤(圖3N、3BP,“實箭頭”示心肌,“虛箭頭”示血管,下同)。M組心肌細胞腫脹變形,出現(xiàn)空泡變性,細胞核邊集,心肌纖維斷裂溶解,血管擴張明顯且有出血,炎性細胞浸潤(圖3M,“三角形”示血管內(nèi)出血)。XBJI處理后,上述改變得到明顯的改善,以XBJIM組最為明顯,心肌細胞接近正常,排列緊密,心肌纖維走形正常,血管擴張現(xiàn)象明顯緩解,幾乎無出血,間質炎性細胞浸潤現(xiàn)象減輕(XBJIL、XBJIM、XBJIH)。
Fig.3 Change of rat myocardial tissue under light microscope of all groups
本實驗光鏡結果顯示:M組心肌結構損傷嚴重,表現(xiàn)為心肌細胞腫脹、空泡化、細胞核邊集、心肌纖維斷裂溶解、炎性細胞浸潤;XBJI處理后心肌結構損傷得到明顯改善,以4 ml/100ml的XBJI最為顯著。表明XBJI對缺氧/復氧大鼠心肌具有一定程度的保護作用。
IL-1β是介導炎性反應的重要因子[4];NF-κB是參與免疫與炎性反應的重要的轉錄因子[5];TLR是一類天然免疫受體,TLR4是介導內(nèi)毒素/脂多糖應答的主要受體,TLR4-NF-κB 參與炎性反應[6],抑制TLR4--NF-κB通路,可以使大鼠心肌缺血/再灌注損傷減輕[7]。已有文獻報道:血必凈注射液可下調促炎介質IL-1β水平,改善微循環(huán)和組織灌注,保護重要臟器功能,阻斷SIRS惡性發(fā)展及MODS形成[8];亦可通過抑制參與炎性反應的重要轉錄因子DNA結合活性而達到抵抗炎癥的效果[9];另外,還可通過下調TLR4蛋白及TLR4 mRNA水平抑制下游細胞因子的釋放[10]。
本實驗結果顯示:與M組相比,XBJIL組和XBJIM組心肌組織IL-1β濃度明顯下降(P<0.01);XBJIL組、XBJIM組、XBJIH組均明顯降低心肌組織NF-κ Вp65及TLR4蛋白表達(P <0.05,P <0.01);XBJIM組 、XBJIH組均明顯降低NF-κ Вp65 mRNA 的表達(P<0.01);XBJIL組、XBJIM組、XBJIH組均顯著降低TLR4 mRNA的表達(P<0.05,P<0.01)。說明XBJI可降低 IL-1β濃度和下調 NF-κ Вp65及 TLR4蛋白、mRNA表達而減輕缺氧/復氧大鼠心肌的炎性反應。另外,XBJIL組和XBJIM組 IL-1β濃度明顯低于XBJIH組(P<0.05),XBJIL組和 XBJIM組之間IL-1β濃度無差異;XBJIM組NF-κ Вp65蛋白及TLR4蛋白水平明顯低于XBJIL組(P<0.05),XBJIM組與XBJIH組之間NF-κ Вp65蛋白及 TLR4蛋白表達無差異;XBJIL組 、XBJIM組 、XBJIH組之間 NF-κ Вp65 mRNA及TLR4 mRNA雖沒有差異(P>0.05),但以XBJIM組NF-κ Вp65 mRNA、TLR4 mRNA 表達最低 。 提示XBJI對缺氧/復氧大鼠心肌的保護作用可通過抑制大鼠心肌的炎性反應來實現(xiàn),以4 ml/100ml的XBJI作用最為明顯。
本研究相關分析顯示:IL-1β濃度與NF-κ Вp65、TLR4蛋白之間呈正相關;IL-1β 濃度與 NF-κ Вp65、TLR4 mRNA之間呈顯著正相關(P<0.05);NF-κ В p65 蛋白與 TLR4 蛋白 之間、NF-κ В p65mRNA 與TLR4 mRNA之間呈顯著正相關(P<0.01)。反映了大鼠心肌缺氧/復氧引起的炎性反應可能與TLR4--NF-κ В--IL-1β 信號通路的活化有關,XBJI可通過抑制該通路活化減輕大鼠心肌的炎性反應。
綜上所述,不同劑量XBJI可通過抑制TLR4--NF-κ В--IL-1β信號轉導通路減輕缺氧/復氧大鼠心肌的炎性反應,以4ml/100ml的XBJI療效最佳。這為XBJ的臨床應用提供了可靠的實驗依據(jù)和理論依據(jù)。
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