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      高濕環(huán)境對大鼠免疫功能的影響*

      2014-01-22 10:00:14宋富強呼永河
      關(guān)鍵詞:常溫亞群淋巴細(xì)胞

      郭 鑫,李 昆,王 超,李 薇,楊 蕓,宋富強,呼永河

      高濕環(huán)境能引起人體常見的多種疾病,高濕度是導(dǎo)致這些疾病的重要因素及發(fā)病條件[1]。我國幅員遼闊,氣候環(huán)境復(fù)雜多變,尤其是南方和沿海地區(qū),大部分處于中、亞熱帶氣候,常年多雨,叢林分布廣,湖泊及河流密布,或者接近海洋,水資源豐富。這些地區(qū)全年濕度均偏高,高濕致病因素影響的范圍極為廣闊。近年來,隨著SARS、禽流感等與濕度因素相關(guān)的新的疾病的出現(xiàn),使得高濕環(huán)境下導(dǎo)致疾病的病因?qū)W及病理機制的研究顯得更為緊迫和重要。免疫力是機體抵御疾病的屏障系統(tǒng),了解高濕條件下機體免疫力的改變,有利于為改善高濕引起各種疾病的狀況提供新的思路。前期的研究認(rèn)為,濕度變化可能是影響人體免疫功能的重要因素[2,3],然而,高濕環(huán)境下機體免疫力到底如何變化,其隨著時間的發(fā)展又會有怎樣的結(jié)果,目前并不十分清楚。本研究對不同濕化時間的大鼠模型進行免疫學(xué)方面的檢測,旨在探討其變化的規(guī)律及意義,并為高濕影響機體免疫功能機制的研究奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 主要儀器和試劑

      健康 SD雄性大鼠30只,體重(200±20)g,由四川達(dá)碩實驗動物公司提供。異硫氰酸熒光素(FITC)標(biāo)記小鼠抗大鼠CD3單抗,R-藻紅蛋白(R-PE)標(biāo)記小鼠抗大鼠 CD4單抗,別藻藍(lán)蛋白(Allophycocyanine)標(biāo)記小鼠抗大鼠CD8單抗購自美國BECKMAN公司。固定劑及紅細(xì)胞裂解液購自德國PARTEC公司。人工氣候箱為RXZ-1000A型,由中國寧波江南儀器廠制造。流式細(xì)胞儀購自德國PARTEC公司CYFLOW ML型。全自動生化分析儀為日本OLYMPUSAU400。

      1.2 高濕模型建立

      將30只健康雄性SD大鼠分為三組(n=10):常溫常濕組、濕化20 d組和40 d組,其中濕化組大鼠放入人工氣候箱培養(yǎng),濕度(RH)為(90±2)%,溫度(T)為(26±2)℃,每日刺激 10 h,其余時間條件與常溫常濕組大鼠相同,分別于20 d、40 d處死,采集血液和脾臟標(biāo)本。常溫常濕組條件 RH=(55±5)%,T=(26±2)℃。

      1.3 外周血T淋巴細(xì)胞亞群測定

      采集高濕組和常溫常濕組大鼠外周靜脈血,EDTA抗凝。(1)取抗凝血25μl分別加人各流式檢測管中,然后分別加人熒光素標(biāo)記的抗大鼠單克隆抗體 CD3-FITC、CD4-PE、CD8-APC,并設(shè)立同型對照和空白對照,室溫避光孵育30 min;(2)加入 30μl固定劑,混勻后室溫避光放置15 min;(3)加入2 ml溶血素,避光 37℃水浴 30 min,待測;(4)采用 PARTEC公司CYFLOW ML型流式細(xì)胞儀,同時開啟藍(lán)色和紅色激光器,接收數(shù)據(jù)通道為 FL1、FL4和 FL5,在FLOMAX2.8軟件下獲取與分析數(shù)據(jù)。以 FSC/SSC設(shè)定淋巴細(xì)胞門,根據(jù)對照調(diào)整好實驗參數(shù),每管檢測1萬個細(xì)胞。

      1.4 脾組織T淋巴細(xì)胞亞群測定

      采集高濕組和常溫常濕組大鼠脾臟于培養(yǎng)皿中,PBS沖洗3次。外科手術(shù)剪反復(fù)剪碎后,用200目篩網(wǎng)過濾收集細(xì)胞,并于4℃,2 000 r/min離心10 min,棄上清;加入2 ml溶血素重懸細(xì)胞,靜置5~10 min,4℃,2 000 r/min離心 10 min,棄上清;加入 PBS重懸細(xì)胞,4℃,2 000 r/min離心 10 min,棄上清;加入PBS,重懸細(xì)胞后,取20μl按照外周血的方法進行標(biāo)記和固定,最后調(diào)整細(xì)胞數(shù)為1×106cells/ml,上機檢測,每管檢測1萬個細(xì)胞。

      1.5 血清 IgG、IgA、IgM抗體及補體 C3水平的檢測

      采集高濕組和常溫常濕組大鼠外周靜脈血2 ml,4 000 r/min離心 10 min,取血清在全自動生化分析儀上,用透射比濁法檢測。檢測試劑、校準(zhǔn)品及質(zhì)控均為原裝配套試劑,質(zhì)控結(jié)果在允許范圍內(nèi)才能進行實驗檢測。

      1.6 統(tǒng)計學(xué)處理

      采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件,所有結(jié)果均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(ˉx±s)表示,組間比較采用 t檢驗進行分析。

      2 結(jié)果

      2.1 外周血T淋巴細(xì)胞亞群測定結(jié)果

      濕化大鼠外周血總的T淋巴細(xì)胞水平變化不大,其比例均為50%左右,與常溫常濕組相比沒有顯著性差異。CD4+的T淋巴細(xì)胞比例在20 d組顯著上升,與常溫常濕組相比有統(tǒng)計學(xué)差異,而40 d組CD4+的T淋巴細(xì)胞比例也升高,但與常溫常濕組相比沒有統(tǒng)計學(xué)的差異。CD8+的T淋巴細(xì)胞比例隨著時間的推移,呈現(xiàn)了先降低再升高的趨勢,其中20 d組在統(tǒng)計學(xué)上有顯著性差異,40 d組則與常溫常濕組細(xì)胞比例幾乎一致。CD4+/CD8+結(jié)果與CD4+的T淋巴細(xì)胞亞群結(jié)果類似,在20 d組顯著升高以后,40 d組持續(xù)降低,最終數(shù)據(jù)結(jié)果接近常溫常濕組的水平(表1,圖1)。

      Fig.1 Flow cytometry results of Tlymphocyte subsets in peripheral blooda:FS vs SStwo parameter scatter diagram;b:CD4-PC7 vs CD3-FITC two parameter scatter diagram;c:CD8-APC vs CD3-FITC two parameter scatter diagram;d-f:CD3-FITC、CD4-PC7、CD8-APC single parameter histogram

      2.2 脾組織T淋巴細(xì)胞亞群測定結(jié)果

      濕化大鼠脾臟CD3+T淋巴細(xì)胞結(jié)果顯示,20 d組比例降低,40 d組升高,但與常溫常濕組相比均沒有統(tǒng)計學(xué)差異。CD4+T淋巴細(xì)胞結(jié)果趨勢與CD3+T淋巴細(xì)胞類似,隨著時間推移先降低再升高,與常溫常濕組相比無統(tǒng)計學(xué)差異。CD8+T淋巴細(xì)胞20 d組結(jié)果與常溫常濕組有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.05),比例顯著降低,40 d組亦降低,但無統(tǒng)計學(xué)差異。CD4+/CD8+在20 d組與40 d組的水平均略有升高,但與常溫常濕組相比均沒有顯著性差異(表2,圖 2)。

      Fig.2 Flow cytometry results of T lymphocyte subsets in spleena:FS vs SS two parameter scatter diagram;b:CD4-PC7 vs CD3-FITC two parameter scatter diagram;c:CD8-APC vs CD3-FITC two parameter scatter diagram;d-f:CD3-FITC、CD4-PC7、CD8-APCsingle parameter histogram

      2.3 血清IgG、IgA、IgM抗體及補體C3檢測結(jié)果

      濕化大鼠20 d組和40 d組血清IgG的含量均低于正常組大鼠,但未見統(tǒng)計學(xué)差異,而IgA與IgM變化不大。濕化大鼠20天組補體C3顯著上升(P<0.05),40 d組結(jié)果與正常對照組相比沒有顯著性差異(表 3)。

      3 討論

      環(huán)境的應(yīng)激對機體的免疫功能有一定的影響,普遍的觀點認(rèn)為,強烈而持久的應(yīng)激可能會導(dǎo)致免疫功能的降低。高濕環(huán)境有其特殊的環(huán)境條件和致病機理,我國許多傳統(tǒng)醫(yī)學(xué)的研究者在濕度因素致病免疫學(xué)機理的研究中提出了許多寶貴經(jīng)驗。張六通等[4]研究發(fā)現(xiàn),在相對濕度(RH)>90%,溫度(T)(18~25)℃,連續(xù)刺激 12 h/d,連續(xù)觀察 108 d的條件下,高濕致病組大鼠出現(xiàn)T淋巴細(xì)胞總數(shù)不足、T淋巴細(xì)胞亞群異常以及白介素2活性下降,提示高濕可能導(dǎo)致了T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞免疫功能的低下。陳剛[5]除對高濕模型大鼠進行了免疫功能的研究外,還設(shè)無菌組大鼠,即在相對無菌的環(huán)境中建立高濕模型大鼠,并進行相關(guān)免疫功能的研究,結(jié)果發(fā)現(xiàn)無菌組高濕模型大鼠亦存在免疫功能的紊亂,揭示外界濕度在沒有微生物參與的情況下,也能對機體免疫功能產(chǎn)生較大影響。

      T淋巴細(xì)胞是介導(dǎo)細(xì)胞免疫的主要效應(yīng)細(xì)胞,T淋巴細(xì)胞亞群的比值是反映機體免疫功能變化的主要指標(biāo)。正常狀態(tài)下,T淋巴細(xì)胞及其亞群的數(shù)目在周圍組織中相對穩(wěn)定,而病理條件下,CD4+/CD8+的比值則可能發(fā)生變化,提示免疫功能發(fā)生紊亂。本實驗研究發(fā)現(xiàn),濕化大鼠外周血總的T淋巴細(xì)胞水平變化不大,而CD4+T淋巴細(xì)胞在20 d組顯著上升,CD8+T淋巴細(xì)胞則顯著降低,其比值顯著升高。40 d組變化趨勢與20 d組相似,但是差異不明顯。這提示高濕環(huán)境在開始階段作為一種應(yīng)激因素對機體產(chǎn)生了刺激,導(dǎo)致免疫系統(tǒng)的自穩(wěn)狀態(tài)發(fā)生改變,CD4+與CD8+比例出現(xiàn)變化,其比值顯著上升,免疫系統(tǒng)功能增強。這與 Carlini[6]等的研究結(jié)果一致,他們通過濕邪致病大鼠IL-2、IL-8水平變化探討濕邪致病與細(xì)胞免疫功能的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)外濕組的IL-2和IL-8水平比內(nèi)濕組和常溫常濕組明顯升高,提示濕邪致病初期外濕與機體的免疫功能提高和炎癥反應(yīng)密切有關(guān),此階段機體可能對外在濕邪較內(nèi)在濕邪的刺激更為敏感。之后隨著時間的延長,機體對高濕刺激因素慢慢適應(yīng),可能逐漸習(xí)服,表現(xiàn)為CD4+、CD8+T淋巴細(xì)胞及其比值逐漸降低至常溫常濕組水平。大鼠脾臟T淋巴細(xì)胞亞群整體變化不大,濕化20 d組大鼠CD8+T淋巴細(xì)胞亞群有統(tǒng)計學(xué)差異,其數(shù)據(jù)顯著降低,這進一步說明在高濕環(huán)境初期,機體免疫功能提高,殺傷性的T淋巴細(xì)胞發(fā)揮了直接的作用,此后隨著機體的不斷調(diào)整可能逐漸習(xí)服,T淋巴細(xì)胞亞群比例逐漸接近正常水平。

      Tab.2 Levels of T lymphocyte subsets in spleen in control and high humidity groups(ˉx±s,n=10)

      Tab.3 Results of humoral immunity index in blood serum of control and high humidity groups(g/l,ˉx±s,n=10)

      體液免疫是機體免疫系統(tǒng)的重要組成部分,IgG、IgM、IgA等免疫球蛋白以及補體系統(tǒng)都對機體的免疫系統(tǒng)發(fā)揮了重要作用。實驗結(jié)果顯示,20 d組的C3有較大幅度地升高,有統(tǒng)計學(xué)差異。以往的研究表明,應(yīng)激對補體的活性和含量起抑制作用[7,8],這也提示我們,高濕應(yīng)激可能不同于其余的應(yīng)激因素,它能夠顯著提高機體C3的含量,在體液免疫總體降低的情況下,短效地提升機體的防御能力。隨著時間的推移,機體通過自我調(diào)整,補體C3基本回復(fù)到正常狀態(tài),最終表現(xiàn)為與常溫常濕組無顯著性差異。

      本研究說明了在高濕環(huán)境下大鼠機體內(nèi)免疫狀態(tài)的變化,即實驗初期大鼠的免疫自穩(wěn)狀態(tài)發(fā)生變化,功能得以增強,隨著時間的延長,機體通過自我的調(diào)整,可能逐漸習(xí)服,免疫功能降低到正常水平。這使我們初步明確了高濕環(huán)境對機體免疫功能的影響,并進一步了解了濕化時間與機體免疫狀態(tài)的關(guān)系,對我們下一步研究高濕環(huán)境影響機體免疫功能的機制具有一定的指導(dǎo)意義。

      [1] 鐘 梁,呼永河,張 聰,等.淺議高濕環(huán)境對人體生理心理的影響[J].西南國防醫(yī)藥,2011,21(10):1114-1115.

      [2] Wright HE,McLellan TM,Stapleton JM,et al.Cortisol and interleukin-6 responses during intermittent exercise in two different hot environments with equivalent WBGT[J].J Occup Environ Hyg,2012,9(4):269-279.

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      [4] 張六通,梅家俊,黃志紅,等.外濕致病機理的實驗研究[J].中醫(yī)雜志,1999,40(8):496-498.

      [5] 陳 剛.外濕模型大鼠免疫功能變化的研究[J].中國現(xiàn)代醫(yī)生,2007,45(11):1-2.

      [6] Carlini Fan Hardi,張詩軍,陳澤雄,等.基于 IL-2、IL-8水平變化的濕邪致病機理研究[J].中國中醫(yī)藥咨訊,2010,2(1):10-11.

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